Relatório Carboidratos Ana, Hugo,c Maysa, Natallia e Jesanias

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE PERNAMBUCO
CENTRO DE BIOCIÊNCIAS
LICENCIATURA EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS
DISCIPLINA: BIOQUÍMICA
PRÁTICA DE CARBOIDRATOS
Ana Célia Melo dos Anjos
 Hugo da Silva Souza
Jesanias Lira
Maysa Sabino da Silva
Natallia Vivian Nascimento da Silva
 
RECIFE, 28/09/2017
INTRODUÇÃO
	Os carboidratos são compostos feitos basicamente de carbono. “Mais da metade de todo o carbono orgânico do planeta Terra está armazenado em somente duas moléculas de carboidratos - amido e celulose” (CAMPBELL, 2000, p. 412). Esses compostos podem ser citados basicamente por duas nomenclaturas: Poliidroxialdeído e Poliidroxicetona. Isto pela presença do grupo orgânico aldeído e cetona na formação estrutural do carboidrato. Assim como as proteínas são polímeros de aminoácidos, os carboidratos são polímeros de monossacarídeos. Estas estão ligados por uma ligação chamada glicosídica. 	
	“Os carboidratos desempenham vários papéis importantes na bioquímica. Em primeiro lugar, eles são a principal fonte de energia.” (CAMPBELL, 2000). Como citado por Mary K. Campbell, os carboidratos representam a primeira fonte energética do corpo humano. Estruturalmente os carboidratos também se destacam quando observado o exoesqueleto de artrópodes. Os monossacarídeos são os monômeros mais simples. Quando ocorre uma ligação glicosídica dois monossacarídeos se arranjam para formar Oligossacarídeos. Este grupo de carboidrato possuem algumas combinações que se destacam: Sacarose, lactose e maltose. Uma última combinação de monossacarídeos resulta em polissacarídeos. Este grupo pode, ainda, ser dividido em homopolissacarídeo (quando formado de apenas 1 tipo de monossacarídeo) ou heteropolissacarídeo (quando formado de mais de 1 tipo de monossacarídeo). Celulose, amido, quitina e glicogênio são alguns polissacarídeos com mais destaque. Glicoproteínas é um glicoconjugado, ou seja, moléculas de proteínas e lipídeos ligados a grupos de carboidratos covalentemente. Eles são importantes para determinação do tipo sanguíneo. Os carboidratos também atuam como determinantes antigênicos, portanto.
 OBJETIVOS
Teste de Molisch: Identificar a presença de pentose e hexose. Sendo a pentose uma frutose e a hexose, uma glicose;
Teste de Bial: Identificar a presença de pentose, exclusivamente;
Teste de Seliwanoff: Obter a distinção entre aldose e cetose observando a diferença de tempo entre as reações;
Teste de Benedict: Identificar a presença de carboidratos redutores.
Teste de Iodo: Identificar polissacarídeos.
MATERIAIS E MÉTODOS
Os materiais e substâncias utilizados para a prática número 1 – Teste de Molisch foram:
Três tubos de ensaios
Pera
Pipeta
Solvente de glicose a 1%
Solvente de amido a 1%
Água destilada
Alfa Naftol
Ácido sulfúrico
Marcou-se três tubos de ensaio
Tubo 1: 2ml Sol. Glicose 1%, 5 gotas a-Naftol, 2 mL H2SO4
Tubo 2: 2ml Sol. Amido 1%, 5 gotas a-Naftol, 2 mL H2SO4
Tubo 3: 2ml Água destilada, 5 gotas a-Naftol, 2 mL H2SO4
O método utilizado foi marcar três tubos de ensaios; para todos, foi acrescentado 5 gotas de a-Naftol. No primeiro tubo foi acrescentado 2 mL de ácido sulfúrico na parede do tubo. Sem agitar, colocamos o tubo para descansar. Para os outros dois tubos de ensaio as substâncias foram adicionadas normalmente.
Prática 1 - Teste de Molisch – Resultados
OBS: Refizemos três vezes o teste por não estarmos conseguindo alcançar a solução ''bifásica'' já que era pra ter sido adicionado o ácido lentamente e não aconteceu.
 
