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MINISTÉRIO DA EDUCAÇÃO UNIVERSIDADE FEDERAL DE PELOTAS INSTITUTO DE BIOLOGIA DEPARTAMENTO DE ZOOLOGIA E GENÉTICA LABORATÓRIO DE ENGENHARIA GENÉTICA ANIMAL CARLA MOREIRA – CARLAFARMA@GMAIL.COM DNA * RECAPTULAÇÃO DNA é um ácido nucléico composto de duas cadeias antiparalelas complementares. Os nucleotídeos são compostos de um grupo fosfato, uma pentose e uma base nitrogenada DNA * RECAPTULAÇÃO *Acúcar do DNA *Ácido Desoxirribonucleico *Açúcar do RNA *Ácido Ribonucleico DNA * RECAPTULAÇÃO Possui quatro bases nitrogenadas. *Duas são chamadas purinas *Adenina ( A ), Guanina ( G ) *Duas são pirimidinas *Citosina ( C ), Timina ( T ) DNA * RECAPTULAÇÃO Essas quatro bases são ligadas em um padrão repetitivo por pontes de hidrogênio entre as bases nitrogenadas A ligação de duas cadeias complementares é chamada de HIBRIDIZAÇÃO. DNA * RECAPTULAÇÃO Uma purina sempre se liga a uma pirimidina para manter a estrutura do DNA. Adenina ( A ) se liga a timina ( T ), através de duas pontes de hidrogênio. Guanina ( G ) se liga a citosina ( C ), através de três pontes de hidrogênio. Padrão de ligação. * Padrão primário CCGAATGGGATGC GGCTTACCCTACG * Padrão complementar DNA * RECAPTULAÇÃO DNA * RECAPTULAÇÃO Diferenças entre DNA e RNA * RECAPTULAÇÃO Açúcar Desoxirribose Ribose Fita dupla Fita simples DNA *Adenina *Guanina *Citosina *Timina RNA *Adenina *Guanina *Citosina *Uracila Purinas Pirimidinas Bases Nitrogenadas Genética Molecular: DNA * RECAPTULAÇÃO *Introdução ao PCR *Reação da Polimerase em Cadeia É a técnica de multiplicação de parte de uma fita de DNA (gene ) ou RNA. *Introdução ao PCR *Pai da técnica: Kary Banks Mullis - Lenoir, 28 de dezembro de 1944 é um Bioquimico. Idéia em 1983 Publicação em Outubro de 1985 American Society of Human Genetics Laureado com o premio nobel de Quimica em 1993, pela invenção da da tecnica. DNA * INTRODUÇÃO Bases que Kary Banks Mullis utilizou sou para esta técnica # Diferenças de temperatura – à 95°C desnatura (abre a fita de DNA) # Enzima que funcionasse à temperaturas altas DNA polimerase que é termoestável. O seu nome é devido a ter sido identificada pela primeira vez na bacteria Thermus aquaticus Encontrada em fontes termais suporta por 40 minutos (a 94°C). Características do PCR Amplificação de Seqüências Processo Cíclico 15 a 40 ciclos realizado por mudança de temperatura Produção de DNA por PCR Produção de 2 a 4 mg DNA em 1-3 hs específico = amplifica sequência-alvo na presença de DNA genômico sensível = detecta até apenas 1 sequência de molde flexível = muitas variações da técnica básica de PCR *Requerimentos Básicos do PCR 1. Molde - DNA ou RNA 2. DNA polimerase 3. dNTPs 4. Iniciadores de Oligonucleotídeos (Primers) Função dos Iniciadores Primers fragmento de fita simples fornecer grupo 3’ OH para iniciação de síntese de DNA definir os limites do segmento de DNA-alvo a ser amplificado estabelecer especificidade Recaptulação sobre fragmento de fita simples- RNA Função dos Primers Oligos Iniciadores Primers sintetizados quimicamente tipicamente entre 15 a 25 bases define limites de alvo a amplificar prévio conhecimento da sequência alvo tradução reversa de uma sequência de PTN primer de seqüências aleatórias Ciclos de Temperatura no PCR Anelamento do Primer Tm Desnaturação Extensão 94oC do Primer 72oC Abertura das 2 fitas de DNA Primer se liga Taq DNA polimerase faz a colocação dos nucleotídeos Desnaturação do DNA 94 a 100oC Desnaturar DNA alvo Desnaturar produtos de ciclos prévios 4 a 10 min de desnaturação inicial duração de 30 s a 1 min Anelamento do Primer 40 a 70oC Temperatura de “hibridização” otimização da temperatura para cada par de primer composição = %G+C Tm = 81.5 + 16.6(log10([M Na+])) + 0.41*(%GC) - 600/length determina especificidade do produto amplificado tipicamente 30 s a 2 min Vide aula de Acidos Nucleicos- Propriedade do DNA Anelamento do Primer %G+C *Tm = 81,5o + 16,6 * (log10([M Na+])) + 0,41*(%GC) - 600/comprimento *[Na] em concentração Molar {PCR usa-se KCl} *%GC em percentual *comprimento em bases * Primer3 - 600/length *GCG - 674/length *formamida: