Baixe o app para aproveitar ainda mais
Prévia do material em texto
1 Infecções da Corrente Sangüínea 2 Introdução Bacteremia: presença de bactérias na corrente sangüínea. Sepse ou septicemia: infecção da corrente sanguínea. 3 Introdução - Bacteremia Causas: Cirurgias; Passagem de cateter no TU; A partir do intestino; Infecções: pneumonia, meningite, infec. feridas, traumáticas, artrite, osteomielite, peritonite, etc – bacteremia transitória. Via endovenosa – fluidos contam, cateteres ou locais de picadas de agulhas. 4 Introdução - Sepse Causas: Infecção no organismo (pulmão, abdome, TU ou pele); Cirurgia; Inserção de qualquer objeto estranho; Utilizam drogas injetáveis; Comprometimento do sist. imune. 5 Sintomas: Tremores, calafrios, febre elevada, fraqueza, náuseas, vômitos e diarréia; Infecções: Metastáticas – diferentes partes do corpo. meningites pericardite; Localizadas endocardite; osteomielite; grd articulações. Introdução - Sepse 6 Diagnóstico: Febre elevada súbita; no de leucócitos; Hemoculturas +; Tratamento: risco de morte 2 antibióticos (empíricos); Descalonamento (bactéria específica) Cirurgia p/ eliminar a fonte da Infecção (ex. um abscesso); Remoção do cateter. Introdução - Sepse 7 Sintomas: Redução do estado de alerta; Confusão mental; Redução da pressão arterial; Respiração rápida; Calafrios, aum. temperatura, pele avermelhada, pulso acelerado; Falha dos órgãos (rins, pulmões e coração); Coagulo nos vasos sangüíneos. Introdução – Choque Séptico 8 Exames: ou leucócitos; plaquetas provas de função renal Sintomas evidentes paciente UTI Introdução – Choque Séptico 9 UTI a P.A. . Insuficiencia pulmonar Ventilação mecânica Doses elevadas de antibióticos Adm grd vol de líq.; Dopamina ou noradrenalina; Introdução – Choque Séptico 10 Objetivo: A cultura de sangue é realizada para identificar bactérias ou outros M.O.s sempre que houver razão p/ suspeitar de bacteremia clinicamente significante. Grande valor diagnóstico e de grande importância no prognóstico do paciente. Hemocultura 11 Princípio: O isolamento e identificação de microrganismos que possam estar envolvidos em um processo infeccioso na corrente sanguínea. Hemocultura 12 Coleta: Deve ser programada p/ obtenção de 2 a 3 amostras de locais diferentes; Colher o mais próximo possível do episódio febril (bacteremia precede a febre); Amostras coletadas em pico febril – resultados negativos. Intervalo de tempo entre as coletas – mín. de 15 min. Hemocultura 13 Coleta: Fazer rigorosa antisepsia da pele do paciente, utilizando um algodão umedecido com álcool 70%. Deixar o álcool agir por pelo menos 1 minuto; Hemocultura 14 Coleta: Hemocultura Enquanto isso, romper o lacre central e friccionar algodão umedecido com álcool na tampa de borracha do frasco de hemocultura; PREENCHER ADEQUADAMENTE LOCAL, NO AMOSTRA, HORÁRIO. 15 Coleta: Puncionar a veia do paciente e coletar no mínimo de 5 ml de sangue. Transferi-lo imediatamente para o frasco de hemocultura. A amostra será automaticamente aspirada para o interior deste. Misturar bem p/ evitar coagulação. Adulto: 5-10 mL em cada frasco Infantil: 1-4 mL em cada frasco Hemocultura 16 Anticoagulantes: Hemocultura Evita a coagulação no frasco; Inibe o efeito antibacteriano do soro e dos fagócitos; Inativa alguns antibióticos. Polianetol-sulfanato de sódio (SPS) 17 Inoculação do sangue: Hemocultura Precaução: Não preencher totalmente os frascos!! Seguir os volumes padronizados. Se frascos p/ bactérias aeróbias e aneróbias inocular primeiramente no frasco anaeróbios evitando assim a entrada de ar para o interior destes frascos. 