	Tubo 1: Reagiu, mudando a coloração, e formando mistura heterogênea, pois continha glicose.
	Tubo 2: Reagiu, mudando a coloração, e formando mistura heterogênea, pois continha amido.
	Tubo3: Reagiu, mudando a coloração, e formando mistura heterogênea, pois continha frutose.
Foto: Natallia Vivian
Os materiais e substâncias utilizados para a prática número 2 – Teste de Bial foram:
Três tubos de ensaios
Pera
Pipeta
Reativo de Bial
Arabinose
Glicose
Água destilada
Todos os tubos foram levados ao banho maria por 30s.
Tubo 1: 1 mL Reativo de Bial, 1 mL arabinose
Tubo 2: 1 mL Reativo de Bial, 1 mL Glicose
Tubo 3: 1 mL Reativo de Bial, 1 mL Destilada
O método utilizado foi marcar três tubos de ensaios; para todos, foi acrescentado 1 mL do Reativo de Bial (HCL + Orcinol + FeCl3 ). A diferença nos tubos acontece na segunda substância adicionada que, pode ser, arabinose, glicose ou água destilada.
Prática 2 - Teste de Bial – Resultados
	 Tubo 1: Reagiu, coloração meio amarelada
	 Tubo 2: Reagiu, colocação meio amarelada
	 Tubo 3: Reagiu, coloração um pouco azulada
 
	Foto: Natallia Vivian
Os materiais e substâncias utilizados para a prática número 3 – Teste de Seliwanoff foram:
Quatro tubos de ensaios
Pera
Pipeta
Reativo de Seliwanoff (HCL + Resorcinol)
Solução de glicose
Solução de frutose
Solução de sacarose
Água destilada
 Todos os tubos foram levados ao banho maria com tempo de 1, 2, 4, e 6 minutos
Tubo 1: 3ml Seliwanoff, 1ml frutose;
Tubo 2: 3ml Seliwanoff, 1ml glicose;
Tubo 3: 3ml seliwanoff, 1ml sacarose;
Tubo 4: 3ml Seliwanoff, 1 mL de solução de água destilada.
Cada tubo contém uma substância diferente de carboidrato: Monossacarídeo, dissacarídeo. No tubo controle, água destilada. 1 mL de cada substância foi adicionada.
Prática 3- Teste de Seliwanoff – Resultados
	Tubo/Tempo
	1min
	2min
	4min
	6min
	1
	-
	-
	++
	+++
	2
	-
	-
	-
	-
	3
	-
	-
	+
	++
	4
	-
	-
	-
	-
Foto: Natallia Vivian
Os materiais e substâncias utilizados para a prática número 4 – Teste de Benedict foram:
Quatro tubos de ensaios
Pera
Pipeta
Reagente de Benedict
Solução de glicose
Solução de frutose
Solução de sacarose
Água destilada
Tubo1: 3ml Bennedict, 1ml glicose;
Tubo2: 3ml Bennedict, 1ml frutose;
Tubo3: 3ml Bennedict, 1ml sacarose;
Tubo4: 3ml Bennedict, 1ml água destilada.
 
Levar os tubos ao banho maria por 3 minutos.
	 Tubo1: Reagiu, ficando com a coloração meio vinho;
	 Tubo2: Reagiu, ficando com a coloração embaixo azul e em cima laranja;
	 Tubo3: Reagiu, ficando com a coloração embaixo azul e em cima laranja como o tubo2;
	 Tubo4: Não reagiu, permaneceu a coloração azul.
Prática 4 - Teste de Bennedict – Resultados
Tubo1: Reagiu, ficando com a coloração meio vinho;
Tubo2: Reagiu, ficando com a coloração embaixo azul e em cima laranja;
Tubo3: Reagiu, ficando com a coloração embaixo azul e em cima laranja como o tubo2;
Tubo4: Não reagiu, permaneceu a coloração azul.
Foto: Natallia Vivian
Os materiais e substâncias utilizados para a prática número 5 – Teste de Iodo foram: 
Três tubos de ensaios
Pera
Pipeta
Solução de glicose
Solução de lugol
Solução de amido
Água destilada
 
 Reversão da reação pelo calor: Interações fracas entre iodo e polissacarídeo
 Tubo1: 1ml de amido, 2gts de lugol;
 Tubo2: 1ml de glicose, 2gts de lugol
 Tubo3; 1ml de água destilada, 2gts de lugol.
Prática 5- Teste de Iodo – Resultados
	
Tubo1: Reagiu, coloração violeta
	
Tubo2: Reagiu, coloração amarelada
	
Tubo3: Reagiu, coloração amarelada
Foto: Natallia Vivian
CONCLUSÃO
Foi possível notar que os 5 experimentos tiveram finalidades diferentes. Usando também reagentes diferentes. No primeiro experimento de Molisch foi preciso refazer três vezes para chegarmos ao resultado necessário e esperado. No segundo experimento pudemos observar somente a pentose. No experimento de bennedict curioso foram os resultados já que os o reagente de bennedict era de coloração azul.Print screen sobre o copia e cola do relatório de Carboidratos
REFERÊNCIAS
LEHNINGER, A. Lester. Fundamentos de Bioquímica. 4ª ed. São Paulo: Sarvier, 2006.
CAMPBELL, Mary K. Bioquímica. 3 ed. Artmed, 2001