subtrair 65*(% formamida) *Primers > 10 bases em 0,05 M sal (PCR) Tm = 59,9 + 0.41*(%GC) - 675/comprimento http://www.premierbiosoft.com/netprimer/netprlaunch/netprlaunch.html Extensão do Primer 72oC Taq polimerase faixa de atividade: 20oC a 85oC atividade varia 100x nessa faixa Tempo de extensão varia de acordo com tamanho do produto desejado Amplificação Geométrica Ciclo Número Fita Duplas produzidas 1 0 5 8 10 256 15 8.192 20 262.144 25 8.388.608 30 268.435.456 35 8.589.934.589 40 274.877.906.800 Objetivos: Clonagem de Genes Identificação de Mutação Diagnóstico de Doenças Controle de Qualidade Taxonomia Medicina forense Variabilidade Genética PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Objetivo do uso da tecnica de PCR Usos da tecnica da PCR -Clonagen Técnica da PCR para multiplicar o fragmento de interesse Sequenciamento do gene MC1R Usos da tecnica da PCR -Mutação PCR – Reação em Cadeia da Polimerase Usos da tecnica da PCR -Diagnostico de doença Discriminação alélica do fator V da coagulação por PCR Discriminação alélica do fator V da coagulação por PCR em tempo real: diagnóstico simples e preciso Allelic discrimination of coagulation factor V by real time PCR: a simple and accurate diagnosis Aldemir B. Oliveira Filho1 Júlia F. Campos2 Magaly B. P. L. V. Lima3 Farida C. B. C. Melo3 Washington B. Neves4 Raul A. M. Melo5 José Alexandre R. Lemos6 PCR – Reação em Cadeia da Polimerase Usos da tecnica da PCR -controle de qualidade Controle de qualidade de semem bovino Usos da tecnica da PCR -controle de qualidade Usos da tecnica da PCR -Taxonomia Usos da tecnica da PCR -Medicina forence Coleta de material no local de um crime por exemplo Usos da tecnica da PCR -Paternidade RT-PCR (Transcriptase reversa): Expressão Gênica Multiplex PCR: Sexagem embriões Nested PCR: Aumento sensibilidade e especificidade Hot-Start PCR: Amplificação inespecífica PCR em Tempo Real: Visualização do aumento da quantidade Nested Supression PCR (NSP): Sequências desconhecidas PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Variação da PCR PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Variação da PCR PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Variação da PCR PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Variação da PCR PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Variação da PCR Reação de PCR é ativada quando a temperaturaatinge 940C. Esse procedimento aumenta a especificidade da PCR, pois aDNA polimerase contém um anticorpo que se desnatura e ativa a enzima ao atingir a temperatura de 940C. DNA polimerases que não possuem esse inibidor podem amplificar produtos indesejados (inespecíficos) em temperatura ambiente. Hot start aumenta: especificidade, sensibilidade e rentabilidade do produto PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Variação da PCR PCR – Reação em Cadeia da Polimerase *Aparelhagem * * Coleta do material 1 – Preparo do material 2 – Lise 3 – Purificação 4 – Precipitação 5 – hidratação PCR – Reação em Cadeia da Polimerase * Extração do DNA M1 M1 N1 N1 M2 M2 N2 N2 M3 M3 N3 N3 Marc PCR – Reação de Polimerização em Cadeia Busca da região codificante PCR – Reação em Cadeia da Polimerase PRIMERS PCR – Reação em Cadeia da Polimerase PRIMERS * PCR Ciclo da reação 1- Desnaturação 2- Anelamento 3 - Polimerização 94 - 95°C 50 – 65°C 72°C PCR – Reação em Cadeia da Polimerase REAÇÃO PCR Repetição do ciclo PCR – Reação em Cadeia da Polimerase REAÇÃO Volume da Reação Vol. (µl)/tubo Vol. (µl)/6 tubos H2Odd 17,7 106,2 10x Buffer 2,5 15,0 Mgcl2 1,5 9,0 dNTPs 0,5 3,0 Primer 1,0 6,0 Taq® 0,8 4,8 DNA/ H2Odd 1,0 6,0 Total 25,0 150,0 PCR – Reação em Cadeia da Polimerase REAÇÃO Tempo da Reação Temperatura (°C) Tempo Desnaturação inicial 94 5’ Desnaturação 94 30’’ Anelamento 56 60’’ Extensão 72 3’ Extensão final 72 7’ Em espera 15 - Ciclos: 35x PCR – Reação em Cadeia da Polimerase REAÇÃO Eletroforese em gel de agarose 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 Marc1 Marc2 PCR – Reação em Cadeia da Polimerase ANÁLISE Obrigado PCR – Reação em Cadeia da Polimerase
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