RELATORIO DE AULAS PRATICAS EAD 2021 - Bioquimica Humana - 1

Prévia do material em texto

AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
 
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: BIOQUIMICA HUMANA – Aula 1 
 
NOME: Apoleana Lima De Lima MATRÍCULA:01549474 
CURSO: Estética e 
Cosmética POLO: Redenção 
PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Rosilma Oliveira 
 
TEMA DE AULA: ATIVIDADE CATALÍTICA DA AMILASE SALIVAR 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
A amilase é uma enzima que é produzida na saliva, ou seja, nas glândulas salivares dentro 
da cavidade oral. Serve para degradar um carboidrato (amido). O amido é um 
polissacarídeo conhecido como reserva das plantas. A ptialina como é conhecida 
tecnicamente (amilase salivar) é produzida nas glândulas salivares e inicia o processo de 
degradação dos carboidratos. 
 
 Identificação catalítica do amido 
Realização da técnica enzimática e química. Hidrolise química e hidrolise enzimática. 
A hidrolise enzimática será realizada a partir da utilização da amilase salivar. 
A hidrolise química será realizada a partir da utilização de ácido clorídrico. 
Os ácidos tem a capacidade de degradar as ligações glicosídicas que formam o amido de 
fazer a quebra que é realizada pela amilase salivar. 
 
As enzimas são proteínas, e elas tem uma característica de se desnaturarem de acordo 
com o meio em que elas são submetidas. Calor, temperatura, reação catalítica, substrato 
todos são componentes que podem alterar essa reação catalítica. Nesse processo iremos 
utilizar o banho de gelo e banho maria afim de verificar se essas alterações de temperatura 
também influenciam na reação catalítica em ambos os métodos. 
 
Solução para hidrose química 
Amido 1% 
Colocar 30 ml da solução de amido 1% na proveta e transferir para a Becker 
Dosar 3 ml da solução de ácido clorídrico (utilizar a pera de borracha e pipeta) e adicionar 
na solução de amido que está na Becker 
Balançar para homogeneizar 
Separar 3 tubos e adicionar 5 ml de água 
Adicionar 5 ml da solução que está no Becker em cada tubo (usar a pipeta e pera de 
borracha) 
Balançar os tubos para homogeneizar 
 
Solução para hidrolise enzimática 
Amido 1% 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
Colocar 30 ml da solução de amido 1% na proveta e transferir para o Becker 
Dosar 3 ml da solução de amilase salivar (utilizar a pera de borracha e pipeta) e adicionar 
na solução de amido que está no Becker 
Balançar para homogeneizar 
Separar 3 tubos e adicionar 5 ml de água 
Adicionar 5 ml da solução que está no Becker em cada tubo (usar a pipeta e pera de 
borracha) 
Balançar os tubos para homogeneizar 
 
A partir de agora serão realizadas as etapas para verificar se as mudanças de temperatura 
interferem no processo de hidrólise tanto na química quanto na enzimática. 
 
Tubos 1 
Pegar os tubos AA1 e AE1 colocar por 1 minuto no banho de gelo 
 
Tubos 2 
Pegar os tubos AA1 e AE1 colocar por 1 minuto no banho maria (temperatura em torno de 
70 graus) por 10 minutos e posteriormente no banho de gelo aproximadamente por 10 
minuto para retornar a temperatura. 
 
Tubos 3 
Colocar 20 minutos no banho maria e no banho de gelo. 
 
Resultados 
 
Verificar a reação da hidrolise utilizando solução de lugol 2% (concentração-solução de 
iodo que reage com a composição do amido formando uma estrutura esverdeada, escura 
azulada quando encontra o amido. 
Adicionar 5 gotas do lugol 2% em cada tubo e ver a reação. 
 
 
2. Materiais utilizados. 
 
Becker, tubos de ensaio, proveta, pipeta pera de borracha, banho maria, banho de gelo. 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Qual a composição do amido? 
 
