ELETROMICROGRAFIAS   Explicadas
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ELETROMICROGRAFIAS Explicadas

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Fig.1 - MITOCÔNDRIA ao ME de transmissão (MET). Observe:

dupla membrana, cristas,matriz com grânulos eletron-densos e

retículo endoplasmático rugoso (RER) nas suas proximidades.

Fig.2 – MITOCÔNDRIAS arredondadas com cristas finas e
alongadas em adipócito multilocular.

Fig.3 – MITOCÔNDRIAS fraturadas e observadas ao ME de
varredura

Fig.4 –
MITOCÔNDRIAS

alongadas

concentradas junto às

pregas basais dos

túbulos proximais do

rim, fornecendo energia

para o transporte de

íons.

Fig.5 – MITOCÔNDRIAS com cristas tubulares cortadas
transversalmente, características de células secretoras de

esteróides.

Fig.6 – CRISTAS MITOCONDRIAIS vistas através do método
de coloração negativa ao MET, com partículas elementares

internas (setas) onde ocorre a síntese de ATP.

Fig.7 – Grânulos de GLICOGÊNIO organizados em “rosetas” e
associados ao RE liso em hepatócito.

Gustavo
Sticky Note
n pus

Fig.8 – MEMBRANA PLASMÁTICA ao ME de transmissão.
Observe 2 unidades de membrana (aspecto trilaminar)

separados por espaço intercelular.

Fig. 9 - Microvilosidades intestinais em corte tranversal

Fig.10 – CRIO-FRATURA
(freeze-fracture) mostrando

interior da membrana

plasmática: face P com

maior número de partículas

intramembranosas do que

a face E.

Fig.11 – FREEZE-ETCHING de hemácia mostrando face P
com grande número de partículas intramembranosas e

superfície externa (S) exposta pela sublimação do gelo

(etching).

Fig.12 – Comparação de célula animal observada ao ME de
transmissão em : A) corte ultrafino B) crio-fratura

Fig.13 – GLICOCÁLICE
(surface coat) em célula

absortiva intestinal. Observe

também mitocôndrias

próximas às

microvilosidades fornecendo

energia para a absorção de

substâncias

Fig.14 – Leucócito emitindo
pseudópodes para

englobar corpo estranho

(PSEUDÓPODES).

Fig.15 – Vesículas de
micropinocitose em célula

endotelial de capilar

sanguíneo (setas) e emissão

de lamelipódios.

(PINOCITOSE).

Gustavo
Sticky Note

Fig.16 – Etapas do englobamento de ferritina ( setas) por
processo de MICROPINOCITOSE SELETIVA.

Fig.17 – Vesículas
recobertas ou “coated
vesicles” :
1- vistas ao ME de

transmissão

2- coloração negativa

mostrando estrutura

pentagonal e hexagonal da

cobertura de clatrina (ver

encarte).

Fig.18 – Processo de
digestão intracelular.

Observe lisossoma primário,

corpo residual e gota lipídica.

Fig.19 – Vacúolos
autofágicos (lisossomas

secundários) contendo

grânulos de glicogênio em

hepatócito.

Fig.20 – COMPLEXO
JUNCIONAL em célula

absortiva intestinal. Observe

: zônula de oclusão, zônula

de adesão, desmossoma e

filamentos citoplasmáticos.

Fig.21 – ZÔNULA DE OCLUSÃO (tight junction) em CRIO-
FRATURA. Observe na face A e face B os pontos de fusão das

duas membranas celulares formando linhas contínuas que

vedam o espaço intercelular, impedindo a passagem de

substâncias (ver esquema).

Fig.22 – Detalhes da célula
absdortiva intestinal.

A- microfilamentos de actina

que sustentam as

microvilosidades e ajudam a

contração dos micróvilos.

B- corte transversal de

micróvilos mostrando

microfilamentos, unidade de

membrana e glicocálice.

C- complexo juncional com

suas 3 regiões.

D- Glicocálice especializado

na retenção de partículas e

contendo enzimas

digestivas.

Fig.23 – Esquema de NEXUS (gap junction) mostrando
conexônios que permitem a passagem de íons e pequenas

moléculas.

Fig.24 – Ultra-estrutura da
NEXUS ( gap junction)

A) ME de transmissão

convencional, em corte

B) Crio-fratura

Fig.25 – Desmossomas em
célula da epiderme em

região de interdigitação com

filamentosintermediários

(10nm) de queratina

(tonofilamentos).

