Baixe o app para aproveitar ainda mais
Prévia do material em texto
V e t e r i n a r i a n D o c s www.veterinariandocs.com.br 1 www.veterinariandocs.com.br Patologia Clínica Veterinária - Laboratório Coleta de Amostras Introdução Para a obtenção de resultados confiáveis na análise de amostras, começa-se com a adoção de métodos de coleta apropriados e manuseio adequado da amostra. A coleta, o processamento, a análise de amostras e a interpretação dos resultados devem ser convenientemente efetuados como uma cadeia seqüencial de eventos, para que se obtenha o diagnóstico pretendido. Recipientes para Coleta Para a coleta de sangue são utilizados vários tubos. Estes tubos contêm ou não anticoagulante apropriado para vários exames hematológicos e/ou bioquímicos. Normalmente, os tubos são denominados pela cor de sua tampa, assim identificando o tipo de coagulante presente ou ausente nestes. 01-Tubo de Tampa Vermelha: Este tubo é destinado à obtenção de amostra de soro e não contém anticoagulante. É utilizado para obtenção de soro necessário às análises bioquímicas comuns. 2 www.veterinariandocs.com.br Tubo de Tampa Vermelha 02-Tubo de Tampa Roxa: Este tubo contém o anticoagulante EDTA à 3% ou à 10%. A concentração de 3% é utilizada para coleta sanguínea de aves e repteis e o de 10% para outras espécies animais. É utilizado aos exames hematológicos. O anticoagulante EDTA preserva melhor o volume celular e as características morfológicas das células. O EDTA é um quelante de cálcio, deixando o indisponível ao sangue, fazendo com que não ocorra a coagulação. Tubo de Tampa Roxa 03-Tubo de Tampa Verde: Este tubo contém o anticoagulante Heparina. Este anticoagulante é utilizado para alguns testes bioquímicos especiais, principalmente aqueles que requerem o sangue total e podem ser influenciados por outros anticoagulantes. A heparina impede a transformação do fibrinogênio em fibrina. 3 www.veterinariandocs.com.br Tubo de Tampa Verde 04-Tubo de Tampa Azul: Este tubo contém citrato de sódio. É utilizado para determinação bioquímica de substâncias ou fatores relacionados à coagulação. Tubo de Tampa Azul 05-Tubo de Tampa Cinza: Este tubo contém fluoreto de sódio (NaF) e EDTA. O NaF inibe a enzima que participa da via glicolítica, impedindo a metabolização da glicose pelos eritrócitos. 4 www.veterinariandocs.com.br Tubo de Tampa Cinza 06-Tubo de Tampa Amarela: Este tubo possui um ativador de coagulo e disponibiliza melhor o soro para testes. É indicado para amostras pequenas de sangue. Tubo de Tampa Amarela Recomendações 1- Preencher o tubo com o volume adequado em proporção ao volume de anticoagulante 2- Agulhas de baixo calibre causam muita hemólise, o indicado são agulhas de 18 ou 20. 3- É importante que a venipuntura seja asséptica e sem contaminação tecidual, pois isso pode resultar numa agregação plaquetária indesejada. 4- Selecionar um local adequado para a venipuntura para que forneça um volume adequado de sangue 5 www.veterinariandocs.com.br 5- Amostras de sangue destinados ao hemograma devem ser analisados em 1 hora. 6- Amostras de soro devem ser analisadss rapidamente, caso contrário devem ser refrigerados num período de até 48 horas, se passar deste período deve ser congelado. 7- A amostra de urina deve ser analisada dentro de 30 minutos após a coleta. 8- Quando se faz a punção de líquidos corporais, como exemplo, em caso de ascite, deve-se coletar em 2 tubos, um com anticoagulante e outro sem. 9- Para coleta de líquor medular, utiliza-se 3 tubos sem anticoagulante, e geralmente o 3º tubo é o utilizado para a análise Esfregaço Sanguíneo Homogeneização da Amostra de Sangue Em geral, supõe-se que a amostra de sangue tenha sido obtida recentemente e coletada de modo adequado em tubos com EDTA. Ao realizar qualquer procedimento hematológico, é importante que a amostra de sangue seja bem homogeneizada. Os componentes celulares podem se assentar rapidamente enquanto o tubo está em um suporte de tubos. Como resultado, uma falha na homogeneização da amostra antes de se obter uma alíquota para a medição hematológica pode resultar num erro grave. A homogeneização pode ser realizada manualmente, agitando o tubo por, no mínimo, 10 a 15 vezes. Preparação de Esfregaços Sanguíneos O esfregaço sanguíneo é fundamental para as contagens dos tipos de leucócitos individuais (contagem diferencial) e para avaliar importantes alterações patológicas que envolvem leucócitos, hemácias e plaquetas. Esse procedimento deve ser bem preparado para que não ocorra erros que podem resultar em uma distribuição inadequada de células na lâmina, ocasionado graves erros na contagem diferencial. O procedimento mais comum é conhecido como técnica de deslizamento, na qual são utilizadas duas lâminas (uma de microscopia e uma extensora). Passos: 1-Limpa-se a lâmina a qual receberá uma gota de sangue e a ponta da lâmina extensora. 2-Homogeneíza a amostra de sangue, e com um tubo-capilar para hematócrito pega-se uma alíquota desta amostra. 3-Coloca-se uma gota de sangue do tubo-capilar próximo a uma extremidade da lâmina. 6 www.veterinariandocs.com.br 4-A lâmina extensora é colocada sobre a primeira, a modo de formar uma ‘cunha’ com ângulo de aproximadamente 30º à frente da gota de sangue. 