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UNIVERSIDADE FEDERAL DO OESTE DO PARÁ – UFOPA. INSTITUTO DE BIODIVERSIDADE E FLORESTAS – IBEF PROGRAMA DE BIOTECNOLOGIA – Pnat2012 MARCADORES MOLECULARES Enzimas de Restrição e Produção in silico de Géis de Eletroforese. JOSE CÁSSIO FIGUEIRA COSTA Atividade presentada como quesito avaliativo da disciplina de Marcadores Moleculares, ministrado pelo Profº Drº Carlos Ivan, docente do Curso de Biotecnologia (2012). Santarém – Pará Outubro de 2014 Enzimas de Restrição e Produção in silico de Géis de Eletroforese. Inicialmente, aconselha-se a utlização de sequências de DNA curtas, devido a dificuldade de montar um esquema em forma de gel eletroforético, podendo gerar géis com bandas desordenadas e imprecisas, visto que dependendo da enzima de restrição utilizada, pode haver multiplas clivagens, sendo elas por vezes muito próximas (gerando pequenas sequências), ao mesmo passo que pode ocorrer clivagens com produtos extensos, tonando a montagem do gel abstruso. PASSOS PARA ESCOLHA DA SEQUÊNCIA. Entrar no Site: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/ Barra de Pesquisa: Adicionar termo de indexação referente ao gene, sequência, animal, planta, microorganismo, etc., de interesse. Aba Expansiva: Escolha o tipo de dado desejado, assim evitando buscas extensivas. Selecionar: “Nucleotide”. Após escolha do tipo de dado (Banco de dados) e inserção do termo de indexação, pesquise (“Search”). A página de resultados mostrará diversas sequências de nucleotídeos depositados do GenBank relacionados ao que foi pesquisado. Escolha uma sequência de interesse dentre os diversos dados, e clique sobre o título com a qual a sequência foi depositada. Uma página contendo todos os dados referentes à sequência de nucleotídeos, além do trabalho do qual tal dado se originou, etc. além da sequência de DNA irão carregar. Como o site comercial da BioLabs utiliza (“Roda”) apenas sequências em formato FASTA (>*****) ou o ID da sequência, clique na Aba “Display Settings”. Selecione o formato (“Format”) “FASTA (text)” e clique em “Apply”. E copie toda a sequência (Ctrl + C), ou copie o código dado ao lado de GenBank. Com a sequência já copiada, inicia-se o segundo passo. PROCESSO DE BUSCA DE ENZIMAS EM SITE COMERCIAL (NEB cutter 2v). Acessar o site: http://tools.neb.com/NEBcutter2/ É uma página comercial da BioLabs Inc. que indicará enzimas específicas que clivam uma sequência de DNA de interesse. Adicione a sua sequência na área “or paste in your DNA sequence”. E marque a caixa “All commercially avaible specificities”. Clique “Submit”. Uma página contendo um gráfico aparecerá, o qual mostra a sequência de DNA e as diversas enzimas que a clivam e o local onde ocorre o “Corte”. A partir disso, pode-se apurar os dados apresentados definindo em quantos locais a enzima deve clivar (Em 1, 2, 3, 4, 5, etc.). Em “Display” há duas opções ( 2 “Cortes” ou 3 “Cortes”), e em “List” (0 “Corte” ou 1 “Corte”), esse parâmetro defini a quantidade de produtos que se deseja obter após a clivagem. Exemplo: Será selecionado uma enzimas de restrição que clivam em dois pontos diferentes na sequência. Gerando 3 sequências com pesos moleculares diferentes, as quais, em eletroforese irão formar 3 bandas distintas no gel (Imagem hipotética). Enzimas Logo, foram selecionados 3 enzimas que clivam 1, 2, 3 e 5 vezes a sequência de DNA de interesse. O primeiro foi com apenas 1 “Corte” (“Cutters”). Ao clicar em “1 cutters”, uma página mostrará uma lista com as enzimas “lado esquedo” e os locais onde ocorre a clivagem “lado direito”. Selecione 3 enzimas, e observe os tramanhos das sequencias resultantes da clivagem. Vamos observar: A enzima Accl, cliva entre o nucleotídeo 337/339, gerando duas sequencias, visto que a enzyma cliva em apenas 1 ponto. Devemos levar em consideração: O tamanho total da sequência de DNA. Visto que o aplicativo mostrou que a enzima cliva na posição 337, logo esse será o produto I, e o segundo produto? Bem, a