Mapa Mental - Parasitologia Clínica

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EX A ME PA RA S IT OL ÓGICO 
DE FEZ ES (EPF)
- FASE 
aNALÍTI CA
Mét odos 
Qual i t at i vos
Flu t u aç ã o 
Es pon t â nea
EPF - O 
ex ame é bar at o , 
de f ác i l ex ecu ção 
e de g r ande 
apl i cal i dade 
c l í ni ca.
 S e dimen t aç ã o 
Es pon t ã nea
FEZES
Ti po s de ex ames :
- Fase 
Pr é- anal ít ica
Ex ame 
Di r et o
- Cultura de 
fezes.
- Parasitológico 
de fezes. 
- Pesquisa de 
sangue oculto nas 
fezes.
- Pesquisa de 
rotavirus nas 
fezes.
S e dimen t aç ã o 
por 
Cen t r if ugaç ã o
1. Solicitação do exame: 
-Indicação do método a 
ser realizado. -Indicar 
parasita a ser 
pesquisado. 
2. Coleta da amostra/ 
orientações: 
-Procedimento para coleta. 
-Número de amostras. 
-Uso de conservantes, etc.
3. Transporte da amostra 
para o laboratório: -Envio 
imediato x arnazenamento 
em geladeira. - Coleta no 
laboratório.
- Exame 
Macroscópico
- Exame 
Microscópico
-Consistência das fezes; 
-Odor; - Resto de alimentos; 
- Presença de elementos 
anormais ( muco ou sangue 
e vermes adultos).
-Pesquisa de ovos e larvas de helmintos; 
trofozoítas e cistos de protozoários. - 
Uso de processos de enriquecimento e 
coloração. - Metódos gerais: 
Sedimentação Espontânea e 
Centrifugação; - Observação: '' Nenhum 
método é capaz de diagnosticar todas as 
formas parasitárias simultaneamente.''
- Permite vizualizar Protozoário (trofozoítas e cistos) e 
helmintos (ovos, larvaa e proglotes); - Fezes 
recém-emitidas (no máximo 30 minutos) e 
normalmente diarreicas. Método: - Colocar 60/70 mg 
de fezes em uma lâmina de microscopia (diluir em 
salina se necessário). Quando diluído em solução 
NaCl a 0.85% - Motilidade de trofozoítas e refração 
citoplasma dos cistos. - com lugol - Melhor definição 
da estrutura nuclear dos cistos. - Presença de detritos 
fecais - Revelação de poucoc detalhes estruturais. - 
Cobrir as fexes com lamínula ( embebida em solução 
aquosa de verde de malaquita a 3% ou lugol) - 
Examinar ao microscópio.
Cent r í f ugof l ut uação Conc en t r aç ã o de L ar v as de 
Helm in t os
Mét odos 
Quant i t at i vos
- Método de 
Hoffman, Pons & 
Janer (HPJ) e 
Lutz.
- Método de Faust.
- Mét odo de 
Baer mann- Mor aes, 
Rugai e Har ada.
-Análise microscópica. 
-Contagem da 
quantitativa de ovos e 
cistos por campos 
visuais ou por lâmina. - 
Classificação utilizada 
por cruzes(+/++++). - 
Pouco usada na prática.
- Mét odo de 
Kat o- Kat z.
-Pesquisa quantitativa de ovos 
de helmintos (principalmente 
S. mansoni). - Amostra de 
fezes de consistência normal, 
sem conservantes. - 
Vantagens: Método 
quantitativo, maior 
sensibilidade para ovos de 
S.mansoni. - Desvantagens: 
Tempo de procedimento (1-2 
horas), requer materiais 
especiais.
- Passo a passo: 1. Preparar uma solução de verde-malaquita 
(tem a finalidade de conservar as fezes e clarificar as formas 
parasitárias.) 2. Cortar papel celofane (24 x 30mm) e deixá-los 
mergulhados na solução de verde-malaquita por 24h. 3. 
Colocar sobre um papel higiênico uma porção da amostra de 
fezes. 4. Comprimir as fezes com um pedaço de tela metálica 
ou de náilon (trama 0.9mm). 5. Retirar as fezes que passaram 
para a parte superior da tela e transferi-las, com o auxílio de 
um palito para uma lâmina de microscopia. 6. Cobrir as fezes 
com lamínula depapel celofane embebida em 
verde-malaquita, inverter a lãmina sobre uma folha de papel 
absorvente e comprimi-la. 7. Aguardar 1 a 2 horas e analisar 
ao microscópio.
Mapa mental - Exame Parasitológico de Fezes
- Método Qualitativo: 
Hoffman, Pons & Janer 
(HPJ) - Método de 
sedimentação espontânea. - 
Permite o encontro de larvas, 
helmintos e cistos e 
protozoários. - Material: 
Cálice, bastão de vidro, fezes, 
água tratada, funil, gaze 
cirúrgica dobrada em quatro, 
lâmina, lamínula, lugol, 
canudinho ou pipeta. 
- Método Qualitativo: HPJ . - 
Técnica: Diluir as fezes em 
água tratada pelo bastão. - 
Coar a solução através de 
gaze assentada sobre um 
funil para um cálice. - Deixar 
sedimentar por 2 a 24h. - 
Com o canudinho ou pipeta, 
depositar uma gota sobre 
lâmina e colocar lamínula. - 
Observar em objetivas de 10 
e 40x. 