5-Esta lâmina extensora é puxada para trás até o contato com a gota de sangue e, em seguida, deslizada para frente até alcançar a extremidade. Observações: *A pressão exercida sobre a lâmina deve ser mínima. *Não se deve fazer o deslizamento muito rápido e nem muito lento Fonte: THRALL, 2007. Para que seja feito o exame microscópico adequado da lâmina, é necessário conhecer o aspecto de um esfregaço sanguíneo. A parte mais larga do esfregaço é a região espessa ou o corpo, local em que as células estão sobrepostas e os leucócitos apresentam-se aglomerados, dificultando o exame microscópico de todos os componentes. A cauda do esfregaço corresponde a porção final. Nessa área, é possível notar alguns artefatos, inclusive leucócitos rompidos, mas não é possível avaliar a palidez central das hemácias. A área de contagem é pequena e situa-se entre o corpo e a cauda do esfregaço, consiste em uma monocamada de células, ótima para o exame microscópico. Os leucócitos apresentam-se achatados e com detalhes internos mais evidentes. 7 www.veterinariandocs.com.br O sucesso da análise dos componentes da lâmina depende da qualidade do esfregaço, da experiência para examinar o local correto, da habilidade para a diferenciação entre artefatos de preparação e alterações morfológicas e da experiência da interpretação de patologias. Hematócrito Introdução Volume Globular (hematócrito) Corresponde à porcentagem de hemácias presentes no sangue. É calculado a partir de uma coluna de sangue, sua centrifugação promove compactação máxima das hemácias. O material necessário inclui tubos de micro-hematócrito, fogareiro, centrífuga destinada ao micro hematócrito e tabela de leitura. O procedimento é inicialmente feito pelo preenchimento do tubo de micro- hematócrito com sangue por capilaridade. Depois este tubo é fechado no fogareiro. Pode haver as entre o final do tubo já fechado e o sangue, mas isso não é problema porque este ar é removido pela centrifugação. Posteriormenteo tubo é levado à centrífuga e é encaixado corretamente. Normalmente se espera no mínimo 5 minutos com exceção de sangue de caprinos, que leva em torno de 15 minutos para total compactação das hemácias no fundo pelo fato de as hemácias serem muito menores. *Observação: sempre manter o tubo de micro hematócrito na horizontal. Após a remoção do tubo da centrífuga, é possível notar três camadas distintas no tubo: a coluna de plasma no topo, as hemácias compactadas no fundo e uma fina camada esbranquiçada de leucócitos sobre as hemácias. É necessário verificar qualquer alteração no plasma (coloração) que pode estar normal, ictérica, lipêmica e hemolisada. Icterícia: corresponde a pigmentação excessivamente amarela do plasma, sugerindo hiperbilirrubinemia. A constatação de plasma ictérico é um diagnóstico útil em pequenos animais. Mas não é confiável em espécies de grandes animais porque geralmente o soro destes é amarelado devido à presença normal de carotenos na dieta. Lipemia: corresponde à coloração branca opaca do plasma, decorrente de quilomícrons. Está mais associada á coleta de sangue pós-prandial e pode estar relacionada a distúrbios que envolvem o metabolismo de lipídeos. Hemólise: corresponde a coloração avermelhada do plasma, geralmente resultante da lise artificial de hemácias durante a coleta. Para a leitura do VG se faz a comparação com um cartão padrão de leitura de hematócrito. Posiciona-se a extremidade inferior da camada de hemácias na linha 0 e a extremidade superior da coluna de plasma na linha 100. Em seguida, verifica-se a posição do topo da coluna de hemácias, obtendo-se o valor do VG. 8 www.veterinariandocs.com.br Determinação da Concentração Plasmática de Proteínas por Refratometria Após a inspeção da coluna e o cálculo do hematócrito, a coluna de plasma pode ser utilizada para medir a concentração plasmática de proteínas. Na prática clínica, a refratometria é usada para estimar a concentração plasmática de proteínas e a densidade da urina. Quebra-se o tubo de micro hematócrito logo acima da porção da camada leucocitária, e o plasma dessa parte é usado para carregar o refratômetro. Em seguida, posiciona-se o refratômetro de modo que uma fonte de luz ambiente possa transpor o prisma umedecido com plasma. O resultado da concentração de proteínas plasmáticas totais é estimada em g/dL. Refratômetro Determinação da Concentração de Fibrinogênio A técnica mais usada para medir o conteúdo plasmático de fibrinogênio é a precipitação por calor. Deve-se preencher dois tubos de micro hematócrito com sangue e centrifugá-los por 5 minutos. Quebra-se um tubo na base da coluna de plasma, transferindo o plasma para um refratômetro e fazendo-se a leitura. O segundo tubo é colocado em banho-maria à temperatura de 57ºC durante 3-5 minutos (este aquecimento desnatura e precipita o fibrinogênio). Após a incubação, centrifugue novamente o segundo tubo para provocar a sedimentação do fibrinogênio desnaturado. Determine a concentração de proteínas plasmáticas do segundo tubo pelo refratômetro. Subtraia o valor da concentração de proteínas do segundo tubo daquele primeiro tubo. A diferença corresponde a concentração de fibrinogênio. Geralmente a concentração de fibrinogênio é convertida em mg/dL (Ex.: 0,4 g/dL = 400 mg/dL) Exemplos Práticos Grupo 1 (felino): -Plasma altamente lipêmico 9 www.veterinariandocs.com.br -VG: 37% -Proteínas Plasmáticas Totais: 7,6 g/dL -Fibrinogênio: 200 mg/dL Grupo 2 (felino): -Plasma altamente ictérico -VG: 10% -Proteínas Plasmáticas Totais: 6,2 g/dL -Fibrinogênio: 100 mg/dL Grupo 3 (canino): -Plasma discretamente hemolisado -VG: 44% -Proteínas Plasmáticas Totais: 7,7 g/dL -Fibrinogênio: 400 mg/dL Grupo 4 (canino): -Plasma discretamente