18 Frascos automação: Hemocultura Negativo Positivo 19 Frascos manuais: Hemocultura Adulto Pediátrico 20 Frascos automação: Hemocultura Aeróbico - Detecção de organismos aeróbios Anaeróbico - Detecção de organismos anaeróbios Meio para detecção de organismos aeróbios com carvão ativado Meio para detecção de organismos anaeróbios com carvão ativado Meio para detecção de organismos de pacientes pediátricos com carvão ativado Detecção deMycobacterium de amostras comuns Detecção de Mycobacterium em líquidos estéreis e sangue. 21 Adaptadores automação: Hemocultura Usados como acessório para facilitar a transferência de sangue para o frasco de cultura. O encaixe para auxiliar no enchimento dos tubos de coleta a vácuo. 22 Adaptadores automação: Hemocultura Coleta diretamente com a garrafa. 23 Automação: Hemocultura 24 Tempo crítico p/ chegada ao lab.: Hemocultura O PROCESSAMENTO DEVE SER EFETUADO O MAIS RÁPIDO POSSÍVEL APÓS A COLETA. Enviar o frasco próprio, com meio de TSB (Trypticase Soy Broth) até 4 hora ao laboratório (não refrigerar); 25 Meios de Cultura: Adequado para crescimento de todos micro-organismos clinicamente significante: Hemocultura 26 Tempo de incubação: Método manual: Incubação a 35-37oC; Frascos inspecionados 2x por dia; Negativo – cam. de céls. Verm. sedimentadas coberta por um caldo transparente amarelo; Positivo – deposito de mat. floculado sobre a cam. de sg., hemólise e produção de gás. Hemocultura 27 Tempo de incubação: Método manual: Subculturas cegas Hemocultura após 18-24h incubação; ao término de 7 dias de incubação; Processamento final Transferir 1 gota da cultura (bem misturada) p/ placas com ágares; Coloração de Gram. 28 Tempo de incubação: Método automatizado: Culturas Hemocultura apenas dos frascos cujo aparelho sinalizou + Processamento final tempo de teste – 5 a 6 dias; Coloração de Gram. Transferir 1 gota da cultura (bem misturada) p/ placas com ágares; 29 Isolamento e Identificação: Culturas Hemocultura Repiques para os meios de processamento inicial Coloração de Gram Esquema de Identificação Antibiograma - TSA A. Sangue, A. MacConkey, A. Chocolate 30 Principais Microrganismos Isolados: Hemocultura Gram positivos: S. epidermidis, S. aureus, S. agalactiae, E. faecalis, S. pneumoniae, S. pyogenes, etc. Gram negativos: E. coli, H. influenzae, N. meningitidis, P. aeruginosa, S. maltophilia, S. marcescens, A. baumanii, E. cloacae, K. pneumoniae, etc. Leveduras: C. albicans, T. glabrata, C. tropicalis 31 Fatores de erros : Fagocitose e destruição dos M.O. pelos PMN; Bactérias com parede celular defeituosa após exposição a antimicrobianos; Contaminação c/ S. epidermides microbiota normal; Erros técnicos. Hemocultura 32 Rotina estabelecida: Hemocultura 30 min Liberação de Resultados parciais: Vigilância 24h; Gram e semeadura; Envio de planilha com Gram_parcial; Telefone (plantão); 33 Vantagens da Automação: Hemocultura Não sofre variações Contínuo monitoramento da amostra; Controle de qualidade muito melhor que os métodos convencionais; Rapidez do diagnóstico; Resultados mais precisos; Alta sensibilidade - aumento da detecção de amostras positivas; 34 Vantagens da Automação: Hemocultura Menor risco de contaminação laboratorial, apenas as amostras post. são repicadas Economia de tempo e material (agulha e seringa) Realização de levantamentos estatísticos através do software Curva de crescimento dos frascos positivos na memória por tempo indeterminado. 35 “QUEBREM AS CORRENTES DOS SEUS PENSAMENTOS E CONSEGUIRÃO QUEBRAR AS CORRENTES DO CORPO…” Fernão Capelo Gaivota Richard Bach 5-May-14 35 Automacao - Hemocultura 36 37
Compartilhar