O amido é um polissacarídeo formado pela união de moléculas de a-glicose da amilose e 
da amilopectina, sendo armazenado em diferentes órgãos vegetais. 
 
B) Comente os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise química 
do amido. 
 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
No tubo 1, a ser colocado o Lugol, não houve hidrolise, pois ainda se verifica a 
presença do amido (a solução ficou verde). Foi clareando com o tempo, indicado 
que o amido começou a degradar. 
No tubo 2, após se colocar as 5 gotas de Lugol, a solução ficou bem escura, ou seja 
não houve hidrolise. Indicando que esquentar os tubos previamente provoca uma 
alteração no resultado, já que nesta situação a solução ficou mais escura que a 
primeira. 
 
 No tubo 3, após passar 20 minutos no banho maria, foi levado para o banho de 
gelo ao adicionar o lugol e a mistura bem azulada indicando a presença do amido. 
 
 
C) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da 
hidrólise química do amido? 
 
R: Utilizar banho de gelo e banho maria, serve para verificar se essa alteração de 
temperatura influência na reação catalítica já que o ácido é essencial por ser um dos 
ácidos mais fortes. 
 
D) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da 
amilose. 
 
R: Polímero linear, com cerca de 200 moléculas de glicose em sua estrutura. 
 
E) os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise. Comente 
enzimática do amido 
 
R: AE1, AE2 e AE3 é notório que não houve degradação do amido. 
 
. 
F) Explique a relação entre a atividade da amilase salivar, o tempo de incubação da 
enzima com o amido e a variedade de cores observada no procedimento da hidrólise 
enzimática do amido. 
 
R: Existe uma relação direta entre as funções da amilase salivar no amido, pois, 
conforme haja uma variação da temperatura e do tempo de incubação, é perceptível 
uma mudança da tonalidade para mais escura em temperaturas mais elevada e o 
inverso com a dissolução do amido a tonalidade fica mais escura. 
 
 
4. Conclusão sobre a atividade catalítica da amilase salivar. 
 
R: Amido em contato com saliva e iodo, apresenta cor amarelada, já que a saliva reage 
com amido, quebrando-o e transformando-o em maltose. Conclui-se a importância da 
padronização de uma solução para verificar a sua concentração, visto que, está pode-se 
alterar e prejudicar experimentos executados com a mesma. 
 Referencias 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
Site de pesquisas 
Disponível 
https://www.scielo.br/j/rn/a/xZvWbFLLVBWyvwSJNKNnFsM/?lang=pt 
https://scholar.google.com.br/?hl=pt 
 Acesso em:29/08/2022 
 
TEMA DE AULA: REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE 
ALDOSES E CETOSES) 
 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
Aldoses e cetoses são grupos que são identificados dentro dos carboidratos. 
 As aldoses são grupos de carboidratos simples. Enquanto as cetoses são 
monossacarídeos que contem grupo cetona. Essa reação chamada de seliwanoff. E essa 
reação se dá poque as cetoses reagem com ácidos fortes, remos utilizar o ácido clorídrico. 
E ao reagir com esses ácidos fortes esse composto ele produz um composto chamado de 
furfural. O furfural reage com o resorciol. O resorciol é um composto derivado da ureia que 
está presente no reativo de seliwanoff, nesse caso a reação é feito uma diferenciação entre 
aldose ou cetose. Vamos utilizar a glicose que é uma aldose, um monossacarídeo simples. 
E a gente vai tentar identificar se a frutose é ou não a cetose se contem ou não o grupo 
cetona. 
 
A partir de agora serão realizadas as etapas para verificar se as mudanças de temperatura 
interferem no processo de glicose e frutose. 
 