hemolisado -VG: 40% -Proteínas Plasmáticas Totais: 8,9 g/dL -Fibrinogênio: 300 mg/dL Valores de Referência: -Cão: VG: 37 - 55% Proteínas Plasmáticas Totais: 5,6 – 7,5 g/dL Fibrinogênio: 200 – 400 mg/dL -Gato: VG: 24 – 45% Proteínas Plasmáticas Totais: 5,5 – 8,1 g/dL Fibrinogênio: 50 – 300 mg/dL 10 www.veterinariandocs.com.br Conclusão Grupo 1: a possível causa para o plasma estar altamente lipêmico se deve ao fato de não ter coletado após um período adequado de jejum. Grupo 2: o fato do VG estar baixo e do plasma estar ictérico deve a uma anemia hemolítica provavelmente e isto acarreta uma icterícia pré-hepática, causando a coloração amarela do plasma em virtude da alta destruição de eritrócitos. Grupo 3: plasma hemolisado e leve aumento nas proteínas plasmáticas totais se deve a uma leve desidratação. Grupo 4: plasma hemolisado e aumento nas proteínas plasmáticas totais. Isto pode ser indicio de uma hiperalbuminemia, e é notada apenas em casos de desidratação. Fazendo uma reidratação e fazendo a aferição das proteínas novamente, o valor voltaria ao normal. E caso o valor ainda esteja aumentado, é um indício de hiperglobulinemia, que necessitaria realizar eletroforese das proteínas do soro, para identificar qual a proteínas que está aumentada. No caso de aumento da concentração de Alfaglobulinas: é inespecífico e de importâncias diagnóstica limitada. A inflamação aguda é a mais comum No caso de aumento da concentração de Betaglobulinas: pode ocorre em inflamação aguda, Erliquiose, leishmania visceral, síndrome nefrótica, doença hepática ativa e resposta imune. No caso de aumento da concentração de Gamaglobulinas: chama-se gamopatia. Representam aumentos do teor de imunoglobulinas induzidos por uma população heterogênea de linfócitos B e/ou plasmócitos. Pode ser por doenças imunomediadas, doença hepática, linfoma, leucemia linfocítica, mieloma múltiplo, plasmocitoma extramedular, piodermatite crônica e entre outras. Contagem total de Hemácias e Leucócitos Contagem de células em câmara de Neubauer Para contagem de leucócitos deve-se fazer a seguinte diluição: 380 µl de solução de ácido acético e 20 µl de sangue (homogeneizar antes de coletar uma alíquota). Nesta diluição, cada célula contada na câmara de Neubauer equivalerá a 50 células reais. Este fator de 1/50 foi calculado da seguinte forma: -A altura da câmara corresponde a 0,1 mm 1/10 -São contados os 4 quadrantes: 11 www.veterinariandocs.com.br -E a diluição é 20 µl de sangue para 400µl de solução total (20 µl de sangue + 380 µl de ácido acético) 20/400 1/20 No final tem-se: 1 x 4 x 1 = 1 10 20 50 Para contagem de hemácias deve-se fazer a seguinte diluição: 4 ml de solução fisiológica e 20 µl de sangue (homogeneizar antes de coletar uma alíquota). Nesta diluição, cada célula contada na câmara de Neubauer equivalerá a 10.050 células reais. Este fator de 1/10.500 foi calculado da seguinte forma: -A altura da câmara corresponde a 0,1 mm 1/10 -São contados apenas 5 micro-quadrantes do quadrante central 1/5 12 www.veterinariandocs.com.br -E a diluição é 20µl de sangue para 4020 µl de solução total (20 µl de sangue + 4000 µl de solução fisiológica) 1/201 1 x 1 x 1 = 1 10 5 201 10.500 Estas diluições devem ser feitas num tubo de ensaio, e após serem feitas, devem ser bem homogeneizadas. Posteriormente coloca-seuma quantidade destas diluições na câmara de Neubauer. -Colocar a lamínula sobre a área de marcada na câmara de contagem. Usar lamínulas especiais que fornecem a profundidade correta da câmara de contagem. Não usar lamínulas comuns. -Encostando a ponta da pipeta na borda da lamínula, preencher cuidadosamente a câmara de contagem. O líquido deve preencher apenas um lado da câmara e não deve chegar aos canais de cada lado da área de contagem. -Deixar as células sedimentarem por 2 minutos em uma câmara úmida. -Focalizar a área demarcada da câmara de contagem com a objetiva de menor aumento. -Contar as células nas 4 áreas do canto da câmara para contagem de leucócitos e contar apenas células do quadrante central para contagem de hemácias. E quando houver células em cima das linhas, apenas contar as células em 2 das 4 linhas existentes. -Outros Parâmetros: VGM (Volume Corpuscular Médio): é o índice que ajuda na observação do tamanho das hemácias e no diagnóstico da anemia: se pequenas são consideradas microcíticas, se grandes consideradas macrocíticas e se são normais, normocíticas. Anisocitose: é denominação que se dá quando há alteração no tamanho das hemácias. As anemais microcíticas mais comuns são a ferropriva e as síndromes talassêmicas. As anemias macrocíticas mais comuns são as anemias megaloblástica perniciosa. O resultado do VGM é dado em fentolitro (ƒl). Calcula-se dividindo o valor de hematócrito encontrado pelo número de hemácias e multiplica-se este resultado por 10. Por exemplo, um paciente com: -VG: 31% 13 www.veterinariandocs.com.br -Nº de eritrócitos: 5,12 x 10 6 células por µl de sangue 31 x 10 = 60,54 ƒl 5,12x10 6 CHGM (concentração de hemoglobina corpuscular média): é a concentração da hemoglobina dentro de uma hemácia. Como a coloração da hemácia depende da quantidade de hemoglobina elas são chamadas de hipocrômicas , hipercrômicas e hemácias normocrômicas (no intervalo de normalidade). É importante observar que na esferocitose o CHCM geralmente é elevado. Contagem Diferencial de Leucócitos Introdução A interpretação das contagens de leucócitos do sangue auxilia na compreensão sobre as possíveis disfunções apresentadas pelo paciente. O conjunto de valores relativos e absolutos do perfil leucocitário, junto às informações sobre a morfologia dos leucócitos, é conhecido como ‘leucograma’. Para a interpretação do perfil leucocitário de uma doença é necessário, primeiramente, conhecer as características normais do leucograma e, a partir daí, identificar os padrões de anormalidade. Leucócitos 01-Neutrófilos: participam da resposta inflamatória por meio de quimiotaxia positiva ao tecido inflamado e fagocitose de microorganismos e outros materiais estranhos. Fonte: THRALL, 2007. 