posição de corte é entre 337 e 339, logo o segundo seguimento inicia-se em 339 e se estende até o fim da sequência, assim, ao fazermos a diferença (1.329 pb – 339 pb = 990 pb), o resultado é o segundo produto, para confirmação, soma-se as bases de ambos os produtos (337 pb + 990 pb = 1.327 pb), o resultado dará um valor próximo ao total de bases, visto que ao fazermos a diferença na área onde ocorreu a clivagem (sequência de reconhecimento) (337 pb – 339 pb = 2 b), duas bases, nesse caso, não entrou no calculo total. EM OUTRO CASO: Se a enzima escolhida clivar em 2 partes diferentes da sequência de DNA? Duas clivagens em uma única sequência, gerará 3 produtos (sequências), logo, vamos observar a enzima bfuCI. A clivagem gerará 3 sequências, sendo duas pequenas (baixo peso molecular) e uma grande (alto peso molecular). Para definir o tamanho de cada sequência, realiza-se o mesmo método realizado acima. O produto I possui 66 pb, o produto II inicia em 70 pb e finaliza-se em 1.319 pb, logo, faz-se a diferença entre ambos (1.319 pb – 70 pb = 1.249 pb), logo o produto II tem 1.249 pb e por ultimo o produto III, o qual inicia-se na posição 1.323 pb, logo faz-se a diferença com o total (1.323 pb – 1.329 pb = 6 pb), gerando um produto de apenas 6 pb. Ao somar (66 pb + 1.249 pb + 6 pb = 1.321 pb), gera valor proximo ao valor total de bases da sequência a ser clivada, não entrando no cálculo as bases que ficam entre cada clivagem ( 66 pb – 70 pb = 4 b; 1.319 pb – 1.323 pb = 4 b), essa sequência demarca o ponto onde a enzima ancora e cliva (sequencia de reconhecimento). Esse local onde a enzima clivou, gera ou não “pontas adesivas”. A partir dos produtos (sequencia clivada), produz-se o gel eletroforético. Base (b) Par de Bases (pb) Vale lembrar: A enzima BsiEI, apresenta-se na posição 3’/ 5’, logo os locais onde a enzima cliva, aparecem de forma inversa (293/291), diferente da enzima BfuCI na posição 5’/ 3’ (66/70) e o “blunt”, corte direto sem formação de “pontas colantes”. Logo, se olharmos os locais de corte da enzima bsiEl, observa-se que a posição 291 pb, é o produto I (Posição 5’), logo, (293 pb – 459 pb = 166 pb), e por ultimo, 1.329 pb – 461 pb = 868 pb, ao somar, apresenta valor: 1.325 pb + 4 b (local do corte – “ponta colante”) = 1.329 pb. DESENHANDO UM GEL ELETROFORÉTICO. Com os produtos (sequências resultantes da clivagem) já definidos, pode-se dispor essas sequencias em ordem decrescente, sendo que cada “poço” da eletroforese, conterá apenas os produtos de uma determinada enzima. PRIMEIRO PASSO: Criar um esquema (Utilizar PowerPoint) SEGUNDO PASSO Tabelar as amostras em ordem decrescente (do maior para o menor), sendo que, quanto maior o tamanho da sequência, maior é seu peso molecular, valor versamente proporcional (nesse caso). Enzimas Accl bfuCI BsiEI Produtos (sequências) 990 pb 1.249 pb 868 pb 337 pb 66 pb 291pb - 6 pb 166 pb Placa de corrida da Amostra Identificação da Amostra Enzimas de restrição (DNAse) Régua de contagem. Definir conforme a necessidade TERCEIRO PASSO Disposição das amostras na placa, levando em consideração o seu tamanho (tamanhoda sequência) e a régua de contagem (lateral da placa). Adicione e calibre as bandas de forma que se aproxime o máximo do valor na régua, porém sempre haverá erro nesse caso, logo, alinhe o mais próximo. Geralmente, sequências com tamanhos de valores aproximados, não se percebe a diferença em gráficos desenhados desta forma, logo, deve-se extender a régua, de modo que se possa diferenciar as sequências, nesse caso não há necessidade, pois este é apenas um tutorial básico. ATIVIDADE Encontre na base de dados do NEB cutter, enzimas de restrição que clivem 1 vez, 2 vezes, 3 vezes e 5 vezes, sendo que serão três enzimas para cada tipo de corte e desenhe um gel eletroforético distribuindo todos os produtos (sequências) de acordo com a enzima que o produziu. (Escolha uma sequência no NCBI, e identifiqiue devidamente). Resposta:
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