parte 2 PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS

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PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
 Matérias utilizados:
Ácido tricloroacético 20%
Acetado de chumbo 10% para precipitação
Matéria prima ovoalbumina 10%, pera de borracha, pipeta, becker e 1 tubo para ácido e 1 tubo para acetado de chumbo
Tubo 1 ácido: 2 ml de Ovoalbumina, 1 ml de ácido tricloroacético, a precipitação ocorre de forma imediata. Forma um líquido leito leitoso indicando a formação de alguns glumeos. Precipitação da proteína pelo ácido. 
Tubo 2 Acetado de chumbo: 2 ml de Ovoalbumina, 5 gotas de acetado de chumbo. A precipitação também ocorre de forma imediata, ocorrendo a formação do liquido leitoso, porém de uma forma menos intensa, pois ao contrário do ácido que tem a capacidade de quebrar as ligações peptídica da proteína é mais intensa. 
2. Responda as Perguntas:
a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados?
Por causa da precipitação pois contém elementos químicos que consegue clivar/quebrar as ligações peptídicas da proteína
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação?
Porque ela contém cátions pesados, formando assim precipitados insolúveis de proteína onde são denominados de acordo com cada elemento a ser formado.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Tubo de ácido tricloroacético teve reação imediata formando um líquido leitoso branco, já tubo de acetado de chumbo tem uma reação imediata formando uma coloração mais clara. 
Foi possível perceber a modificação do ponto elétrico cargas iônicas que existe nas proteínas. A precipitação também é importante para proteínas e é em alguns pontos dos elementos químicos onde conseguem clivar/quebrar as estruturas da proteica.
	PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Matérias: ovoalbumina 10%, Solução de sulfato de amônia concentrada de sais, água para utilizar como padrão negativo, 2 tubos, pipeta, becker. 
Tubo A: Foi utilizado o ovoalbumina e a concentração salina. 
Tubo B: Utilizou o ovoalbumina, mais a concentração de sulfato de amônia e água. 
Foi colocado em cada tubo 2 ml de ovoalbumina, 2 ml de concentração de salina no tubo A e B, assim que adiciona a concentração de salina conseguimos observar a precipitação da proteína se formar um composto leitoso é porque ocorreu a precipitação das proteínas. No tubo B após ter colocado a ovoalbumina e a concentração de salina, colocou a água.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação?
No Salting-in quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica (aumento da concentração de íons) do sistema. Assim, ao adicionarmos pequenas quantidades de sal a uma solução contendo proteínas, as cargas provenientes da dissociação do sal passam a interagir com as moléculas proteicas, diminuindo a interação entre elas. Consequentemente, temos um aumento da solubilidade da proteína no meio aquoso. 
Na Salting in em condições de elevada força iônica, decorrente da adição de grandes quantidades de sal, temos o efeito contrário. A água, que apresenta um grande poder de solvatação, passa a interagir com as duas espécies: as proteínas e os íons provenientes da dissociação do sal. Porém, a água apresenta maior tendência de solvatação de partículas menores (nesse caso, os íons). As moléculas de água, ocupadas em sua interação com os íons, deixam a estrutura proteica. Como consequência, temos maior interação proteína-proteína, diminuição da solubilidade em meio aquoso e, consequentemente, precipitação da proteína. A esse fenômeno de insolubilização da proteína em decorrência de um considerável aumento da força iônica do meio.
Já na Camada de Solvatação quando há muitas moléculas de água em relação às moléculas de solutos, tal qual em uma solução aquosa, essas interações levam à formação de uma esfera tridimensional de moléculas de água, ou camada de solvatação, ao redor do soluto. Essas camadas permitem que as partículas sejam dispersadas (se espalhem) uniformemente na água.
b) Qual o princípio bioquímico do experimento? 
Realizar um experimento que demostre o ponto isoelétrico das proteínas
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento.
No tubo B não conseguimos observar a formação do precipitado, pois a água interfere na forma iônica das cargas. Já no Tubo A ocorreu a precipitação demostrando assim a precipitação das proteínas na proteína do ovo em solução salina. 
	REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Materiais:
Foram utilizados três tubos. Pera de borracha para medir o reativo de Benedict.