14 www.veterinariandocs.com.br Os metamielócitos (M) não são encontrados no sangue normalmente, e tem núcleo em forma de feijão. Os bastonetes (B) podem aparecer no sangue em pequena quantidade e tem núcleo em formato de ferradura. Os neutrófilos segmentados (S) têm o núcleo em formato de ferradura, com certas constrições ao longo da membrana nuclear. Apresentam diversos grânulos pequenos, discretamente corados em seu citoplasma. *Em bovinos, o citoplasma do neutrófilo assume coloração levemente rósea. 02-Eosinófilos: contêm proteínas que se ligam e lesionam as membranas de parasita e também estão envolvidos na modulação de reações alérgicas, inflamatórias e de imunocomplexos. Apresentam núcleo segmentado e grânulos vermelho-alaranjados. Fonte: THRALL, 2007. *Na ponta da seta há um neutrófilo para comparação C: cães E: eqüinos F: felinos B: bovinos 03-Basófilos: contêm grânulos de histamina e heparina e a membrana citoplasmática contém IgE semelhante aos mastócitos. O seu núcleo é segmentado e a morfologia granular varia entre as espécies, mas normalmente adquirem coloração violeta-escura. Fonte: THRALL, 2007. 15 www.veterinariandocs.com.br *Há um neutrófilo no centro para comparação C: cães F: felinos LA: grandes animais 04-Linfócitos: não se pode diferenciar as subpopulações de linfócitos no esfregaço sanguíneo. Estas subpopulações incluem os linfócitos B (responsáveis pela imunidade humoral – produção de anticorpos) e os linfócitos T (responsáveis pela imunidade celular – resposta às citocinas). Apresentam núcleo arredondado a oval, bem denso e quantidade mínima de citoplasma claro. Fonte: THRALL, 2007. 05-Monócitos: também participam da resposta inflamatória. Eles migram aos tecidos onde continuam a se desenvolver, atingindo a forma de macrófagos. Fagócitos mononucleares podem fagocitar bactérias, grandes microorganismos complexos (Ex.: fungos e protozoários), células danificadas e restos celulares. E desempenham importante função imunorreguladoras por apresentar o antígeno aos linfócitos T. O núcleo pode ter diferentes formatos e a cromatina é menos densa do que de neutrófilos ou linfócitos. E os monócitos são células maiores que neutrófilos e possuem vacúolos no seu interior. 16 www.veterinariandocs.com.br Fonte: THRALL, 2007. *A seta indica um neutrófilo, para comparação. Contagem Ao localizar a área de contagem com a objetiva de 10x e completar as avaliações com esse pequeno aumento, o microscópio deverá ser ajustado para exame em grande aumento. O examinador deve fazer uma pesquisa sistemática das três linhagens celulares principais (diferencial de leucócitos, morfologia das hemácias e avaliação da quantidade de plaquetas). Para essa contagem utilizam-se no mínimo 100 células. Com a contagem de 100 células, a quantidade de cada tipo de leucócito é uma fração de 100 ou uma porcentagem da população de leucócitos. *Numa leucopenia, pode-se contar 50 células *Numa leucocitose deve-se aumentar o número de células contadas, para mais de 100. Deve-se contar 7 campos microscópicos em cada direção seguindo o exemplo da figura acima. 17 www.veterinariandocs.com.br LÂMINA Patologias -Hemácias: 01- Policromasia: correspondem às hemácias jovens. Geralmente são células grandes, cuja cor é mais azulada do que as hemácias maduras. A verificação de hemácias policromatofílicas é muito importante para determinar a causa de anemia. Caso ocorra liberação de células imaturas, a provável causa é a perda de sangue ou destruição de hemácias. 02- Hipocromasia: as hemácias hipocrômicas são claras e sua palidez central é mais acentuada devido à menor concentração de hemoglobina decorrente da deficiência de ferro. 03- Hemácias Microcíticas: para estimar o verdadeiro tamanho das hemácias, o cálculo do VGM é mais útil do que o exame de esfregaço sanguíneo. A principal causa da microcitose é a anemia por deficiência de ferro. Cães das raças Akita e Shiba inus normalmente apresentam hemácias menores. 04-Hemácias Macrocíticas: são maiores e apresentam maior VGM. A principal causa de macrocitose é o aumento da quantidade de hemácias imaturas, que se apresentam policromatofílicas. Área de Contagem (monocamada de células) 18 www.veterinariandocs.com.br 05- Corpúsculos de Heinz: causado pela desnaturação oxidativa da hemoglobina. Cerca de 1 a 2% das hemácias de gatosnormais contêm esses corpúsculos. Os corpúsculos de Heinz são pequenas estruturas pálidas excêntricas presentes nas hemácias. Quando grande quantidade de hemácias é afetada, pode haver uma anemia hemolítica grave e algumas substâncias oxidantes induzem a formação destes corpúsculos também. 06- Hemácias Nucleadas: o aumento da quantidade de hemácias nucleadas está associado a anemia regenerativa e liberação precoce dessas células em resposta à hipóxia. Uma maior quantidade de hemácias nucleadas também pode ser notada em animais com disfunção do baço e com alto teor de corticosteróides. 