Exame parasitológico

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Análises 
laboratoriais em 
Parasitologia
Noções gerais
Recolha de amostras
� Sangue capilar
� Recolha - dedo ou lobo da orelha
� Para pesquisa de paludismo
• rejeita-se a primeira gota
• realizar esfregaço e gota espessa
� Para pesquisa de tripanossomose 
• utiliza-se a primeira gota
• realizar esfregaço
Recolha de amostras
� Urina
Recolha de urina - de manhã, antes de tratamento
O paciente deve começar a urinar e, sem parar, 
recolher então a urina para o frasco (urina vesical)
Em casos específicos pede-se a análise sobre o 
primeiro jacto de urina (recolha uretral)
Para a pesquisa de ovos de Schistosoma haematobium:
deve-se indicar ao paciente que saltite alguns 
minutos antes de urinar
Recolha de amostras
� Fezes - Coprologia
Exame directo
� Observação microscópica do material a analisar, 
directamente ou como suspensão em água destilada 
ou soro fisiológico, entre lâmina e lamela
� Vantagens
• Grande simplicidade
• Fácil execução
Exame directo
� Desvantagens
• Indicação de uma quantidade mínima
• Resultado negativo - as conclusões não são 
exactas
• Os resultados não têm valor, a não ser que sejam 
positivos
• No caso de fezes, esta técnica não permite senão 
a eliminação de grandes partículas, 
permanecendo outros elementos que dificultam a 
observação
Exame directo
� Indicações
• Suspeita da presença de larvas de S. stercoralis
• Suspeita da presença de ovos de S. mansoni
(superfície das fezes)
• Suspeita de Trichomonas vaginalis
• Sempre que necessário
Micrometria
� Por vezes, é necessário medir as células para 
precisar o diagnóstico - estão neste caso certos 
trofozoitos e quistos de protozoários bem como ovos 
de helmintas
� As medidas fazem-se facilmente dispondo do 
micrómetro de ocular e do micrómetro de 
objectiva
Micrometria
� Normalmente, utiliza-se a objectiva 10x para 
medições de ovos de helmintas e a objectiva 40x 
para a medição de quistos de protozoários
� A medição de ovos tem interesse, sobretudo quando 
há necessidade de confirmar diagnóstico 
� Há ovos de helmintas nas fezes que se prestam a 
confusões dadas as suas características semelhantes 
sendo necessário recorrer às dimensões
� Dimensões - maior certeza do diagnóstico
Coprologia
Definição
� A coprologia parasitária põe em evidência e identifica 
parasitas que vivem no tubo digestivo do homem (ou 
animais), ou aqueles para os quais as fezes 
constituem o veículo normal das suas formas de 
disseminação no meio exterior
� A exactidão do exame parasitológico depende de uma 
estreita colaboração entre o médico assistente e o 
analista
Exame parasitológico
� Cada parasita necessita de uma técnica específica 
que lhe é adaptada. Torna-se necessário fornecer ao 
analista os elementos de orientação para a escolha do 
método, tais como: 
� Origem geográfica do doente 
� Principais sinais clínicos 
� Resultados de exames anteriormente efectuados 
� Terapêutica em curso ou recentemente efectuada
Exame parasitológico
� Um exame isolado e negativo não tem qualquer 
significado clínico
� A amostra deve ser rapidamente examinada (fezes 
recentemente colhidas)
� Prescrição de 3 exames coprológicos com alguns dias 
de intervalo - preparação correcta do doente
� Sempre que possível, as fezes devem ser emitidas no 
laboratório
Exame parasitológico
� Aspectos importantes num exame parasitológico de 
fezes
� Exame macroscópico 
� Aspecto microscópico de digestão 
� Presença e abundância de certos elementos
� Presença de parasitas animais 
Exame parasitológico
� Exame macroscópico 
� Consistência 
� Cor 
� Grau de oxidação 
� Presença de muco, sanguinolento ou não
Exame parasitológico
� Aspecto microscópico de digestão
� Ter em conta os diferentes tipos de alimentos e o seu 
grau de degradação, que fornece a indicação da sua 
origem 
• Gorduras
• Proteínas
• Hidratos de carbono
• Celulose 
Exame parasitológico
� Presença e abundância de:
� Muco
� Hemácias
� Leucócitos
� Células do epitélio intestinal 
Exame parasitológico
� Presença de parasitas animais
� Ovos
� Larvas
� Vermes inteiros ou fragmentos
� Quistos ou formas vegetativas de protozoários
Exame parasitológico
� O exame parasitológico das fezes não dá qualquer 
auxílio quando: 
� O intestino não é a via normal de eliminação dos 
elementos de diagnóstico dessa parasitose 
� A postura do helminta ocorre na região peri-anal 
� O parasita é ainda jovem ou imaturo
� O número de parasitas é reduzido (mas tenderá a 
aumentar)
� A infecção é recente
� A colheita é feita num período negativo
Preparação do doente
� Muitos exames coprológicos são falsos negativos 
porque os doentes não foram submetidos à
indispensável preparação ou então foram-no de um 
modo incorrecto ou insuficiente
� Todas as informações devem ser dadas ao doente de 
uma forma simples e clara
Preparação do doente
� As causas de resultados falsos negativos são várias, 
sendo as mais importantes:
� Medicamentos opacos ou não absorvíveis 
• aumentam o volume dos sedimentos da 
centrifugação ou das películas de flutuação 
� Alimentos ricos em resíduos 
• certos alimentos deixam resíduos significativos -
