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Bibliotecas, sequenciamento e transformação genética Instituto de Biologia Departamento de Genética Disciplina: Genética molecular Profa. Marilene marilene.ufrrj@gmail.com • Fagos - partículas virais que invadem e destroem bactérias • Na década de 40 • "tesouras" moleculares, que a bactéria emprega para se defender dos bacteriófagos • Enzimas produzidas por bactérias para restringir a proliferação de vírus invasores Enzimas de restrição • O fenômeno, conhecido como restrição controlada pelo hospedeiro, foi descrito pela primeira vez no início da década de 50. • Werner Arber, um microbiologista suíço, encontrou uma explicação molecular para o fenômeno. • Ele sugeriu que as bactérias controlam os fagos com um sistema de reações geneticamente controladas que ele designou restrição - modificação. • Proteínas que reconhecem e clivam o DNA em pontos específicos, geralmente em sequências de 4, 6 e 8 bases - palíndromas RY 13 Exemplo: EcoR I Escherichia coli 1º enzima a ser descoberta nesta bactéria Gênero Estirpe Espécie Ordem de descoberta Corte com Eco RI Corte com Eco RI Fragmentos com Extremidades coesivas vazio vazio Anelamento permite que moléculas de DNA recombinante realizem um pareamento complementar. As duas fitas não estão ligadas covalentemente como pode ser visto nas áreas circuladas (vazio) • Quando os bacteriófagos entram numa bactéria da linhagem A, são em sua maioria mortos no interior da bactéria, que corta (cliva) o DNA em um ou mais pontos. Os poucos fagos que se replicam no interior da bactéria, contudo, parecem "aprender" a evitar o ataque da bactéria e, numa segunda infecção, já produzem um grande número de partículas virais novas. Quando estes fagos procuram infectar uma bactéria da mesma espécie, porém de uma outra linhagem (digamos, B), inicialmente produz uma progênie pequena e apenas na segunda infecção na mesma linhagem bacteriana é que se adapta e produz um grande número de partículas virais novas. Se transportado a um tubo de ensaio com a bactéria A original, o fenômeno se repete, como se o fago tivesse "desaprendido" a infectar a bactéria do tipo A. Bibliotecas • São coleções de sequências de DNA • Genes recombinantes • Utilização diversa • Isolamento de um gene • Sequenciamento • Clonagem.... Biblioteca Genômica cDNA Biblioteca genômica • Coleção de fragmentos de DNA de uma determinada espécie • Fragmentos obtidos por meio da ação de enzimas de restrição, clonados e ligados a vetores • Representa o genoma do organismo Bibliotecas Vetores Vetores de clonagem molecular • Pequenas moléculas de DNA • são moléculas de DNA capazes de amplificar, em centenas de cópias, a informação genética que nelas foi inserida. Biblioteca genômica Plasmídeos • DNA circular, bifilamentar extracromossômico; presente em microorganismos, principalmente bactérias; • De 1 a 200 kb de tamanho. • Acomodam fragmentos de até 30 mil pares de bases Vetores Vetores de clonagem molecular Biblioteca genômica YACs (Yeast Artificials Cromossomes) – acomodam de 300 mil a 1 milhão de pb BAC (bacterial artificial chromosome ) - até 300 mil pb Sítio de replicação Resistência a ampicilina 1. Uma origem de replicação; 2.Um gene marcador selecionável (em geral confere resistência a drogas); 3.Sítio de clivagem única. Beta-lacmatase – resistência a ampicilina Lac Z – beta galoctosidade Beta-lacmatase – resistência a ampicilina Lac Z – beta galoctosidade • A enzima cliva também o composto Xgal em galactose e 5-bromo-4- cloroindigo 2. Fragmentos gerados enzimas de restrição 3. Fragmentos são ligados ao DNA 4. Transfecção Biblioteca genômica 1. Extração do DNA genômico total 2. Clivar o DNA do vetor 5. Seleção das bactérias transformadas • Como identificar os clones transformados? • Células de E. coli, sensíveis a ampicilina, são transformadas com plasmídeos que conferem resistência ao antibiótico. Apenas as células transformadas serão capazes de crescer na presença de ampicilina. • Os plasmídeos de clonagem têm uma segunda marca de resistência a antibióticos (em geral, tetraciclina), que é perdida quando o plasmídeo é aberto e o inserto é clonado. DNA recombinante • Complementary DNA • Construída pela cópia de um mRNA presente em um determinado tecido e possui apenas a informação funcional Biblioteca cDNA 1. Extração do RNA total 2. Transcriptase reversa 3. Dupla hélice híbrida 3. RNase 4. Síntese cDNA 5. Transfecção, seleção de vetores transformados • Método de Sanger, 1975 • Terminação por dideoxinucleotídeo • Síntese de cópias parciais de