07- Corpúsculos de Howell-Jolly: são resto nucleares. Um aumento no conteúdo de corpúsculos de Howell-Jolly está associado a anemia regenerativa, esplectomia e supressão da função esplênica. 08- Parasitas: -Mycoplasma: a principal hemoparasitose de felinos é a infecção por Mycoplasma haemofelis, um micoplasma que acusa a anemia infecciosa felina. Esses microorganismo se aderem à membrana externa da hemácia. -Anaplasma: A anaplasmose bovina, causada pela riquétsia intra- eritrocitária Anaplasma marginale é de ocorrência cosmopolita e a Anaplasma centrale é mais da América do sul, Oriente médio e Africa do Sul. -Babesia: Várias espécies de Babesia causam anemia hemolítica e trombocitopenia em animais domésticos. 09-Inclusões Virais: são raramente encontradas em cães com cinomose. Quando encontradas, elas apresentam variações de tamanho, quantidade e cor e são mais vistas em hemácias policromatofílicas. 10- Formação de Rouleaux: corresponde ao posicionamento espontâneo das hemácias em forma de pilhas lineares (semelhante a uma pilha de moedas). É normal nos eqüinos e uma quantidade discreta também é normal em cães e gatos. Nota-se maior formação de Rouleaux quando há aumento da concentração de proteínas plasmáticas, como o fibrinogênio e imunoglobulinas. Este aumento normalmente sugere gamopatia. 19 www.veterinariandocs.com.br -Leucócitos: 01- Linfócitos Reativos: caracterizados pela presença de grânulos citoplasmáticos arroxeados (granulações azurrófilas grosseiras) e/ou basofilia citoplasmática podem estar presentes em pequeno número em animais sãos. O seu aumento pode ser visto em animais jovens, em resposta à estimulação antigênica crônica ou após vacinação e em enfermos. A estimulação antigênica dos linfócitos tipo B resulta em plasmócitos, capazes de sintetizar e liberar imunoglobulinas e não são normalmente encontrados na circulação. 02- Neutrófilos Tóxicos: são alterações estruturais causadas por defeitos na maturação, devido à rápida neutropoiese. Podem ocorrer por influência de inflamação severa, causada por infecção bacteriana, ou mesmo toxicidade por drogas, como quimioterapia. Estas alterações citoplasmáticas podem ser observadas em casos de infecção. Exemplos de alterações tóxicas: -Granulação tóxica: Consiste na persistência de grânulos primários, próprios de pró-mielócitos. Durante a maturação normal, os grânulos primários são substituídos por grânulos secundários, que não se coram, ou coram-se fracamente. -Vacuolização citoplasmática: São vacúolos claros, causados provavelmente por autodigestão, pois toxinas bacterianas podem induzir ruptura dos lisossomos do neutrófilo, liberando seu conteúdo enzimático. -Basofilia citoplasmática: resultado da persistência de grandes quantidades de retículo endoplasmático rugoso e poliribossomos, ricos em RNA, devido a granulopoiese acelerada. -Corpúsculos de Döhle: inclusões angulares no interior do citoplasma de neutrófilos. São alterações tóxicas evidenciadas com mais freqüência em gatos que em cães ou outras espécies. 03- Monócito Ativo: os monócitos podem se ativar na circulação sanguínea, adquirindo características semelhantes às dos macrófagos. Sua presença indica intensa destruição tecidual circulatória, que ocorre em algumas doenças inflamatórias, como infecções bacterianas severas, infecções fúngicas 20 www.veterinariandocs.com.br sistêmicas ou doenças imuno-mediadas (tais como histoplasmose, erlichiose, leishmaniose). 04-Neutrófilos Hipersegmentados: refere-se ao predomínio de neutrófilos de tamanho normal com 5 ou mais lobulações nucleares. Reflete tempo de trânsito prolongado na circulação sanguínea, e pode ocorrer em inflamação crônica, uso de glicocorticóides, ou hiperadrenocorticismo. Também pode ocorrer em amostras envelhecidas. -Plaquetas: 01–Macroplaquetas: são plaquetas maiores que o normal, com diâmetro próximo ao dos eritrócitos. É um achado comum em felinos. A presença de freqüentes macroplaquetas em um animal trombocitopênico sugere um aumento da trombopoiese, mas também podem estar presentes em animais com doenças mieloproliferativas ou mielodisplásicas. Podem estar presentes em animais com contagens de plaquetas normais durante a fase de recuperação de trombocitopenias. 02- Agregados Plaquetários: trata-se de plaquetas aderidas umas as outras, formando grupos de tamanhos variados, visualizados ao microscópio óptico durante a hematoscopia. Sua presença impede a correta contagem de plaquetas/μL de sangue, o que pode diminuir falsamente a plaquetometria. 03-Trombocitose: refere-se ao aumento do número de plaquetas por microlitro (μL) de sangue. Em grau leve a moderado é um achado relativamente comum em cães e gatos, mas contagens maiores que 1.000.000/μL podem estar associadas a sinais clínicos de sangramento ou trombose. Pode ser causada por: aumento da produção; diminuição da retirada de plaquetas da circulação (clearance) ou mesmo diminuição do seqüestro plaquetário. Uma das causas mais comuns é a contração esplênica (o baço pode seqüestrar de 1/4 a 2/3 do total de plaquetas circulantes), causada pela liberação de epinefrina em situações de stress (excitação/medo). 