Glicose 1% - tentar visualizar se é um açúcar redutor ou não.	
Sacarose a 1% - sacarídeo 
Reativo de Benedict Qualitativo
Água para o controle negativo
pipeta, becker, banho maria e cronometro
TUBO 1 Glicose – 5 ml do reativo de Benedict, 5 ml de glicose, fazer a aspiração para homogeneizar quando colocar a glicose com o reativo, após colocar todos os elementos levar ao banho maria à 70°C por 5 minutos para ocorrer a reação. 
TUBO 2 Sacarose – 5 ml do reativo de Benedict, 5ml de sacarose, fazer a aspiração para homogeneizar quando colocar a Sacarose com o reativo, após colocar todos os elementos levar ao banho maria à 70°C por 5 minutos para ocorrer a reação. 
TUBO 3 água - 5 ml do reativo de Benedict, 5 ml de água, balança os elementos para homogeneizar, após colocar todos os elementos levar ao banho maria à 70°C por 5 minutos para ocorrer a reação. 
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento.
Alguns carboidratos apresentam estrutura hidroxila em um dos carbonos o c1, e essa hidroxila irá conseguir reagir com vários íons principalmente metálicos, onde se baseia na ligação e a carbonila se liga a um reativo chamado reativo de Benedict
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”?
Existem açúcares que possuem grupos carbonílico e cetônico livres, que são capazes de se oxidar na presença de agentes oxidantes, em soluções alcalinas. Estes são os açúcares redutores (AR), que são monossacarídeos, como a glicose e a frutose, e alguns dissacarídeos, como a maltose (formada por glicose) e a lactose (formada por galactose e glicose). As funções cetônicas e aldeídicas livres possibilitam a redução de íons catiônicos, como o Cobre e o Ferro
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Resultados:
Tubo 1 glicose: Teve uma modificação, sem ser de fato uma reação na cor vermelho-tijolo, pois a cor esverdeada indicando a redução dos íons tendo uma reação do cobre não havendo a formação do ácido gluposo. 
Tubo 2 sacarose: Não ouve redução e reação entre os íons, significando que a sacarose não é um carboidrato redutor não tem hidroxila, a carbonila que faz a reação com os íons cúpricos.
Tubo 3 Água: água controle não teve reação, permanecendo a cor do reativo de Benedict.
Conseguimos perceber a diferença entre a glicose e Sacarose, onde a glicose (aldose) é um agente redutor monossacarídeo, Já a sacarose não é redutora.
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica.
O experimento pode ser utilizado para detectar a presença de glicose e outros açúcares redutores e é usado para testar a urina de diabéticos. 
	REAÇÃO DE BIURETO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Materiais utilizados: reativo biureto (composto derivado da ureia), solução ovoalbumina, água destilada, becker, pera de borracha e dois tubos. 
Tubo 1: 1ml de água destilada, e solução de biureto para identificar a presença dos peptídeos essa mudança perceptível porcausa da cor. 
Tubo 2: Foi adicionado ovoalbumina e Biureto, a identificação ocorre imediatamente tendo assim uma coloração violeta
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto.
O método se baseia na reação do reativo do biureto, que é constituído de uma mistura de cobre e hidróxido de sódio comum complexante que estabiliza o cobre em solução, sendo o tartarato de sódio o recomendado por Gornall e cols.9 O cobre, em meio alcalino, reage com proteínas formando um complexo quadrado planar com a ligação peptídica. O produto de reação apresenta duas bandas de absorção, uma em 270 nm e outra em 540 nm. Apesar da banda na região de 270 nm aumentar em seis vezes a sensibilidade do método do biureto14, a banda na região de 540 nm é a mais utilizada para fins analíticos, porque diversas substâncias, normalmente presentes na
maioria dos meios analisados, absorvem na região de 270 nm causando muita interferência no método.
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas?
Ligações peptídicas, onde ocorre positiva para proteínas e peptídeos com três ou mais resíduos de aminoácidos.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
A mudança da cor ocorreu aos poucos, foi perceptível que a cor violeta ocorreu no tubo 1 e em torno de 1 a 2 minutos começou a se intensificar, indicando a presença de proteína. Indicativo dos grupamentos de carbanimicos que interagem com o reativo Biureto.