DNA • Terminação prematura ao acaso e em bases específicas • Produção de fragmentos de diferentes tamanhos, terminado em cada uma das diferentes bases Sequenciamento Sequenciamento • Dideoxinucleotídeo trifosfasto, ou ddNTP. • dNTP, ou desoxiribonucleotídeo trifosfato - apresenta uma hidroxila na posição 3´. • ddNTP - não tem esta hidroxila. • Se for incorporado a uma fita de DNA, interrompe a incorporação de outros nucleotídeos a partir dele. • Marcar o ddNTP - radiação ou fluorescência, • Logo, fita interrompida ficará radiativa ou fluorescente e poderá ser detectada mais facilmente. • Vamos admitir que cada didesoxibase está marcada com uma florescência diferente. • As fitas terminadas em A, T, G ou C vão emitir cores diferentes quando excitadas com luz de um determinado comprimento (em geral, de um feixe laser). Sequenciamento Como a reação de sequenciamento pode começar sempre exatamente da mesma base? • A partir do DNA molde que adicionamos à reação. • Uma nova fita simples só é sintetizada se tivermos: • DNA molde, • DNA polimerase, • dNTPs (e neste caso, um pouco de ddNTPs fluorescentes) • um primer O primer sempre pareia exatamente na posição esperada, jamais uma base antes ou uma depois. Dessa forma, todas as fitas estendidas a partir deste primer iniciam rigorosamente na mesma base, a partir do primer e copiando a fita molde. Sequenciamento • As fitas produzidas podem ser separadas pelo tamanho em eletroforese de poliacrilamida, e a base final da sequência da fita identificada pela fluorescência emitida quando a banda eletroforética correspondente à fita cruza o ponto do gel que é iluminado por um feixe de laser. • Neste sistema de detecção a eletroforese não pára, as bandas passando no fim (em baixo) do gel é que são detectadas em movimento. Com isto, podemos identificar com precisão 600 a 700 bases a partir do primer. Sequenciamento NNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNTCTCTTATATANNATTCCCGCCTTCNNTAAAGT ATGCAAATAATGTCTGGTTTTAAAGTAATGATTAACTGCATGCTCAGGATAATAGG GTTTGATGCCTTTATCCATGGGAAAATATTTGGTAACCTTAGGATAAAATCTAGCT GGCATAACCAATTTTAATCTTCGTAATTCATTTTTAGTAAGTGGGCCTACAAATTGT TCACATTTAGAAATCAGGTCTTGATGCAAATGAATATTAGGAAAAGAAGNANTGNA CCAGTTAGGATTAAAAGCAGGCACAGTAGAAGAGTAAAGCCCCGTAAAGTTTCC CACCTTATGAGTCCAAGGAATACTAACATTGGNAAGCTGGAGATTGAGATCTGCG GCGACGCGGTGATTGAGATCTTCGTCTGCGAGGNGAGNNAGTTCTTCTNCTAG GGGACCTGCCTCGTCGNCTAACAACAGTAGTTTCCGGAAGTGTGNATAGGATAG GGGCNTTTGGTGGTCTGTANGCAGGANGAGTGCGAATCNNCACTCNNAAGGAC ACCAAATACTCTAGNACTGTNCTCTTCCAAAAGTAAGGCAGGAAATGTGANNNNA CANCAGNNGTCTANNTTNNNNNNNNNNNNNNNNAACNTAGNNAACTACTAAANC CCTANCTNNNNCNNNNCANNNNNNNNNNCNCCCNAGNNNGCNANNNNCATNN CCTNNNNCNNNANANNNNNNANNNTNNCTNNNNNCCNTNNNGNNNNNAANNNN NNANNNNCAGNNNANNNNNNNNNNNNNNNNNAANNNNNNNNNNNNNNNTNNN NNANNNNNNNNNNNNGGNNNANNCANNNNNN Formato de saída – SEQ Transformação genética 1. Clonagem e isolamento do gene • Identificar o gene responsável • Desenvolver bibliotecas genômicas• Sondas apropriadas para reconhecer o gene Transformação mediada por Agrobacterium • Início do séc. XIX • Agrobacterium tumefasciens • Plasmídeo Ti • Causa galha • Infecta cerca de 600 espécies vegetais • Plasmídeo Ti • 200kb • Genes ligados a transferência e integração desse plasmídeo • Capaz de introduzir parte do seu genoma na planta hospedeira • T-DNA • Bordas 25pb • Opinas e genes indutores de tumor Transformação mediada por Agrobacterium • Sendo assim, qualquer sequênia que for colocada nessa região será transferida junto com o plasmídeoc • Região de virulência Transformação mediada por Agrobacterium Etapas básicas • Obtenção do plasmídeo Ti desarmado • Gene de interesse e um gene marcador • Resistência a antibiótico Transformação mediada por Agrobacterium • Ferimento do tecido • A bactéria penetra na célula • Expressão dos genes de vir • O T-DNA começa a ser preparado • As bordas 25pb são reconhecidas- VirD1/D2 e clivadas • T-DNA em associação com proteínas é exportado • Direcionado para o núcleo VirD2 e VirE2 • Se integra ao genoma da planta n Biobalistica • John Sanforf, 1987 • Aceleração de micropartículas • Ouro ou tungstênio • Atravessam a parede celular e a membrana plasmática, carreando o DNA para o interior do célula • As partículas de outro com o DNA de interesse • Complexo partícula-DNA acelerado sob vácuo atingindo o tecido alvo • 1.500 km/h • Regeneração • Gene marcadores • Gene hpt – antibiótico higromicina • Gene aro A- resistência herbicida glifosato • Genes repórteres • Gene gus – precipitado azul • Gene luc – produz luz verde-amarelada
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