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Relatorio da aula pratica GENETICA.rtf 003.rtf00000300000

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UNIVERSIDADE FEDERAL RURAL DE PERNAMBUCO - UFRPE
 BACHARELADO EM ENGENHARIA FLORESTAL
Aluno: Roberto Mardônio de Oliveira
Curso: Engenharia Florestal
Professor: Prof. Dr. Levy Paes Barreto
Departamento: Departamento de Química - Recife
Relatório de aula prática da disciplina Bioquímica Vegetal
DETERMINAÇÃO DE AMIDO
(Manihot esculenta)
Recife, 
Outubro de 2017
INTRODUÇÃO
O Amido é reserva nutricional mais importante proveniente das plantas
superiores (sementes, tubérculos, rizomas e bulbos) é de fácil digestão e é
essencial na alimentação humana. 
Há diferentes tipos de amidos, de modo que suas naturezas podem apresentar
diferentes propriedades. Eles são utilizados para diversos fins pela indústria de
alimentos, tais como nutricional, tecnológico, funcional, sensorial e estético e
podem ser modificados de acordo com as necessidades específicas da indústria
de alimentos. 
O amido está presente na maioria dos vegetais, com a função inicial de
armazenar energia coletada pela fotossíntese. A principal razão para a
conversão fotossintética de açúcar em amido é que esta forma de
armazenamento é vantajosa para a planta pois a molécula de amido é insolúvel
em soluções aquosas, à temperatura ambiente e, dessa maneira, não provoca
desequilíbrio osmótico, como o açúcar armazenado em grandes quantidades.
Várias estruturas das plantas são capazes de sintetizar amido como a folha, o
caule, raízes e grãos. No entanto, somente alguns vegetais possuem a
capacidade de sintetizar amido em quantidade suficiente para ser passível de
extração comercial, são eles: tubérculos, raízes e grãos. Através do método de
Eynon-Lane é possível determinar o teor de amido de uma amostra desde que a
glicose seja hidrolisada, a partir daí utilizando cálculos estequiométricos pode-
se conhecer quanto de amido existe numa amostra.
MATERIAIS E MÉTODOS
Na determinação do amido existente na batata pelo método Eynon-Lane, foi
utilizado 3,0574 g da amostra preparada e transferida para um elermeyer (125
ml) e acrescentou-se 50ml de água destilada, em seguida, o elermeyer foi
colocado em uma mesa agitadora por 30 minutos para que os açúcares solúveis
fossem solubilizados. Após 30 minutos na mesa agitadora a amostra, contida no
erlenmeyer, foi filtrada. À medida que a filtração ocorria era adicionada ao funil
que continha a amostra água destilada para que todos os açúcares fossem
removidos. Depois da filtração a amostra foi transferida para um erlenmeyer
(500 ml) e acrescentado 200 ml de água destilada. Com uma pipeta graduada
foi transferido para o erlenmeyer 20 ml de HCl 8 M e adaptado ao erlenmeyer
um tubo refluxador. Em seguida o erlenmeyer adaptado com o tubo de refluxo
foi colocado em um aquecedor por três horas. Após as três horas, esperou-se
esfriar o erlenmeyer com amostra e foi adicionado NaOH 2,5 M e um papel
indicador para que o pH fosse e levado (levemente ácido). Em seguida, foi
adicionado 4 ml de acetato neutro de chumbo (54,3° Brix), e homogeneizado e
acrescentado 6 ml de fosfato-oxalato. Depois o conteúdo foi transferido para um
balão volumétrico de 500ml e completado seu volume com água destilada. Com
o auxílio de um suporte universal, um funil e um erlenmeyer a amostra foi
filtrada, e com o filtrado encheu-se uma bureta com 25 ml da solução. Em
seguida, a bureta foi zerada para titulação da solução de Soxhlet. Na
preparação da solução de Soxhlet, foi pipetado em um erlenmeyer 20 ML da
solução A e 20 mL da solução B, usando pipetas volumétricas. A solução de
Soxhlet foi agitada suavemente e com uma pipeta volumétrica, transferiu-se 2
porções de 10 mL, para erlenmeyers individuais, com capacidade para 250 mL. 
Ensaio definitivo: 
A bureta foi preenchida e zerada com o filtrado e em seguida pegou um
erlenmeyer contendo 10 mL da solução de Soxhlet e adicionou a frio,
aproximadamente 15,5 mL do filtrado. Em seguida o erlenmeyer foi colocado
para aquecer por 2 minutos, após o início da fervura, foi adicionou 3 gotas de
azul de metileno e a solução, imediatamente, mudou para cor vermelho tijolo.
Então foi necessário fazer a diluição, na proporção de 1:1, ou seja, 25 ml de
solução para 25 ml de água destilada, e novamente foi repetido o processo de
titulação onde o volume gasto foi de 24,8 ml. Como os valores 24 e 25 ml são
correspondentes, ambos 49,8 ml, o volume não foi considerado.
RESULTADOS E DISCURSÕES
Quantidade de glucose
( Quantidade de glucose. 
24,8 mL do filtrado ---- 49,8 mg de glucose 
500 mL do filtrado ---- X 
X= 1.004,03 mg de glucose ou 1,00403 g de glucose 
% de glucose
% de glucose. 
3,0574 g da amostra ---- 100% 
1,00403 g de glucose --- Y 
Y= 32,84% de glucose na amostra 
% Amido
 % Amido 
% amido= % glucose x 0,9 
% amido= 32,84% x 0,9 
% amido= 29,55%
CONCLUSÃO
Nas indústrias agroalimentares, os amidos e derivados são utilizados como
ingredientes, componentes básicos dos produtos ou aditivos adicionados em
baixas quantidades para melhorar a fabricação, apresentação ou conservação.
Os produtos de hidrólise (xarope de glicose ou de maltose, maltodextrinas) e de
isomerização (iso-glicose ou frutose) são utilizados nas indústrias de balas,
doces, chocolates, bolos, pastelarias, assim como nas indústrias de geléias e
sobremesas, por seus poderes anti-cristalizante, adoçante ou de
higroscopicidade (faculdade de reter a água). No Brasil, dois terços da fécula de
mandioca produzida são utilizados pelo setor alimentício na forma nativa.
O amido é um importante alimento nutritivo tanto para as pessoas quanto para
as indústrias. A dosagem de amido é muito importante para as empresas de
fécula, pois permite estabelecer o rendimento de extração e a qualidade do
produto a ser comercializado. Para ter conhecimento dos vegetais que são ricos
em amido é necessário analisar, a princípio sabe-se que as maiores reservas de
amido são encontradas nos tubérculos, raízes e grãos. No entanto a quantidade
de amido na cultura da macaxeira é influenciada por práticas culturais, tipo de
solo e fertilização, incidência de pragas e doenças. Então, para se determinar a
quantidade de amido em vegetais pode-se utilizar o método Eynon-Lane, apesar
de não ser um método direto baseado na hidrólise do amido, é um método
barato e não exige equipamentos de alto custo.

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