21 www.veterinariandocs.com.br Contagem de Reticulócitos Introdução A contagem de reticulócitos é muito útil para avaliação das anemias. A taxa de liberação de reticulócitos da medula óssea é o melhor indicador da função do componente eritróide da medula. A base para a contagem de reticulócitos envolve os eventos na maturação das células eitróides. O desenvolvimento dessas células está extremamente relacionado ao metabolismo aeróbico e a síntese protéica (ou seja, hemoglobina). À medida que se aproxima da fase final de maturação, ocorre degeneração do núcleo, que é expelido da célula, as organelas que sustentam esse metabolismo e a síntese protéica são removidas. Para a contagem de reticulócitos, utiliza-se um corante para hemácias causando, assim, agregação dessas organelas residuais. Isso resulta em material granular aglomerado que pode ser visto ao microscópio. Dentre os corantes que podem ser empregados, incluem- se o novo azul de metileno e azul cresil brilhante. Inicialmente, adicionam-se várias gotas de sangue ao corante em um tubo (mesma proporção), este tubo é homogeneizado e em seguida incubado por 15 minutos à 37ºC. A partir dessa mistura, prepara-se um esfregaço sanguíneo convencional. Contam-se 1000 hemácias, classificando-as como reticulócitos ou células normais. E depois de feita a contagem deve-se calcular o valor corrigido, que é dado pelo: VG dividido pelo VG médio da espécie e multiplicado pela quantidade total de reticulócitos contado. Interpretação A contagem de reticulócitos é mais útil para cães e gatos e tem alguma aplicação para vacas. Não é utilizado em eqüinos. A faixa de normalidade para mamíferos domésticos representa as contagens esperadas quando o hematócrito é normal: -Cães e Gatos: 0 a 60.000 células/µL -Vacas: 0 células/µL-Eqüinos: não liberam reticulócitos. Em anemia, espera-se maior nível de liberação medular de reticulócitos desde que a medula responda à anemia. Isso implica nas orientações apresentadas a seguir quanto à interpretação da contagem de reticulócitos em relação ao tipo de anemia. -Anemia não-regenerativa com baixíssimo grau de regeneração: 0 a 10.000 células/µL -Anemia não-regenerativa com grau mínimo de regeneração: 10.000 a 60.000 células/µL -Anemia regenerativa com liberação discreta a moderada: 60.000 a 200.000 células/µL 22 www.veterinariandocs.com.br -Regeneração máxima: 200.000 a 500.000 células/µL Exceção Os gatos representam uma espécie particular de animais, pois têm mais de um tipo de reticulócitos (agregados ou pontilhados). Os reticulócitos agregados evoluem para a forma de pontilhado em aproximadamente 12 horas. Devido ao curto período de maturação dos reticulócitos agregados, essas células são os melhores indicadores de liberação medular ativa. Portanto, apenas os reticulócitos agregados são contados em gatos. Hemostasia Introdução: a hemostasia é o mecanismo que mantém a fluidez do sangue pelos vasos. Inclui o controle da hemorragia e a dissolução do coágulo, por meio de eventos mecânicos e bioquímicos. Didaticamente pode-se dividir em: hemostasia primária, hemostasia secundária e hemostasia terciária, embora os três processos estejam inter- relacionados. -Hemostasia Primária: tem-se vasoconstrição local, adesão e agregação plaquetária com conseqüente formação de um tampão plaquetária inicial -Hemostasia Secundária: compreende uma série de reações em cascata cujo resultado final é a formação de fibrina a partir do fibrinogênio que confere estabilidade ao coágulo. -Hemostasia Terciária: ou também denominada fibrinólise, é ativada na mesma ocasião da coagulação, existindo um equilíbrio fisiológico entre as mesmas, onde a plasmina atua degradando a fibrina e desfazendo o coágulo formado. Avaliação dos Componentes da Hemostasia 01-Testes da Hemostasia Primária: -Elementos da hemostasia primária: plaquetas, vasos e fator de Von Willebrand 23 www.veterinariandocs.com.br 01.1-Contagem Total de Plaquetas: a contagem de plaquetas é realizada em câmara de Neubauer utilizando-se o líquido de Brecher (oxalato de amônio a 1%) como diluente ou em contadores eletrônicos de células mais modernos. Número de Plaquetas por micolitro nas diferentes espécies domésticas: *Sangramento espontâneo ocorre em contagens inferiores a 50.000 plaquetas/µl. Mais informações podem ser obtidas pela avaliação do esfregaço sanguíneo, que pode mostrar anormalidades de tamanho e morfologia das plaquetas. 01.2-Tempo de Sangria: depende da relação entre a estabilidade do tampão primário que é formado, a eficiência dos mecanismos vasculares e o estado das plaquetas. O teste não diferencia defeitos vasculares, trombocitopenias e alterações da função plaquetária (trombocitopatias). Estudos mais recentes sugerem que o tempo de sangria é também influenciado pelo hematócrito, mecanismos de coagulação, técnica empregada, experiência da pessoa que realiza o exame, temperatura da pele, pressão venosa, direção, tempo e profundidade da incisão. Utiliza-se uma lanceta ou lâmina de bisturi para fazer uma incisão de aproximadamente 3mm de profundidade na mucosa oral do animal. Existem aparelhos descartáveis específicos para a realização deste exame. A cada 30 segundos aproximadamente é utilizado um papel de filtro ou gaze para enxugar a gota de sangue da incisão, sem tocá-la. O tempo entre a incisão e o estancamento da hemorragia é de no máximo 4 a 5 minutos. -Sangria prolongada: ocorre, dentre outras causas, quando a contagem de plaquetas está baixa. O foco, neste caso, deve ser direcionado à elucidação da causa da trombocitopenia. -Sangria prolongada com contagem de plaquetas normais: pode indicar uma alteração de função plaquetária, tanto congênita como adquirida. 