Parasitologia Clinica - Resumo Metodos

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São inúmeros os métodos de exames coprológicos descritos na literatura, os quais possuem vários 
princípios e podem ser qualitativos ou quantitativos. Grande parte das técnicas são modificadas 
com o tempo para melhorar a identificação dos parasitas e, por apresentarem diferentes 
sensibilidades na detecção de ovos, larvas e cistos, geralmente é necessário o uso de mais de um 
procedimento durante a análise. 
 
Formas evolutivas de helmintos eliminadas via anal 
Ovos - Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, Enterobius vermicularis, Ancylostoma 
duodenale, Necator americanus, Taenia solium, Taenia saginata, Hymenolepis nana, 
Schistosoma mansoni. 
Larvas - Strongyloides stercoralis. 
Adultos - Ascaris lumbricoides, Taenia spp. (proglotes), Enterobius vermicularis. 
 
Formas evolutivas de protozoários eliminadas via anal 
Cistos / trofozoítos - Giardia lamblia, Entamoeba histolytica / E. dispar, Entamoeba coli, 
Endolimax nana, Iodamoeba bütschlii, Chilomastix mesnili, Blastocystis hominis (apenas cisto). 
 
EXAME DIRETO: Utilizado para pesquisa de cistos de protozoários e ovos de helmintos, é 
um método pouco sensível e só apresenta bons resultados em infecções massivas. Adiciona-se 
solução de lugol à amostra de fezes depositada sobre a lâmina e este é observada em microscópio. 
 
MÉTODO DE HOFFMAN, PONS & JANER: Pela sedimentação espontânea, este método 
baseia-se na diluição das amostras fecais em água e filtração através de uma tira de gaze em um 
vidro de sedimentação cônico. O método HPJ é utilizado para detectar a presença de ovos, larvas 
de helmintos e cistos de protozoários. Devido ao baixo custo, é amplamente utilizada em 
estudos epidemiológicos. 
 
MÉTODO DE WILLIS: Método de flutuação baseado na capacidade dos ovos de helmintos 
flutuarem na superfície de uma solução saturada com cloreto de sódio e se aderirem ao vidro. 
Nesta técnica, uma solução saturada com as fezes emulsionadas é depositada em um frasco de 
fundo redondo, onde um menisco é formado na superfície. Em seguida, o frasco é coberto com 
uma lâmina e, após vários minutos, a mesma é removida e examinada em microscópio. 
 
MÉTODO DE FAUST: No método de centrífugo-flutuação utilizado para a pesquisa de cistos 
de protozoários e ovos de helmintos, as fezes são homogeneizadas, filtradas em gaze e 
depositadas em tubo cônico com uma solução saturada de sulfato de zinco. Após centrifugação, 
retira-se a película superficial com uma lamínula e esta é depositada em uma lâmina de vidro para 
observação em microscópio. 
 
MÉTODO DE RITCHIE: Para a pesquisa de cistos de protozoários, as fezes são conservadas 
com solução de MIF (Mertiolado-Iodo-Formaldeído), filtradas e deixadas em repouso por 
aproximadamente 20 minutos. Então adiciona-se éter, o tubo é agitado vigorosamente e por fim 
centrifugado. Após a centrifugação, o sobrenadante é desprezado, restando o sedimento para 
análise em lâmina com lugol. 
 
MÉTODO DE BAERMANN-MORAES: Utilizada para a detecção de larvas de nematoides 
em amostras fecais, o método é baseado no termotropismo e hidrotropismo das larvas, que 
apresentam tendência à sedimentação. Esta técnica consiste em colocar as fezes em contato com 
água morna (40-45º C) durante aproximadamente 1 hora. As larvas presentes nas fezes migram 
para o meio líquido mais quente e assentam no fundo do balão, de onde a amostra é coletada para 
análise microscópica. A diferenciação entre as larvas de Strongyloides stercoralis e 
ancilóstomo é obtida pela análise das características morfológicas, principalmente dos 
vestíbulos bucais. 
 
MÉTODO DE GRAHAM: O método da fita adesiva é utilizado na pesquisa de ovos de 
Enterobius vermicularis. Com o auxílio de um tubo de ensaio, realiza-se pressão em uma fita 
gomada transparente (parte colante) sobre o ânus e região perianal. Os ovos e, ocasionalmente, as 
fêmeas adultas se aderem à superfície pegajosa da fita, que é colada na lâmina e observada em 
microscópio. 
 
 
MÉTODO DE KATO-KATZ: Uma técnica de semi-concentração utilizada para a detecção 
qualitativa de ovos de parasitas. Frequentemente é usado um kit comercial, quando as amostras 
de fezes são comprimidas em uma malha para concentrar a amostra e separar os detritos. Em 
seguida, as amostras são transferidas para uma lâmina através de uma placa perfurada que define 
uma quantidade uniforme de fezes. Só então a placa perfurada é removida e a amostra de fezes 
coberta por um papel celofane umedecido em glicerina ou verde malaquita, aplicando-se uma 
pressão sobre a lâmina. Após cerca de 30 minutos de repouso, o material pode ser analisado em 
microscópio.