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MÉTODOS INSTRUMENTAIS EM BIOTECNOLOGIA Metodologia aplicadas à preparação de amostras biológicas • Centrifugação; • Liofilização; • Criopreservação. Centrifugação • Princípios da centrifugação; • Características de uma centrífuga; • Cálculo da velocidade de centrifugação; • Principais tipos de centrífugas; • Principais técnicas de centrifugação; • Uso correto da centrífuga; • Aplicações. Princípios da centrifugação • Conceito: processo mecânico de separação de partículas em uma mistura pela aplicação da força centrífuga. • A força centrífuga relativa (Rcf) cuja unidade é o g é gerada quando uma partícula ou conjunto de partículas é sujeito a um movimento circular de aceleração. Lucas Realce p G r G: força centrífuga; P: partícula; r: distância de P em Relação ao eixo de Rotação. Força centrífuga: G = w2 x r w = velocidade angular; r = raio. Princípios da centrifugação A velocidade das centrífugas pode também ser expressa em RPM (revoluções por minuto): Utiliza-se a fórmula a a seguir para calcular a velocidade de uma centrífuga: RCF(g) = 1,12 X 10-5 X (RPM)2. r Lucas Realce Ou utilizando o nomograma: Sedimentação x centrifugação Sedimentação Centrifugação t t1 t>>>>t1 Esquema de sedimentação e centrifugação de partículas • A velocidade G (RCF) influencia a velocidade de sedimentação (v) da partícula, ou seja com que rapidez a mesma se movimenta ao longo do líquido, esta depende de fatores como: - Tamanho da partícula; - Densidade; - Força de atrito; - Densidade do solvente. Princípios da centrifugação Lucas Realce O atrito é maior para moléculas assimétricas (DNA, RNA, proteínas fibrosas) que para moléculas esféricas com a mesma Mr (proteínas globulares) • Coeficiente de sedimentação: parte da relação entre estes fatores, sendo representado por “s”: S = v/w2 . r (unidade: s de segundos) Moléculas biólogicas variam de 1x10-13 a muitos milhares x 10-13 Princípios da centrifugação Coeficiente de sedimentação de algumas moléculas Biológicas: Valor x 10-13 s MAIORES PARTÍCULAS, MAIOR COEFICIENTE DE SEDIMENTAÇÃO Centrífuga É o equipamento que realiza a centrifugação. Gera força centrífuga girando as amostra em torno de seu eixo central; Camera blindada Bomba de vácuo Sistema de resfriamento tubos blindagem Eixo de transmissão Rotor -Horizontal (oscilante); -Ângulo fixo. motor Eixo vertical Carcaça tampa sustentadores Centrífuga de bancada Tipos de centrífuga • De bancada (3000-7000 g ou RCF); • Microcentrífuga (até 12000 g); • Centrífuga Refrigerada de Alta Velocidade (até 100000g); • Ultracentrífuga (até 800000 g). Tipos de centrífuga Centrífugas de bancada: 4.000 – 10.000 rpm 3.000 – 7.000 g Uso: materiais de rápida sedimentação: - eritrócitos; - Leveduras; - Proteínas. Microcentrífugas • 12.000-15.000 rpm • RCF: 12.000 g Uso: - Pequenos volumes de células; - Isolar mili e microgramas de RNA e DNA. Centrífuga Refrigerada de Alta Velocidade -20°C / 40°C; Força g: 100.000 rpm: 28.000 Separação de organelas em homogenatos de tecidos; Virus/bacterias; Células animais e vegetais; Ultracentrífuga Uso: Sedimentação de macromoléculas, ribossomos, vírus... Até 100.000rpm - 800000rcf (g) Chão ou bancada Programável Sempre refrigerada Câmara fechada à vácuo (atrito com ar eleva temperatura e diminui velocidade) Tipos de rotores • Suporte Oscilante; • Ângulo fixo; • Vertical. Lucas Realce Classes de centrífuga e suas aplicações. Tipos de centrifugação Centrifugação Diferencial (fases) • Resulta em sobrenadante e fração do pélete; • A amostra é isolada pela v de sedimentação; • Partículas maiores sedimentam mais rápido. Ex.: separação do sangue em elementos figurados e plasma. Lucas Realce Centrifugação em gradiente de densidade Envolve: • Preparação de um gradiente de densidade; • Processo manual (iniciando com mais denso); Material usado: Sacarose: separação de organelas; Ficoll: Isolamento de células; Percoll: Organelas e células; CsCl: separações de DNA. Centrifugação em gradiente de densidade Tipo Zonal • A separação se vale do tamanho e massa da partícula ao invés da densidade. • Partículas com densidade maior do que o gradiente de separação. • Cada componente cria sua própria zona de sedimentação. • Controlar o tempo de centrifugação!!! Lucas Realce Fc amostra Ex.: separação de subunidades ribossomais em gradiente de sacarose 15 a 40 %.; Separação de anticorpos que possuem densidades similares, porém massas diferentes. Centrifugação em gradiente de densidade Tipo Isopícnica: Separação de partículas com densidade menor que a do gradiente de separação. Exemplos: -Separação de mitocôn- drias em gradiente de Sacarose. Lucas Realce Ex.: separação de linfócitos em gradiente de Ficoll. As frações isoladas podem, posteriormente, ser submetidas a uma gama diversificada de análises bioquímicas, para se identificar a composição química, a atividade enzimática, bem como as capacidades metabólicas ou então serem encaminhadas para observação em microscopia eletrônica. Isolamento de uma fração obtida de cérebro de abelha Apis mellifera utilizando Gradiente de percoll miosina V e VI Como centrifugar Utilizar tubos apropriados à velocidade da centrífuga. Exs.: Microcentrífugas: eppendorfs (0,5-2 mL); Centrífuga clínica: tubos de vidro; Ultracentrífuga: nitrocelulose, polialômero. Lucas Realce polipropileno polipropileno policarbonato Cuidado na escolha dos tubos Amostra aquosa ou orgânica? Aquosa: plásticos ou vidros; Orgânica (fenol): vidro. A temperatura pode afetar a integridade dos tubos. Cuidados acima de 5000 g!!! USO CORRETO DA CENTRÍFUGA Lucas Realce Verificar a necessidade de refrigeração. Ex.: amostras biológicas: 4°C Equilibre os tubos; Coloque a cobertura do rotor; Programe a centrífuga; Feita a centrifugação, remova os tubos vagarosamente; Limpeza do equipamento. Como centrifugar Lucas Realce Conheça as limitações de velocidade da centrífuga e dos rotores; Equilibre todos os tubos com seus suportes, tampas, proteção e pinos; Se usar um tubo para equilibrar, encher com material similar; Preencha os tubos até 1 ou 2 cm da borda; Tubos íntegros ( sem rachaduras) Como centrifugar Lucas Realce Lucas Realce Cuidados na utilização de centrífugas Cuidados com os tipos de amostras. Ex.: material radioativo, infeccioso; Equilibre todos os tubos; Limpeza; Preencha os tubos 1 a 2 cm da borda; Remova as amostras da centrífuga imediatamente findada a centrifugação. Lucas Realce EXERCÍCIOS 1. Calcule a RCF para uma partícula distante 8 cm do centro de rotação quando centrifugada a 3.500 rpm. 2. A técnica de micro hematócrito, recomenda centrifugar75 μl de sangue incoagulável em tubo capilar, entre 5 e 10 minutos a 160 g em microcentrífuga. Podemos aplicar a fórmula para achar o valor correspondente a rotações por minuto (rpm), partindo do princípio de que a centrífuga só apresente escala para rpm. Supondo que o raio da minha centrífuga seja de 15 cm, teríamos? 2.Qual a força (peso aparente) de um rotor de peso 13,5 kg em toneladas, quando centrifugado a 150.000 g? (F=m x a) (a= m/s2 ) 3. Calcule a RCF para uma partícula distante 8 cm do centro de rotação quando centrifugada a 3.500 rpm. 3. Relacione qual a melhor centrífuga para cada uma das técnicas a seguir: (1) Microcentrífuga (2) Ultracentrífuga (3) Centrífuga de bancada (4) Centrífuga refrigerada de alta velocidade ( ) Isolamento de células bacterianas em meio líquido; ( ) Obtenção de pequeno precipitado de moléculas de DNA; ( ) Isolamento de mitocôndrias de um homogenado de tecidos; ( ) Isolar partículas do vírus da poliomelite (diâmetro de 28 nm). 4. Em relação a moléculas enzimáticas e de DNA de Mr comparável, qual tem o maior coeficiente de sedimentação e a maior força de atrito: 5. Diferencie os métodos de separação por centrifugação: 6. Como podem ser o rotores?
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