pode ser normal ou não 
� Consistência anormal das fezes
Colheita de fezes
� Utilizar um recipiente seco, bem lavado e etiquetado 
com a identificação do doente
� Os frascos devem ser transparentes e de boca larga
� Indicar ao doente que deve enviar ao laboratório a 
totalidade da deposição e isenta de urina
� Fornecer frascos com uma capacidade tal que, após a 
colheita, não fiquem demasiado cheios - evitar 
projecções provenientes de gases existentes
Exame parasitológico
� Todo o exame parasitológico de fezes comporta:
� Exame directo
� Exame após concentração 
� Quer se trate do exame directo ou do exame indirecto 
após enriquecimento é necessário percorrer toda a 
preparação com a objectiva 10x
� Estruturas suspeitas - passar para a objectiva 40x
Métodos de concentração
� Objectivo
� Reunir num pequeno volume os elementos 
parasitários inicialmente dispersos numa grande 
massa fecal
� Os métodos de concentração são muito numerosos
� Cada método tem as suas indicações precisas
Métodos de concentração
� Dividem-se em dois grupos
� Métodos físicos - por sedimentação, por flutuação
� Métodos bifásicos - 2 etapas: 
• uma fase de separação dos detritos mais 
volumosos e cujo peso específico é nitidamente 
diferente dos elementos parasitários 
• uma fase de concentração por sedimentação dos 
elementos parasitários já isolados 
Métodos de concentração
� Métodos físicos
� As fezes devem ser diluídas:
• num líquido cuja densidade é inferior à dos 
elementos parasitário - concentração por 
sedimentação
• num líquido cuja densidade é superior à dos 
elementos parasitários - concentração por 
flutuação
� Sedimentação ou flutuação podem ser acelerados 
por centrifugação ou podem ser espontâneas
� Os detritos pesados ou volumosos devem ser 
previamente eliminados por homogeneização da 
amostra seguida de tamização
Métodos de concentração
� Métodos bifásicos
� 2 fases líquidas não miscíveis, uma aquosa e outra 
constituída por um solvente de lípidos
� Ao colocar em presença as duas fases vai surgir um 
coeficiente de partilha cujo valor é condicionado por 
cada elemento fecal
� Os elementos cujo balanço hidrófilo - lipófilo tende a 
favor dos grupos hidrófilos encontram-se na fase 
aquosa e depositam no fundo do tubo a centrifugar, 
caso contrário o elemento fica em contacto do lado 
do solvente orgânico e participa na formação do anel 
que se forma na interfase
Métodos quantitativos� Numeração de ovos de helmintas
� Contagem de ovos - permite deduzir o número de 
vermes adultos albergados pelo doente
� Muitos factores podem fazer variar este número, mas 
a ideia indica que a infecção é real, e é suficiente 
para: 
• inquéritos epidemiológicos - índice de infecção 
duma colectividade humana 
• orientar um diagnóstico - ex. anemia / 
Ancylostoma
• decidir a terapêutica 
• controlar a eficácia de um tratamento 
Testes especiais
� Pesquisa de sangue oculto nas fezes
� A presença de sangue nem sempre é visível a olho nu
� A hemorragia do aparelho gastrointestinal pode ser aguda 
ou crónica, grande ou ligeira, visível ou oculta, podendo 
ocorrer em qualquer ponto do tubo digestivo
� A presença de sangue nas fezes deve ser sempre 
valorizada
� Certos medicamentos podem provocar perdas de sangue a 
nível gastrointestinal
� Grandes perdas de sangue na parte alta do aparelho 
gastrointestinal conferem às fezes cor de alcatrão: melenas
� Pequenas perdas de sangue não alteram o aspecto das 
fezes - sangue oculto
Testes especiais
� Fecatest (teste para a detecção de sangue oculto)
� Suporte de plástico com uma placa de resina de 
guaiaco que é oxidada num composto corado (azul) 
devido à libertação de oxigénio
� Se as fezes têm sangue contêm a fracção heme da 
hemoglobina - na presença do reagente das 
peroxidases liberta o oxigénio proveniente do 
peróxido de hidrogénio e oxida a resina de guaiaco 
(Reacção de Weber)
� Interferem nesta determinação: 
• Sais de ferro 
• Vestígios de compostos que têm o grupo heme
• Clorofila e peroxidases vegetais
Testes especiais
� Fecatest (teste para a detecção de sangue oculto)
� Dieta
• Nos 2 dias que antecedem a colheita, o doente 
deve abster-se da ingestão de carne, peixe e 
vegetais crus
• Não deve ingerir sais de ferro
• Não deve tomar vitamina C porque esta é
responsável por resultados falsos negativos
Testes especiais
� Método de Graham ou da fita adesiva
� Emprega fita-cola transparente montada na 
extremidade de uma espátula
� Tocar 2 a 3 vezes a face com cola da fita na região 
peri-anal e, em seguida, distendê-la sobre uma 
lâmina de microscopia
� Não sendo possível a observação microscópica 
imediata, a preparação mantém-se alguns dias em 
condições de exame
� Enterobius vermicularis
Testes especiais
� Método de Hall ou do tampão anal
� Utilizar um raspador - uma vareta de vidro, metal ou 
madeira em que uma das extremidades é coberta por 
um pequeno pedaço de papel celofane. A ponta da 
vareta, revestida pelo papel celofane, é esfregada 
nas regiões anal e perianal e depois distendida, como 
se tratasse de um lamela, sobre uma lâmina de vidro 
que será examinada ao microscópio
� Enterobius vermicularis