Tubo de glicose 
Adicionar 1ml de glicose 
Adicionar 1,5ml de ácido de clorídrico (HCL) 
Homogeneizar 
Adicionar 0,5ml do reativo de Seliwanoff 
Agitar os tubos e levar ao banho maria ate visualizar o resultado 
Observar a coloração após 5 minutos em banho maria 
 
Tubo de frutose 
Adicionar 1ml de frutose 
Adicionar 1,5ml de ácido clorídrico (HCL) 
Homogeneizar 
Adicionar 0,5ml do reativo de Seliwanoff 
Agitar os tubos e levar para o banho maria até visualizar o resultado 
Observar a coloração após 2minutos no banho maria 
O tubo frutose ficou vermelho 
Tubo de água 
Adicionar 1,5ml de ácido clorídrico HCL 
Adicionar 0,5ml do reativo de Seliwanoff 
https://www.scielo.br/j/rn/a/xZvWbFLLVBWyvwSJNKNnFsM/?lang=pt
https://scholar.google.com.br/?hl=pt
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
Homogeneizar 
Levar ao banho maria por 2 minutos 
 
 
Resultados: 
 
Essa reação após a colocação do resorcinol que está no reativo de seliwanoff vai ser 
vamos obter o resultado. O produto que é formado na reação entre o furfural e o resorcinol 
que está no reativo de Seliwanoff vai ser vermelho, conseguimos perceber a coloração 
através dessa mudança de cor. Esse composto que é formado não tem uma composição 
definida e nem um nome definido, mas é visualmente percebido por conta da coloração 
vermelha. 
 
Tubo 1: O tubo da glicose permaneceu inalterado. 
Confirmando que ela não é uma cetose pois não tem produção do frufural com o resorcinol. 
 
Tubo 2: tubo frutose ficou vermelho 
Houve alteração na cor indica reação do resorcinol como o furfural. Indicando que ela é 
uma cetose. 
Tubo 3: Após levado ao banho maria e após 2 minutos permaneceu inalterada. 
 
2. Materiais utilizados. 
 
Tubos de ensaio, pipeta de borracha, banho maria 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Explique o princípio bioquímico do teste de Seliwanoff 
 
R: O teste de Seliwanoff é um teste químico que permite distinguir adoses de cetoses, 
baseia-se no princípio de que, quando aquecida, as cetoses sofrem alterações muito 
mais rapidamente do que as aldoses. 
 
B) Comente os resultados obtidos nos 3 tubos utilizados no procedimento, correlacionando 
com a presença ou não de aldoses e cetoses. 
 
R: Foram utilizados três tubos identificados com glicose, frutose e água, afim de 
verificar se contém ou não o grupo cetona. 
 
 
C) Explique qual o objetivo de utilizar um tubo apenas com água destilada 
 
R: A água destilada deve ser utilizada no laboratório para deixar as vidrarias 
completamente limpas, pois a água destilada é pura, então vai evitar que as análises 
sofram algum tipo de interferência. 
 
D) Qual a função do ácido clorídrico (HCl) e da fervura aplicados no teste de Seliwanoff? 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
 
R: A função do HCL no teste de Seliwanoff é a de desidratar os carboidratos, para 
que esse processo ocorra é preciso que haja energia no meio e essa energia vem 
da fervura. 
 
 
 
4. Conclusão sobre a identificação de aldoses e cetoses utilizando o teste de Seliwanoff. 
 
R: Confirmamos que entre a glicose e a frutose é que a frutose é uma cetose. Onde ocorre 
a reação a produção de furfural. Entre tanto tem a reação do resorcinol, dentro do reativo e 
Seliwanoff, então conseguimos perceber a coloração vermelha intensa. Desta forma 
concluímos a aula, onde conseguimos identificar a diferenciação entre as citoses das 
aldoses que são compostas do composto de carboidratos que são compostos em algumas 
classificações. 
 
 Referencias 
 
Site de pesquisas 
Disponível 
https://www.fciencias.com/2016/10/20/teste-seliwanoff-laboratorio-
online/#:~:text=O%20teste%20de%20Seliwanoff%20%C3%A9,grupo%20alde%
C3%ADdo%2C%20%C3%A9%20uma%20aldose. 
 
 
https://scholar.google.com.br/?hl=pt 
Acesso em 29/08/2022 
 
 
 
TEMA DE AULA: PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS 
 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
Precipitação por sais de metais pesados e por ácidos fortes: São biomoléculas muito 
importantes estruturais e funções catalíticas entre outras. Este procedimento é realizado 
para verificar a influência de sais de metais pesados e de ácidos fortes sobre a solubilidade 
da proteína, bem como a influência do pH sobre a carga líquida da molécula polipeptídica. 
 