Fig.26 – A)
TONOFILAMENTOS (10nm)

inseridos em desmossomas

B) Hemi-desmossomas

unindo a célula epitelial à

membrana basal (lâmina

lúcida e lâmina basal).

Gustavo
Sticky Note
monitoria CHG fiz até aqui

Fig.27 – Estrutura de MICROTÜBULOS (esquema) mostrando
dímeros de tubulina, montagem e desmontagem.

Fig.28 – MICROTÚBULOS
do fuso mitótico em cortes

longitudinal e transversal

Fig.29 – Cílios em epitélio de traquéia. Observe corpúsculos
basais (B), complexo juncional (C) e mitocôndrias (M).

Fig.30 – CÍLIOS em corte transversal mostrando axonema
constituído de microtúbulos ( 9+2 ) envolvido por membrana.

Observe também os braços de dineína no microtúbulo A,

conforme esquema.

Fig.31 – CÍLIOS ao ME de varredura.

Fig.32 – Técnica de IMUNO-
FLUORESCÊNCIA para

visualização de

componentes do

citoesqueleto em célula

cultivada.

1- usando anticorpo anti-

tubulina

2- usando anticorpo anti-

actina.

Fig.33 – REDE
MICROTRABECULAR

constituída de microtrabéculas

que ligam-se às organelas

citoplasmáticas.

A- ao ME de alta voltagem: feixe

de filamentos de actina (af),

microtúbulos (M), retículo

endoplasmático (ER).

B- esquema tridimensional

Fig.34 – NÚCLEO
VESICULOSO em célula de

alta atividade metabólica.

Observe cromatina frouxa,

nucléolo e envoltório nuclear

com poros (setas).

Fig.35 – COMPLEXO DE PORO . A) Estrutura (esquema).

B) Observe cisterna

perinuclear e

heterocromatina associada

ao envoltório nuclear ao ME

de transmissão

Fig.36 – Regiões do
NUCLÉOLO: região granular e

região fibrilar.

Fig.37 – LÂMINA FIBROSA acolada ao envoltório nuclear e
servindo de ponto de fixação da cromatina interfásica

Fig.38 – NÚCLEO DENSO em célula de baixa atividade
metabólica..

Fig.39 – COMPLEXOS DE POROS ao ME de varredura.

Fig.40 – COMPLEXO DE
POROS (mp) em célula crio-

fraturada

Fig.41 – Duplicação da molécula de DNA durante a fase S do
ciclo celular, ligando-se a histonas e assim formando o

filamento de cromatina interfásica.

Fig.42 – Filamento de cromatina interfásica.
A e B – filamento de 10 nm (sem histona H1)
C – filamento de 25 nm (com histona H1)

Fig.43 – CROMOSSOMA
METAFÁSICO sem histonas

ao ME de transmissão.

Observe esqueleto de

proteínas não-histônicas e

as alças de DNA (esquema).

Fig.44 – CROMOSSOMA METAFÁSICO normal ao ME de
transmissão. Observe filamentos de 25 nm em cada

cromátide.

Fig.45 – METÁFASE ao ME
de transmissão. Observe as

fibras do fuso mitótico

(constituídas de

microtúbulos), centríolos e

cromossomas na placa

equatorial

Fig.46 – Fases da mitose em
imuno-fluorescência usando

anticorpo anti-tubulina: A)

metáfase B) anáfase C)

telófase D) citocinese.

Fig.47 – CENTRÍOLO constituído de 9 tríades de
microtúbulos e satélites pri-centriolares (setas) onde ocorre

a polimerização de tubulinas

Fig.48 – CITOCINESE em célula
animal ao ME de transmissão.

Observe restos de microtúbulos do

fuso mitótico na região de separação

entre as duas células.

Fig.49 – Detalhe da citocinese em célula animal mostrando
restos de microtúbulos (M) do fuso mitótico e microfilamentos

(mf) abaixo da membrana plasmática, os quais são

responsáveis pela separação entre as duas células filhas.

Fig.50 - Esquema ultra-

estrutural de célula ácino-

pancreática.

Fig.51 – Célula ÁCINO-
PANCREÁTICA ao ME de

transmissão.

Fig.52 - POLISSOMAS

associados às cisternas do

retículo endoplasmático

(corte tangencial).

Fig.53 - RE rugoso ao ME de

transmissão em cortes

longitudinal e transversal.

Fig.54 - EXOCITOSE