24 www.veterinariandocs.com.br -Outras alterações hemostáticas que podem prolongar o tempo de sangria são as anormalidades vasculares, doença de von Willebrand, anemias severas e casos onde a parede vascular produza prostaciclinas em excesso, como em insuficiências renais crônicas e no uso de drogas antiinflamatórias que alterem a função plaquetária. 01.3-Teste de Agregação Plaquetária: efeito de vários agentes agregantes como o ADP, colágeno, adrenalina, ristocetina e trombina em suspensões de plaquetas são usados para a avaliação da função plaquetária quando se tem principalmente, tempo de sangria prolongado e contagem de plaquetas normais. O teste baseia-se na mudança da densidade óptica de suspensões de plaquetas preparadas a 37ºC e centrifugadas a 1.000rpm depois da adição de um agente agregante. As concentrações padrões desses agentes variam de acordo com a espécie. No geral, baixas doses de ADP causam agregação reversível e doses mais altas, uma onda secundária de agregação irreversível. Esta última, pode estar anormal ou ausente em pacientes tratados com doses excessivas de antiinflamatórios que inibem a cicloxigenase e a via da prostaglandina. Após 4 a 5 dias da suspensão do uso, a função plaquetária retorna ao normal. A agregação plaquetária estimulada pelo colágeno ou suspensões de tecido conectivo resulta na aderência das plaquetas às fibras colágenas seguida pela liberação de ADP, provocando uma segunda onda de agregação do tipo irreversível. A Ristocetina é um antibiótico que induz a agregação plaquetária na presença do fator de von Willebrand. Pacientes com deficiência deste fator têm uma resposta anormal ao teste. 01.4-Teste do Fator de Von Willebrand: a detecção antigênica do fator de von Willebrand (FvW) é um método bastante sensível para a avaliação da doença de von Willebrand. Uma variedade de métodos é usada como o radioimunoensaio e o teste de ELISA. Outro teste importante é o de análise multimérica do FvW, em que o plasma do paciente é colocado em gel de agarose e submetido a eletroforese. Este teste permite identificar o tipo 2 da doença de von Willebrand. 01.5-Tempo de Coagulação: o tempo de coagulação é utilizado na avaliação da via intrínseca da coagulação, porém é um teste de pouca sensibilidade. Este exame avalia o tempo necessário para o estabelecimento completo da coagulação sangüínea O tempo de coagulação pode estar prolongado em diversas coagulopatias como: deficiência de fibrinogênio, hemofilia A, hemofilia B, doença de Von Willebrand, 25 www.veterinariandocs.com.br hepatopatia severa, deficiência de vitamina K, trombocitopenia, estágios avançados de CID, uremia e na presença de anticoagulantes circulantes. Deve-se preencher 3 tubos (A, B e C) (contendo citrato de sódio – tampa azul) com 1ml de sangue e colocá-los em banho-maria a 37ºC. A cada 30 segundos deve-se verificar primeiramente o tubo A, e depois deve-se devolvê-lo ao banho-maria, quando verificar que o sangue deste tubo coagulou, começa-se a verificar o tubo B da mesma maneira, verificar se houve ou não coagulação a cada 30 segundos, até chegar ao tubo C, chegando ao tempo total para coagulação do sangue. Urinálise Exame Físico -Cor: a cor da urina normal varia de quase incolor a âmbar intenso. Em geral, a primeira urina do dia é a mais concentrada e, desse modo, mais escura. Várias anormalidades provocam alteração na cor da urina: hemoglobinúria, mioglobinúria, hematúria (todas avermelhadas), hepatopatia – bilirrubinúria (marrom-esverdeado). O uso de medicamentos também pode influenciar a cor da urina, por exemplo,anti- helmínticos fenotiazinas. -Turbidez: o grau de turbidez reflete a quantidade de partículas na urina. Normalmente a urina de cães é clara e a de gatos é levemente turva (presença de gordura). A urina de eqüinos é muito turva (devido ao muco secretado pelas glândulas da pelve renal). Cilíndros, células inflamatórias e cristais podem provocar maior grau de turvação. -Densidade: indica uma estimativa do conteúdo de soluto, e é a parte mais importante do exame físico da urina. Avalia a capacidade dos túbulos renais em concentrar ou diluir a urina e é determinado por refratometria. Exame Químico: geralmente é semi quantitativo, utilizando tiras reagentes. -Proteína: a interpretação de proteinúria significativa depende dos achados no sedimento urinário. Pode ser um achado secundário à hemorragia, inflamação ou degeneração tubular renal. Caso não haja indicadores dessas anormalidades no sedimento, provavelmente a proteinúria resulte de lesão glomerular (causa extravazamento de proteínas – principalmente albumina). -Glicose: a causa mais comum de glicosúria é o teor de glicose circulante que excede o limiar tubular renal de reabsorção de glicose. A hiperglicemia que excede o limiar renal pode ser pós-prandial, secundária ao estresse ou reflexo da diabetes melito. Degeneração tubular renal pode interferir na reabsorção de glicose (Ex.: nefropatias tóxicas por metais pesados ou antibióticos aminoglicosídeos). 