Vamos fazer uma técnica onde podemos verificar que essas proteínas por terem aqueles 
compostos carboxílicos e estruturas químicas, elas podem reagir e podem precipitar com 
algumas substancias entre elas as principais fontes de precipitação de proteínas são 
ácidos fortes. E o acido usado é o tricloroacético 20%, porem também podendo ser 
utilizado ácido fluorídrico entre outros. Entre outras substancias com metais pesados que 
https://www.fciencias.com/2016/10/20/teste-seliwanoff-laboratorio-online/#:~:text=O%20teste%20de%20Seliwanoff%20%C3%A9,grupo%20alde%C3%ADdo%2C%20%C3%A9%20uma%20aldose
https://www.fciencias.com/2016/10/20/teste-seliwanoff-laboratorio-online/#:~:text=O%20teste%20de%20Seliwanoff%20%C3%A9,grupo%20alde%C3%ADdo%2C%20%C3%A9%20uma%20aldose
https://www.fciencias.com/2016/10/20/teste-seliwanoff-laboratorio-online/#:~:text=O%20teste%20de%20Seliwanoff%20%C3%A9,grupo%20alde%C3%ADdo%2C%20%C3%A9%20uma%20aldose
https://scholar.google.com.br/?hl=pt
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
poderiam ser usados também é o cobre, chumbo e mercúrio, para fazer essa precipitação 
usar também acetato de chumbo pra realização dessa precipitação e como matéria prima 
utilizar ovo albumina 10%. 
 
Tubo com ácido forte 
Homogeneizar 
Adicionar 2ml de ovo albumina 10% 
Adicionar 1 ml do ácido tricloroacético 
E a precipitação ela é imediata 
 
 
Tubo de metal pesado 
Tubo de acetato de chumbo 
Adicionar 2ml de ovo albumina 10% 
Adicionar 5 gotinhas do acetato de chumbo 
 Homogeneizar 
Vamos ter a mesma precipitação 
 
Resultados: 
Tubo 1: A precipitação ela é imediata, quando colocado já da para perceber um líquido 
leitoso, visualizando a precipitação e a formação de algumas grumas de proteínas. Ou seja 
isso indica uma precipitação da proteína pelo ácido forte. 
 
Tubo 2: Pode se perceber a mesma visualização, porém consegue-se ter uma visibilidade 
que no ácido tem uma precipitação mais intensa, pois ácido do forte ele tem a capacidade 
de quebrar as ligações peptídicas das proteínas mais do que o chumbo metal pesado. 
 
 
2. Materiais utilizados. 
 
R: Tubos de ensaio e pipeta 
 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Comente os resultados obtidos no procedimento da precipitação da ovoalbumina com 
ácido forte e metal pesado. 
 
R: Os ácidos fortes se desnaturam (precipitam) proteínas, transformando-as em meta 
proteínas que são solúveis. 
 
B) Qual a fundamentação teórica que explica o processo de precipitação das proteínas 
com ácidos fortes e metais pesados? 
 
R: A precipitação abaixo do ponto isoelétrico através da adição de ácidos fortes. 
 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
 C) O que ocorreu com a ovoalbumina para que ela formasse um precipitado insolúvel 
neste experimento? 
 
R: Isso ocorre como resultado de interações intermoleculares entre partes de uma mesma 
proteína ou entre várias cadeias ... 
 
