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SANEAMENTO AMBIENTAL EXPERIMENTAL TH 758 DHS – PPGERHA - UFPR AULA PRÁTICA 2 - Determinação da demanda biológica de oxigênio (DBO) - Método Winkler (azida sódica) e Oxitop 1. Princípio do método – Método de Winkler A determinação da DBO consiste em medidas da concentração de oxigênio dissolvido nas amostras, diluídas ou não, antes e após o período de incubação de 5 dias a 20 ºC. Durante esse período ocorrerá redução da concentração de OD na água, consumido por microrganismos aeróbios nas reações bioquímicas de decomposição de compostos orgânicos biodegradáveis. 1.1 Equipamentos, vidrarias e materiais Garrafão para água de diluição (compatível com o volume necessário no ensaio) Incubadora termo-regulável (20±1ºC) Frascos de DBO de 300ml Pipetas volumétricas/micropipetas Béckeres Erlenmeyer Bureta de 50ml 1.2 Reagentes Solução tampão de fosfato Solução de sulfato de magnésio Solução de cloreto de cálcio Solução de cloreto férrico Água de diluição 1.3 Preservação da amostra Após a coleta, a amostra deverá ser mantida refrigerada, com validade de até 24 horas para o início da análise (incubação) 2. Procedimento experimental – Método Winkler 1. Regular o pH das amostras para 6,8 a 7,2 quando estiverem a temperatura ambiente. Utilize para o ajuste soluções levemente ácidas ou básicas como HCl 0,01 mol.L-1 ou NaOH 0,01 mol.L-1; Obs. caso haja a necessidade de correção do pH, as amostras deverão ser incubadas com adição de semente. 2. Adicionar ao frasco de DBO identificado, a amostra ou amostra mais a alíquota da diluição. O Standard recomenda pelo menos 5 diluições. As diluições devem ser decididas com base na concentração de DQO ou conhecimento anterior do conteúdo orgânico. 3. Anotar o nº e volume do frasco e a porcentagem da amostra adicionada em uma ficha de controle padrão; 4. No caso de diluição da amostra, completar o volume do frasco com água de diluição evitando a formação de bolhas e turbulências; 5. Preparar, considerando a necessidade de diluição, amostra em réplica de modo que possibilite a medição do ODinicial e ODfinal; 5. Medir o ODinicial em um dos frascos. 6. Levar as amostras de DBO5 para a incubação (20±1ºC); (segundo frasco de cada amostra) 7. Após 5 dias determinar a concentração de ODfinal da amostra por meio do método modificado pela azida sódica (ver POP-01); 2.1 Cálculo da DBO – Método Winkler sem semente ( / ) I F OD OD DBO mg L P 5 em que : ODI = concentração de OD inicial (mg.L -1 ) ODF = concentração de OD final (mg.L -1 ) P = fração volumétrica da amostra utilizada (ml) 2.3 Descarte dos resíduos Depois de finalizada a etapa de titulação o resíduo gerado nas leituras de DBO, pode ser descartado diretamente na pia sem necessidade de um pré-tratamento. 3. Princípio do Método respirométrico/manométrico - OXITOP Baseia-se numa amostra em uma garrafa âmbar sob quantidade suficiente de microrganismos e nutrientes a temperatura controlada de 201ºC e que por meio de agitação faz com que o O2 presente na câmara de ar se dissolva no líquido. Os microorganismos respiram este oxigênio dissolvido na amostra durante o processo de degradação da matéria orgânica, exalando CO2, que é absorvido pelos grânulos de NaOH p.a contido em um reservatório de borracha, produzindo uma diferença de pressão na garrafa, que é medida pelo sensor Oxitop, cujo sistema realiza este leitura digital e conversão dos valores para mg O2.L -1 . 3.1 Equipamentos, vidrarias e materiais Garrafas de DBO Oxitop Bandeja de agitação magnética Agitador magnético Incubadora termo-regulável (20±1ºC) Pipetas volumétricas Frascos volumétricos padrão 3.2 Reagentes NAOH (pa) em pérolas Solução tampão de fosfato Solução de sulfato de magnésio Solução de cloreto de cálcio Solução de cloreto férrico Solução de cloreto de amônio 3.3 Preservação da amostra Após a coleta, a amostra deverá ser mantida refrigerada, com validade de até 24 horas para o início da análise (incubação) 4. Procedimento analítico: Método respirométrico/manométrico - OXITOP 1. Com o valor da DQO da amostra ou a faixa de DBO esperada e de acordo com estes valores observar na Tabela 1, o volume da amostra e solução nutriente a ser transferido para a garrafa de Oxitop; Tabela 1. Especificação dos valores de amostra e volume de solução nutriente utilizados na quantificação de DBO, a partir do procedimento OXITOP segundo as faixas de DBO. DBO ESPERADA (mg.L -1 ) VOLUME DE AMOSTRA (ml) VOLUME DE SOLUÇÃO NUTRIENTE (ml) 0 – 40 432 1,7 0 – 80 365 1,5 0 – 200 250 1,0 0 – 400 164 0,6 0 – 800 97 0,4 0 – 2000 43,5 0,2 2. Transferir o volume de amostra no frasco de DBO Oxitop; 3. Pipetar o volume da solução nutriente, que é composta por: a. 6ml da solução de tampão fosfato; b. 2ml da solução de sulfato de magnésio; c. 2ml da solução de cloreto férrico; d. 2ml da solução de cloreto de cálcio; e. 2ml da solução de cloreto de amônio. 4. Colocar a barra magnética dentro da garrafa; 5. Adicionar de 2 a 4 pastilhas de NaOH (p.a) no reservatório de borracha; 6. Colocar o reservatório com cuidado na boca da garrafa; 7. Fechar a garrafa com o sensor e colocar sobre o sistema de agitação; 8. Ligar o sistema de agitação e verificar os agitadores; 9. Pressionar simultaneamente as teclas M e S até que apareça no visor do sensor “00”; 4.1 Cálculo da DBO – Método Oxitop A concentração final da DBO5 será dada após o término da análise no leitor do sensor do Oxitop. 4.2 Descarte do resíduo gerado – Método Oxitop Depois de finalizada as leituras no equipamento OXITOP, o resíduo (amostra e mistura de solução nutriente) pode ser descartado diretamente na pia sem necessidade de um pré-tratamento. 5. Referências STANDARD METHODS, methods 4500 - O C & 5210 B (Apha, 1998)
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