- Método Qualitativo: Faust - Método de 
centrífugo-flutuação. -Usado para a pesquisa 
de cistos de protozoários e ovos leves. - 
Material: - Solução de fezes e água; - 
Sulfato de zinco a 33%; - Tubos de 
centrífuga; -Alça de platina; - Lâmina e 
lamínula; - Centrífuga; - Lugol. Técnica: 
Coar solução em tubo de centrífuga e 
centrífugar a 2500 rpm. - Desprezar o 
sobrenadante e completar com água, 
centrifugar até ficar claro. - Adicionar o 
sulfato de zinco a 33% e centrifugar; - Com a 
alça de platina, recolher a película superficial 
e depositar em lâmina com lugol e observar 
em objetiva de 10 e 40x. - Vantagens: Maior 
sensibilidade para a detecção de cistos; - 
Desvantagens: Procedimento mais 
complexo, requer reagentes específicos.
- Método Qualitativo: Baermann - Moraes. - 
Método de concentração para identificação de 
larvas de helmintos (Strongyloides stercoralis) por 
migração ativa. - Propriedades de hidrotropismo e 
termotropismo positivos. - Material utilizado: 
Fezes em trouxa de gaze, peneira, água a 45ºC, 
funil ligado a borracha, pinça de Mohr, centrífuga e 
microscópio. - Pré-analítico: As fezes tem que ser 
recém emitidas e não se pode colher em frasco 
contendo MIF ou ouitro conservante. - Técnica: - 
Colocar 10 g de fezes sobre gaze dobrada em 
quatro, fazendo uma trouxinha. - Colocar o material 
sobre um funil conectado a um tubo de borracha à 
sua extremidade e fechado com uma pinça de 
Mohr. - Colocar água pré-aquecida a 45ºC de modo 
a emergir as fezes. - Deixar 1h em repouso. - 
Colher 5 ml, abrindo a pinça em tubo cônico de 
centrífuga. - Centrifugar. - Desprezar o 
sobrenadante. - Depositar em lâmina, corando com 
lugol e observar em microscópio óptico, em 
objetivas de 10 e 40x.
Método de Rugai: - Concentração de larvas 
de helmintos. - Passo a passo: 1. Retirar a 
tampa do recipiente que acondiciona as 
fezes e envolvê-lo em uma gaze dobrada 
em quatro fazendo uma pequena trouxa. 2. 
Colocar o material assim preparado, com a 
abertura voltada para baixo, em um cálice 
de sedimentação contendo água aquecida 
(45ºC) em quantidade suficiente para entrar 
em contato com as fezes. 3. Deixar 1 hora 
em repouso. 4. Coletar o sedimento no 
fundo do cálice com a ajuda de uma pipeta e 
colocar sobre uma lâmina. 5. Adicionar uma 
gota de lugol e obsevar ao microscópio. - 
Observação: Esse método só poderá ser 
realizado com fezes frescas e não 
diarreicas.
- Método de Blagg 
ou Mifc e Método 
de Ritchie.
- Método MIFc ou Blagg: Técnica de concentração 
por centrifugação. - Material: - Fezes em suspensão 
com água ou MIF. - Tubo cônico. - Éter. - Centrífuga. 
- Gaze montada em pinça. - Lâmina e lamínula. - 
Lugol. - Técnica: 1. Coletar as fezes recém 
eliminadas em líquido conservante de MIF e 
homogeneizar bem. 2. Filtrar a suspensão de fezes 
em gaze dobrada em quatro em um cálice de vidro. 
3. Transferir 1 a 2 mL do filtrado para um tubo cônico 
de centrifugação com capacidade para 15 mL. 4. 
Acrescentar 4 a 5 mL de éter sulfúrico e agitar 
vigorosamente (importante para desengordurar o 
material). 5. Centrifugar por 1 min a 1500 rpm. 6. 
Com o auxílio de um bastão, descolar a camada de 
detritos da parede do tubo. 7. Inverter o tubo para 
desprezar o líquido, mantendo-o com a boca voltada 
para baixo até limpar sua parede, utilizando um palito 
com algodão em sua extremidade. 8. Acrescentar ao 
sedimento gotas de solução salina e/ou lugol, e em 
seguida, colocar este material sobre uma lâmina, 
cobrir com lamínula e observar ao microscópio.
- Método de Willis.
- Método de Willis - Técnica de 
flutuação espontânea. - Passo a 
passo: 1. Colocar 10g de fezes em 
um frasco de Borrel (ou pode ser 
utilizado o próprio frasco no qual as 
fezes foram enviadas) 2. Diluir as fezes 
em solução salina saturada. 3. 
Completar o volume até a borda do 
frasco. 4. Colocar na boca dofrasco 
uma lamínula, que deverá entrar em 
contato com o líquido. 5. Deixar em 
repouso por 5 minutos a 1 hora. 6. Ao 
final desse tempo, retirar rapidamente 
a lamínula e colocá-la sobre uma 
lâmina, voltando a parte molhada para 
baixo. 7. Observar ao microscópio.
Nome: Jaqueline Gomes de Oliveira 
Matricula: 202303111932
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