4. Conclusão sobre a precipitação de proteínas por ácidos fortes e metais pesados. 
 
R: Com essa pratica é possível ver que além da modificação dos pontos elétricos em meio 
da questão do ponto de cargas iônicas e tudo isso que tem na proteína, de certo é um 
ponto que também é importante para precipitação de algumas estruturas e alguns tipos de 
elementos químicos que conseguem clivar e quebrar as estruturas da proteína fazendo 
com que nesse processo de precipitação a gente possa também fazer tanto com o ácido 
quanto com o metal pesado. 
 
Referencias 
 Site de pesquisas 
Disponível 
efaidnbmnnnibpcajpcglclefindmkaj/http://www.academico.uema.br/DOWNLOAD/Rote
irosProdutosNaturais_prote%C3%ADnas_EBAH.pdf 
 
efaidnbmnnnibpcajpcglclefindmkaj/https://edisciplinas.usp.br/pluginfile.php/5766961/
mod_resource/content/1/Aula%2010%20%2818-10%29.pdf 
 https://scholar.google.com.br/?hl=pt 
 Acesso em:30/08/2022 
 
 
TEMA DE AULA: PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS 
CONCENTRADAS 
 
 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
A precipitação fracionada consiste em um método em isolar cada íon num 
precipitado. O método de análise consiste em adicionar vagarosamente o agente de 
precipitação, formando e separando cada precipitado individual.Precipitação de 
proteínas por adição de sais tem (efeito da força iônica) Quando adicionamos sais 
neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica (aumento da 
concentração de íons) do sistema. 
O intuito da aula pratica é que a gente consiga em uma concentração onde temos 
vários tipos de proteínas fazer uma separação, então elas são muito utilizadas em 
colunas cilíndricas de resina para a separação das proteínas. 
 
Para a pratica vamos precisar da solução de ovo albumina 10%, lembrando que a 
ovo albumina é a proteína do ovo. Vamos utilizar também a solução de amônia 
concentrada que vai ser a nossa solução concentrada de sais ou seja concentração 
salina que vai proporcionar a precipitação das proteínas, usaremos também água 
https://scholar.google.com.br/?hl=pt
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
destilada como padrão negativo. Tubo A é onde a gente vai usar a solução de ovo 
albumina e a concentração de salina. Tubo B vamos adicionar a ovo albumina mais 
a concentração de sulfato de amônia mais a água destilada. 
 
 
Tubo A 
Adicionar 2 ml de solução de ovo albumina 
Adicionar 2 ml de concentração se salina 
Homogeneizar 
 
 
Tubo B 
Adicionar 2ml de ovo albumina 
Adicionar 2 ml de água 
Adicionar 2ml da solução de amônia 
 
 
 
Resultados: 
 
No tubo A: Assim que adicionada já se pode ver a precipitação se formando um 
composto leitoso esbranquiçado indicando a precipitação da proteína. 
 
No tubo B: Já nesse tubo quando adicionamos água não conseguimos perceber a 
formação desse precipitado. De certo como vimos no tubo A. 
Uma vez que usada água ela diminui e interfere na questão iônica das cargas e daí 
conseguimos ver o precipitado esbranquiçado no tubo A que demostra a 
precipitação das proteínas, nesse caso a ovo albumina com a concentração salina 
que foi o sulfato de amônia. 
 
 
2. Materiais utilizados. 
 
R: tubos de ensaio, pipeta de borracha. 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) O que é “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? 
 
R: A esse fenômeno dá-se o nome de "salting-in". Em condições de elevada força 
iônica, decorrente da adição de grandes quantidades de sal, temos o efeito 
contrário. A água, que apresenta um grande poder de solvatação, passa a interagir 
com as duas espécies: as proteínas e os íons provenientes da dissociação do sal. 
A solvatação é um mecanismo de dissolução em que íons negativos e positivos 
ficam envoltos por moléculas de solvente. 
 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
B) Explique o princípio Bioquímico da precipitação de proteínas por adição de soluções 
salinas. 
 
R: Quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força 
iônica do sistema. Assim, quando adicionamos pequenas quantidades de sal a uma 
solução contendo proteínas, as cargas provenientes da dissociação do sal passam a 
interagir com as moléculas proteicas, diminuindo a interação entre elas. 
 
