TECNICAS DE COLETA DE FEZES FWILTON

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FACULDADE DE ARACAJU
“PARASITOLÓGIA CLÍNICA”
TEMA:TÉCNICAS DE PREPARAÇÃO DE FEZES
MESTRE : PRISCILA SENA RIOS
ALUNO : FABIO WILTON MATIAS DOS SANTOS 
ARACAJU – SE OUTUBRO DE 2016
Exames Fecais
	O Exame de fezes engloba as análises macroscópicas, microscópicas e bioquímicas para pesquisar possível presença de sangramento gastrointestinal, distúrbios hepáticos e dos ductos biliares e problemas de mal absorção, bem como a presença de parasitas e bactérias patogênicas. 
	RECOMENDAÇÕES PARA AVALIAÇÃO:
	Funções digestivas;
	Dosagem da gordura fecal;
	Pesquisa de sangue oculto;
	Pesquisa de ovos de parasitas;
	Coprocultura.
TÉCNICAS UTILIZADAS
PROTOPARASITOLOGICO
	Este tipo de exame de fezes é feito para pesquisa de helmintos e protozoários nas fezes. O paciente deve evacuar em um recipiente limpo e seco e transferir uma porção das fezes que acabou de liberar para o frasco coletor, tomando cuidado para não ultrapassar a metade do deste. O paciente não deve fazer o uso prévio de laxantes ou supositório. Realizar a coleta preferencialmente pela manhã no dia da entrega ao laboratório. Apanhar 03 (três) porções pequenas do mesmo material fecal, em posições diferentes (começo, meio e fim das fezes). Se for preciso coletá-las no dia anterior, mantê-las armazenadas na geladeira. Colocar as fezes em recipiente adequado (oferecido pelo laboratório). 
SANGUE OCULTO
	Três dias antes da realização do exame, é necessário que o paciente inicie uma dieta livre de carnes e seus derivados, bem como alimentos coloridos e que possuam alta atividade de peroxidase, especialmente beterraba, espinafre, rabanete, nabo, brócolis, maçã, banana, couve-flor e melão. O paciente também não deve usar fármacos irritantes da mucosa gástrica, como anti-inflamatórios corticoides, aspirina e vitamina C.
Outra precaução que deve ser tomada é evitar o sangramento gengival durante a higiene bucal, e também, nos casos de hemoptise (sangramento nasal) ou sangramento anal, a coleta deverá ser evitada.
	As fezes entregues ao laboratório devem ser recentemente coletadas “fezes frescas”. Colocar as fezes em recipiente adequado (oferecido pelo laboratório), sem enchê-lo, pois a quantidade de amostra necessária para a análise é pequena. Não coletar durante o período menstrual ou quando houver sangramento local. Evitar o uso de medicamentos irritantes do trato gastrointestinal (analgésicos, anti-inflamatórios e vitamina C). OBS: A técnica laboratorial utilizada atualmente não obriga dieta alimentar para realização do exame, como era recomendado no passado.
GORDURA FECAL
	O paciente não pode estar fazendo uso de supositórios ou laxantes e deve evitar contaminação das fezes com urina. Acrescentar à dieta habitual do paciente:
03 (três) colheres de sopa de azeite;
03 (três) fatias de presunto gordo;
03 (três) colheres de sopa de creme de leite;
01 (uma) colher de sopa de manteiga (não pode ser margarina);
01 (uma) fatia de queijo.
	Esta dieta deverá ser iniciada 48 horas (dois dias) antes do início da coleta do material, e mantida durante o transcurso da coleta, que deverá ser feita por 72 horas (três dias), colocando todo o volume de todas as evacuações em um único recipiente plástico próprio, que poderá ser guardado na geladeira. Se o início da coleta se der às 10h do dia 17, por exemplo, seu término se efetuará às 10h do dia 20. Para sua própria orientação, não esqueça de assinalar no recipiente a data e a hora de cada coleta realizada, observando que é de extrema importância o exato registro dos horários para a realização do exame.
EXAME COPROLOGICO
	São inúmeros os métodos de exames coprológicos descritos na literatura, os quais podem ser qualitativos ou quantitativos, apresentando diferentes sensibilidades na detecção de ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários. A seguir, alguns dos métodos e soluções utilizados de rotina em laboratórios para análise.
EXAME DIRETO
	Utilizado para pesquisa de cistos de protozoários e ovos de helmintos. método pouco sensível e só apresenta resultados positivos em infecções massivas.
Procedimento: Adicionar solução de lugol às fezes, preparar a lâmina e observar direto ao microscópio em aumento de 100X e 400X.
MÉTODO DE HOFFMAN, PONS & JANER ou HPJ (Sedimentação espontânea)
	Utilizado na pesquisa de cistos de protozoários e ovos de helmintos.
1. Dissolver cerca de 10g de fezes em 10 ml de H2O em frasco pequeno
2. Filtrar em gaze dobrada em quatro, utilizando um cálice de sedimentação
3. Lavar o frasco 2X despejando a água na gaze
4. Completar o cálice com água e homogenizar com bastão de vidro.
5. Deixar em repouso de 2 a 24 horas.
6. Com uma pipeta tampada, retirar uma amostra do fundo do vértice do cálice, destampando a pipeta após imergi-la.
7. Examinar ao microscópio, adicionando uma gota da solução de lugol.
MÉTODO DE WILLIS
	Utilizado na pesquisa de ovos de helmintos.
1. Dissolver cerca de 5g de fezes em uma solução saturada de NACL.
2. Filtrar em gaze dobrada em quatro em frasco de Borrel e completar com a solução saturada de NaCl até formar um menisco convexo na boca do frasco.
3. Colocar uma lâmina por sobre as bordas do frasco para que fique em contato com o líquido ao menos por 5 minutos.
4. Retirar a lâmina sem escorrer o líquido e examinar ao microscópio.
MÉTODO DE FAUST 
Utilizado na pesquisa de cistos de protozoários e ovos de helmintos.
1. Dissolver cerca de 5g de fezes em 10ml de água e filtrar em gaze dobrada em quatro.
2. Depositar o material em tubo cônico de centrífuga e centrifugar a 1500 rpm por 2 minutos.
3. Desprezar o sobrenadante e suspender novamente em 10 ml de água.
4. Repetir os passos 2 e 3 até que o sobrenadante apresente-se claro.
5. Adicionar 10 ml de sulfato de zinco (ZnSO2) 33 %, densidade 1.180, homogenizar e centrifugar a 1500 rpm por 2 minutos.
6. Recolher com alça de platina a película superficial, adicionar uma gota da solução de lugol e observar ao microscópio.
	BIBIOGLÁFIA
VALLADA, E.P. Manual de exame de fezes. São Paulo: Atheneu, 2004. 
http://www.laboratoriosaolucas.com.br/
http://www.cenapro.com.br/index.asp/