26 www.veterinariandocs.com.br -Cetonas: as cetonas aparecem na urina quando o grau de cetoacidemia excede o limiar renal de absorção da filtração glomerular. Cetoacidemia e cetonúria refletem a produção excessiva de cetonas que ocorre quando a taxa de mobilização de gordura excede a capacidade metabólica do fígado para oxidar completamente esta gordura. Alguns casos de cetonúria não podem ser detectados, pois a fita reagente só detecta alguns tipos de corpos cetônicos, mas não o β-hidroxibutírico. -Bilirrubina: a bilirrubina urinária é mais um indicador de enfermidade hepática do que doença do sistema urinário. Este teste detecta apenas a bilirrubina conjugada. -Sangue Oculto: quando positivo deve-se à hemorragia no trato urinário, hemoglobinúria ou mioglobinúria. Hemorragia pode ser confirmada pelo achado de hemácias no sedimento urinário. A hemoglobinúria resulta da intensa hemólise intravascular, podendo ser notado manifestação clínica de icterícia e geralmente nota-se mioglobinúria quando há grave lesão muscular, com aumento na atividade de enzimas musculares (CK, LDH e AST). -pH: normalmente a urina é ácida em carnívoros e alcalina em herbívoros. O pH mais elevado em carnívoros deve-se a conversão bacteriana de uréia em amônia (cistite). A cistite pode ser confirmada pelo exame do sedimento, verificando leucócitos e bactérias. Em ruminantes um pH urinário menor pode ser constatado em casos de deslocamento de abomaso, em alcalose, hipocloremia e hipocalemia. Exame Microscópico: é o procedimento de maior sensibilidade e é muito útil na localização da lesão renal. -Células na Urina: há três tipos principais de células: células epiteliais, hemácias e leucócitos. A quantidade de células é influenciada pelo método de coleta de urina. -Células Epiteliais: tubulares renais, de transição (bexiga e uretra) e escamosas. -Hemácias: o aumento da quantidade de hemácias na urina indica hemorragia no trato urinário (sem especificidade). -Leucócitos: o aumento da quantidade de leucócitos na urina indica hemorragia ou inflamação do trato urogenital. -Cilíndros: se originam apenas nos túbulos renais. Sempre são anormais, independente da quantidade. Há vários tipos de cilindros: eritrocitário, leucocitário, epitelial, granular, gorduroso e hialino. -Cristais: podem ser encontrados em urinas normais ou anormais. Alguns tipos de cristais são comuns em uma determinada espécie, e é dependente de pH e da dieta. 27 www.veterinariandocs.com.br -Microorganismos infecciosos: na urina é possível encontrar bactérias e parasitas (microfilária de Dirofilaria immitis, ovos de Capillaria plica, Dioctophyma renales e Stephanurus dentatus). Exemplos Práticos Exame Físico: Amostra 1 Amostra 2 Amostra 3 Odor Sui generis Sui generis Sui generis Cor Amarelado Amarelado-Alaranjado Levemente alaranjado Turbidez Límpido Turbidez leve Turbidez moderada *Tubo 2 (provável hematúria) e tubo 3 (provável hemoglobinúria). Exame Químico: Amostra 1 Amostra 2 Amostra 3 Densidade 1,024 1,021 1,022 pH 6,0 7,0 8,0 Proteína - + ++ Corpos Cetônicos - - - Urobilinogênio normal normal normal Bilirrubina - - - Sangue Oculto - +++ +++ Glicose - - - Exame Microscópico: Amostra 1 Amostra 2 Amostra 3 Cristais +++ +++ +++ Hemácias 8 - 10 50 - 80 - Leucócitos raros 50 - 80 - Células raros - 5 - 8 28 www.veterinariandocs.com.br Bactérias raras +++ ++ Cilíndros - - + Interpretação dos Resultados Observados -Amostra 1: exame físico e químico dentro dos padrões normais para a espécie canina. Apenas foi constatado a presença de hemácias, poucos leucócitos, células, microorganismos (bactérias) e cristais (+++) pela análise do sedimento urinário. Esses dados poderiam dar um indício de algum tipo de infecção urinária (cistite), mas como não é uma amostra recent, há proliferação de bactérias e essa pequena presença de hemácias pode ser normal ou até em virtude do tipo de coleta da urina (cistocentese). -Amostra 2: pelo exame físico foi verificado uma leve turbidez e alteração na coloração (amarelo-alaranjado). Pelo exame químico, verificou-se alterações no pH (levemente aumentado – 7,0), pequena quantidade de proteína (+) e grande quantidade de sangue oculto (+++). E pelo exame microscópico do sedimento verificou-se a presença de cristais (+++), grande quantidade de hemácias, leucócitos e bactérias (+++). Esses dados dão um indício de algum tipo de infecção no trato urinário (cistite, uretrite, pielite, pielonefrite, nefrite, entre outras), pela grande presença de bactérias, leucócitos e hemácias (em virtude da inflamação), e também pelo aumento do pH. E há uma proteinúria do tipo pós-renal provavelmente, porque há uma inflamação no trato urinário. -Amostra 3: pelo exame físico foi verificado turbidez moderada e alteração na coloração (alaranjado). Pelo exame químico verificou-se alterações no pH (moderadamente aumentado – 8.0), grande presença de proteína (++) e grande quantidade de sangue oculto (+++). E pelo exame microscópico do sedimento foi verificado grande quantidade de cristais (+++), quantidade moderada de células, bactérias e cilíndros. Esses dados dão um indício de algum tipo de insuficiência renal, pois há moderada quantidade de proteína, sangue oculto (hemoglobinúria), células e cilíndros. Essa proteinúria pode ser tanto pré-renal (Bence-Jones), indicando um mieloma múltiplo, juntamente com a hemoglobinúria, ou uma proteinúria renal, que reside em lesões renais que resultem na incapacidade do glomérulo em reter moléculas grandes como as proteínas. E juntamente com isso verifica-se a presença de cilindros, que são formados por proteínas, as quais passam pelo glomérulo e tomam o formato dos túbulos renais que posteriormente rompem-se. *Em todas as amostras foi verificado a presença de cristais, mas isso pode ser em virtude da urina não ser fresca, e ficar armazenada sob refrigeração. Não tendo nenhum significado clínico. 29 www.veterinariandocs.com.br Referências Bibliográficas THRALL. M.A, et al. Hematologia e Bioquímica Clínica Veterinária. 1 Ed. São Paulo: Roca, 2007.
Compartilhar