 
C) Comente os resultados observados da precipitação da proteína por sulfato de amônio 
na presença e ausência da água, correlacionando com a solubilidade da proteína. 
Na proteína com sulfato de amônio assim que adicionada com a ovo albumina forma um 
composto leitoso ocorrendo a precipitação. Como consequência, temos maior interação 
proteína-proteína, diminuição da solubilidade em meio aquoso e, consequentemente, 
precipitação da proteína. A esse fenômeno de insolubilizacão da proteína em decorrência 
de um considerável aumento da força iônica do meio dá-se o nome de “Salting-out’. A água 
quando adicionada junto com a ovo albumina não ocorre a formação desse precipitado por 
que a água interfere diminuindo a questão iônica. 
 
4. Conclusão sobre a precipitação das proteínas por adição de sais neutros (soluções 
salinas concentradas) 
 
R: Enfim quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força 
iônica do sistema. Assim, quando adicionamos pequenas quantidades de sal a uma 
solução contendo proteínas, as cargas provenientes da dissociação do sal passam a 
interagir com as moléculas proteicas, diminuindo a interação entre elas. 
 
Referencias 
 
site de pesquisas 
Disponível 
 http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-
acidos-
fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da
%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes. 
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-
acidos-
fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da
%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes 
.Acesso em: 30/08/2022 
 
 
TEMA DE AULA: REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES 
REDUTORES) 
 
 
RELATÓRIO: 
 
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/precipitacao-por-sais-de-metais-pesados-e-por-acidos-fortes#:~:text=Essa%20precipita%C3%A7%C3%A3o%20%C3%A9%20mais%20intensa,da%20adi%C3%A7%C3%A3o%20de%20%C3%A1cidos%20fortes
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
Açúcares redutores são alguns carboidratos e hidroxila o OH em um dos carbonos que é o 
C1, e essa hidroxila consegue reagir com diversos íons, principalmente os metálicos e essa 
reação se baseia em uma ligação onde o carbono é chamado de Benedict. Esse reativo 
contem uns cúpricos que ao reagir com essa carbonila ela forma um composto chamado de 
oxido cuproso. E a partir daí podemos perceber que o reagente ele tem uma cor azul bem 
intensa, a reação positiva dessa junção entre a carbonila do açúcar redutor com os íons 
cúpricos. O íon cuproso desse reativo formará um composto vermelho tijolo que é uma 
coloração bem diferenciada desse reativo. Então a partir desta reação conseguiremos 
identificar quais são os principais açúcares redutores. 
 
 
 Nesta pratica iremos utilizar a glicose 1%, que é o nosso principal monossacarídeo, iremos 
tentar visualizar se ele é um açúcar redutor ou não. Iremos utilizar a solução de sacarose a 
1% que já é um dissacarídeo, utilizaremos também o reativo de Benedict. Novamente 
iremos usar a água que será nosso controle negativo. Iremos adicionar 5ml do reativo de 
Benedict em cada tubo é um azul intenso característica dos íons de cobre. 
 
Tubo de H20 
Adicionar 5ml do reativo de Benedict 
Adicionar 5ml de H2O 
Homogeneizar 
Colocar em banho maria em temperatura de 70 graus por 5 minutos 
 
Tubo de sacarose 
Adicionar 5ml do reativo de Benedict 
Adicionar 5ml da solução desacarose 
Homogeneizar 
Colocar em banho maria em temperatura de 70 graus por 5 minutos 
 
 
Tubo de glicose 
Adicionar 5ml do reativo de Benedict 
Adicionar 5ml da solução de glicose 
Homogeneizar 
Colocar em banho maria em temperatura de 70 graus por 5 minutos 
 
 
 Resultados: 
 
Tubo de H2O 
O tubo de H2O como esperávamos por ser um controle negativo não teve nenhuma 
reação, onde a cor continuou sendo a do reativo de Benedict não ocorreu alteração na cor. 
 
