POP STOLL MODIFICADO

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���PROCEDIMENTO OPERACIONAL PADRÃO��Exame Parasitológico de Fezes �P.O.P.: STOLL MODIFICADO��Emitido em 03/03/2014�Elaborado por: Júlio Vianna Barbosa�Aprovado por:��Revisão: 00�Revisado em: ��
1. OBJETIVO
- Desenvolver de forma prática a Técnica de Stoll modificado
- Analisar Infecções Parasitológicas;
- Desenvolver habilidades de análises Parasitológicas.
2. ABRANGÊNCIA
Alunos dos Cursos da Escola da Saúde - Biomedicina
3. RESPONSABILIDADE
Técnicos de Laboratórios, professores e alunos.
4. AÇÃO
4.1- Materiais:
1- Erlen Meyer graduado 56 a 60 milímetros cúbicos e com rolha: 10 unidades
2. Rolha de borracha: 10 unidades
3. Perolas de vidro: 10 unidades
4. Papel alumínio: 01 rolos
5- Hidróxido de Sódio (NaOH): 1000 ml
6- Pipeta de Pasteur de plástico com graduação: 20 unidades
7- Lâmina: 01 caixas
8- Lamínula: 01 caixas
9- Espátula de madeira: 20 unidades
10- Microscópios
4.2 - Procedimento:
1. EXAME MACROSCÓPICO
1. Antes da realização de qualquer técnica coproparasitologica, deve-se sempre proceder visualização detalhada da amostra coletada.
2. Evidenciando: odor, coloração e textura
EXAME MICROSCÓPICO
1. Usar luvas para realização de todo procedimento laboratorial;
2. Abrir o frasco de fezes frescas e retirar cerca de 2 gramas a 5 gramas de fezes, coletados de várias partes do bolo fecal;
3. Utilizar frascos tipo Erlen Meyer, estando no gargalo do mesmo indicados os níveis correspondentes 56 a 60 milímetros cúbicos; 
4. Colocar no frasco solução decinormal de Hidróxido de Sódio até a marca inferior, correspondente a 56cm cúbicos;
5. Juntar fezes até que o nível liquido atinja a marca superior correspondente a 60cm cúbicos.
6. Introduzir no frasco algumas pérolas de vidro, fechar o recipiente com rolha de borracha, parafinada ou envolta em papel de alumínio.
 
7. Agitar fortemente a fim de obter suspensão bastante homogenia.
8. Após a agitação, retirar 0,15 centímetros cúbicos da suspensão, usando pipeta de um centímetro graduada em centésimos.
9. Depositar essa quantidade de material em lâmina, cobrindo-a com lamínula de 22x40mm.
10. Contar o número de ovos na preparação toda, utilizando o “chariot” do microscópio e um menor aumento (10x).
11. Calcular o número de ovos por grama de fezes, multiplicando por 100 o valor encontrado.
12. Ao serem colocadas as fezes no frasco, a parte do gargalo superior á marca correspondente a 60ml precisará permanecer limpa, para que não exista excesso de material a ser examinado.
	É conveniente efetuar as agitações estando a rolha voltada para baixo e pressionada pelo dedo indicador; assim, dificilmente, as pérolas de vidro ocasionarão quebra de frasco.
	Para ser obtida suspensão adequada das fezes é recomendável, após a agitação inicial, apenas realizar o exame depois de 12 a 24 horas, uma vez, que dessa maneira, o contato prolongado com a soda será mais benéfico. Durante essa fase, o frasco precisará permanecer em geladeira ou em local onde não seja elevada a temperatura ambiente, a fim de que não ocorra evolução do embrião.
	Antes da retirada da quantidade de suspensão referida, decorrido o período de espera, é necessário agitar o frasco durante algum tempo, a fim de ser conseguida uma amostra homogenia. A pipetagem deverá ser realizada logo após a agitação, sendo aconselhável material da parte central do frasco.
	O exame de 0,15ml de suspensão em uma única preparação não é aconselhável, sendo melhor depositá-la em duas lâminas, sob lamínula de 24x32cm; essa mesma alternativa poderá ser executada em uma lâmina, se assim for julgado mais conveniente.
Alguns laboratórios preferem coletar somente 0,075ml da suspensão, contar o número de ovos presentes e multiplicar, ao final por 200; agem dessa forma por considerarem melhor trabalhar com menor quantidade de material.
	Convém repetir duas ou, especialmente três vezes a contagem, sendo coletado igual número de amostras da suspensão assim, obtida a medida respectiva, o resultado será sensivelmente mais vigoroso.
	Além da pesquisa de estruturas parasitárias, o exame microscópico do material fecal deve assinalar a presença de possíveis elementos indicadores de anormalidades intestinais. Como exemplificado pelo achado de células epiteliais em grande número associadas com hemácias, o que pode indicar processo ulcerativo intestinal.
Outro elemento de relevância é o encontro de numerosos leucócitos que sugere processo infeccioso, possivelmente de origem bacteriana.
4.3 Bibliografia
NEVES, D.P. Parasitologia Humana 12º ed. Editora Atheneu, 2011.
REY, L. Parasitologia. 4ª Ed. Editora Guanabara Koogan, 2008.
REY, L. Bases da Parasitologia Médica. 3ª Ed. Editora Guanabara Koogan 2010.
De CARLI, G.A. Parasitologia Clínica: Seleção e Uso de Métodos e Técnicas de Laboratório para o Diagnóstico das Parasitoses Humanas. 2º ed, Editora Atheneu, São Paulo, 2007.
COURA, J.R. Dinâmica das Doernças Infecciosas e Parasitárias. 1.ed Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2005. V. 02. 2025p.
Artigos Científicos da área.
Básica: 
Complementar
LEVISON, W. & JAWETZ, E. Microbiologia médica e imunologia. 8ª Ed. Editora Artmed, 2010
CIMERMAN, B.; CIMERMAN, S. Parasitologia humana e seus fundamentos gerais. 2º ed. São Paulo: Atheneu, 2002
CIMERMAN, B.; FRANCO, M.A. Atlas de Parasitologia: Artrópodes, Protozoário e Helmintos. Editora Atheneu, 1999
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