Tubo de sacarose 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
Na sacarose conseguimos perceber que também não houve reação na cor e não ocorreu 
reação entre os íons e isso significa que a sacarose não é um carboidrato redutor e não 
tem hidroxila, a hidroxila que faz a reação com os íons cúpricos cuprosos. 
 
Tubo de glicose 
Podemos ver que na glicose teve uma modificação não foi de fato uma reação vermelha 
tijolo, mais sim uma modificação pra cor esverdeada, indicando que ocorreu uma redução 
dos íons de cobre. Nesse caso não há a formação do oxido cuproso, mais se consegue 
perceber uma diferença entre sacarose e glicose que geralmente a aldose um agente 
redutor e o monossacarídeo é a frutose, enfim a sacarose não é redutora. 
 
 
2. Materiais utilizados. 
 
R: Tubos de ensaio, pipeta de pera, banho maria. 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Qual a composição do Reativo de Benedict? 
 
R: O reativo de Benedict consiste, basicamente, de uma solução de sulfato cúprico 
em meio alcalino (com muitos íons OH); e pode ser preparado através do carbonato 
e tem uma cor azul muito intensa. 
 
B) O que são açúcares redutores? 
 
R: Os açúcares redutores são carboidratos monossacarídeos, capazes reduzir os 
sais de cobre, prata e bromo em soluções alcalinas, pois possuem grupos aldeídos 
ou cetonas livres. 
 
C) Explique a fundamentação teórica do Teste de identificação de açúcares redutores com 
o Reativo de Benedict. 
 
 R: Os açúcares que apresentam a hidroxila livre no C-1 são bons agentes 
redutores. Por esse motivo a extremidade que contém o -OH passa a ser chamada 
extremidade redutora e o açúcar de açúcar redutor. A capacidade que esses 
compostos apresentam de reduzir íons metálicos em soluções alcalinas é um bom 
método de identificação desses compostos. 
 
 
 
 
D) Comente os resultados observados no experimento relacionando com a identificação de 
açúcares redutores. 
R:A formação de um precipitado vermelho ou esverdeado, indica a presença de um 
açúcar redutor. Substâncias a serem testadas: glicose, frutose, sacarose etc. 
 
 
 
 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
E) Exemplifique algumas aplicações deste teste na área clínica. É um teste qualitativo ou 
quantitativo? 
 
R: O teste é essencialmente qualitativo, ou seja, ele é usado simplesmente para 
verificar se um açúcar redutor está presente ou não para determinar a quantidade. 
No entanto, ele pode ser usado como um teste quantitativo bruto, na medida em que 
uma cor esverdeada indica apenas um pouco de açúcar redutor; amarelo, um pouco 
mais; e vermelho, muito. 
 
 
 
 
4. Conclusão sobre a identificação de açúcares redutores utilizando o Teste de Benedict. 
 
Concluímos esse teste, identificando esses principais açúcares redutores, como a 
glicose que é o nosso monômero e a sacarose. Essa pratica é importante afim de 
várias outras reações que ocorrem em relação aos carboidratos redutores que 
também são utilizados em diversas reações industriais entre outros seguimentos. 
 
Referencias 
 
 
 Disponível 
extension://efaidnbmnnnibpcajpcglclefindmkaj/https://downloads.editoracient
ifica.org/articles/210303948.pdf 
 
https://brainly.com.br/ 
https://scholar.google.com.br/?hl=pt 
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/teste-de-benedict-1 
http://plone.ufpb.br/ldb 
UNIVERSIDADE FEDERAL DA PARAÍBA - UFPB 
LABORATÓRIO DIDÁTICO DE BIOQUÍMICA 
CENTRO DE CIÊNCIAS EXATAS E DA NATUREZA – CCEN 
Acesso em: 01/09/2022 
https://brainly.com.br/
https://scholar.google.com.br/?hl=pt
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/teste-de-benedict-1
http://plone.ufpb.br/ldb