POP para Hemoculturas

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HEMOCULTURA PARA AERÓBIOS E LEVEDURAS 
 
 
 
RESPONSABILIDADE DA COLETA: Técnicos de Laboratório (exceto em pacientes da UTI) 
 Equipe de enfermagem (UTI) 
 
CADASTRAMENTO NO SISTEMA DE ADMINISTRAÇÃO HOSPITALAR: 
 
Adultos: 
Hemocultura: Cadastrar as siglas HM1 e HMA (para cada punção solicitada). 
Hemocultura para fungos/ leveduras: Cadastrar a sigla HM1 
 
Crianças: 
Hemocultura: Cadastrar as siglas HM1 e HMA (para cada punção solicitada) ou cadastrar 
somente HM1 em casos de difícil coleta. 
 
MOMENTO DA COLETA: Hemocultura é um exame de URGÊNCIA!!! 
 
ORIENTAÇÕES GERAIS 
 
A coleta deve ser realizada logo no início dos sintomas, preferencialmente antes do início da 
antibioticoterapia. 
 
 Pacientes com quadro agudo de sepse ou outra condição (osteomielite, 
meningite, pneumonia ou pielonefrite): coletar 2 hemoculturas consecutivamente 
de dois sítios anatômicos diferentes antes de iniciar a antibioticoterapia 
 Pacientes com endocardite bacteriana subaguda, febre de origem desconhecida 
(abcessos ocultos, febre tifóide, brucelose) ou fungemia: coletar três 
hemoculturas, de sítios anatômicos diferentes, duas simultâneas e uma em intervalo 
de aproximadamente 1 a 2 horas. 
 Pacientes em antibioticoterapia: a coleta deve ser feita na menor concentração do 
agente atimicrobiano, ou seja, minutos antes da próxima dose de antimicroabiano. 
 
VOLUME DE SANGUE RECOMENDADO 
 
Neonatos a 1 ano (<4 Kg): 0,5 a 1,5ml (sempre que possível coletar pelo menos 1ml) 
Crianças de 1 a 6 anos: 1ml por ano de idade dividido em duas hemoculturas (punções de 
sítios diferentes). Por exemplo: 3 anos: coletar 1,5ml por punção em dois sítios diferentes 
distribuindo cada punção em um frasco, totalizando 3 ml. Se a criança tiver baixo peso, ou 
coletas de sangue prévias, consultar o médico responsável antes de efetuar as coletas 
 
Crianças entre 14 a 37kg: coletar 10 a 20 ml divididos em duas punções de sítios diferentes 
distribuindo cada punção em um frasco 
 
1 AMOSTRA/HEMOCULTURA = 
1 PUNÇÃO VENOSA DISTRIBUÍDA EM 2 
FRASCOS DE HEMOCULTURA 
 
Adultos e crianças maiores que 37kg: coletar 40ml divididos em duas punções de sítios 
diferentes distribuindo cada punção em dois frascos, 10ml por frasco. 
 
TIPO DE FRASCO DE HEMOCULTURA 
 
Adulto: 
Frasco aeróbio (tampa azul) e frasco anaeróbio (tampa laranja) (até 10 ml em cada frasco) 
 
Pediátrico: 
Frasco pediátrico (tampa rosa) (até 3 ml) 
 
PROCEDIMENTO DE COLETA (Veias periféricas): 
 
1º Passo: Preparo do material 
 
 Identificar todos os frascos; 
 Colar a etiqueta e anotar a hora da coleta e a punção (Exemplo: 1º punção - aeróbio e 
anaeróbio ou 2° punção - aeróbio e anaeróbio) ou anotar o nome do paciente, hora e 
punção (Exemplo: 1º punção - aeróbio e anaeróbio ou 2° punção - aeróbio e 
anaeróbio); 
 IMPORTANTE!!!!! NÃO escrever ou colar etiqueta sobre o código de barras ou 
no fundo do frasco; 
 Calçar as luvas; 
 Remover o lacre e limpar a tampa de borracha da garrafa utilizando algodão 
embebido em álcool 70%. 
 
2º passo: Escolher o melhor local de punção para a coleta 
 
 Colocar o garrote e apalpar livremente as veias do paciente para escolher a mais 
calibrosa e menos móvel; 
 Soltar ou afrouxar o garrote. 
 
3º passo: Antissepsia 
 
 Utilizar algodão embebido em clorexidina alcoólico 0,5%, friccionando a pele em 
círculos semi-abertos a partir do ponto a ser puncionado; 
 Deixar secar por 30 segundos; 
 Utilizando novo algodão, aplicar novamente clorexidina e repetir o procedimento 
acima; 
 Não voltar a tocar no local onde foi feita a antissepsia. Se for necessária nova 
palpação, utilizar luvas estéreis ou fazer rigorosa antissepsia na luva antes de tocar o 
local. 
 
4º passo: Coleta 
 
 Colocar ou apertar novamente o garrote e puncionar a veia com agulha e seringa ou 
dispositivo para coleta a vácuo com scalp, sem tocar diretamente no local de punção. 
 
ATENÇÃO!!!! 1 punção = dois frascos de 10 mL: 1 frasco aeróbio e 1 frasco anaeróbio. 
Para crianças com difícil coleta pode-se utilizar 
 
 
 
 
Coleta com seringa 
 
 Transferir a amostra para os frascos de hemocultura previamente identificados sem 
trocar a agulha; 
 Observar o volume correto de sangue na própria seringa (volume máximo de 3 ml no 
frasco pediátrico ou 10ml nos frascos anaeróbios e aeróbios); 
 Colocar primeiro a amostra coletada por seringa no frasco anaeróbio e depois no 
frasco aeróbio. 
 
Coleta com scalp 
 
 Os frascos devem permanecer na posição vertical durante toda a coleta para evitar 
refluxo do caldo de hemocultura para a veia do paciente; 
 Observar o volume correto na guia de marcação no rótulo do próprio frasco de 
hemocultura que deve estar na posição vertical (volume máximo de 3 ml no frasco 
pediátrico ou 10ml nos frascos aeróbios e anaeróbios); 
 Colocar primeiro no adaptador para coleta com scalp o frasco aeróbio e depois o 
frasco anaeróbio. 
 
5º passo: Tratar o local da punção 
 
 Ao retirar a agulha, fazer compressão local com algodão seco, sem friccionar. 
 
TRANSPORTE E ARMAZENAMENTO 
 
As amostras devem ser enviadas imediatamente ao laboratório!!! 
 
Não refrigerar os frascos de hemocultura. 
Eles devem permanecer a temperatura ambiente até serem introduzidos no equipamento de 
automação no Setor de Microbiologia, dentro de, no máximo, 4 horas. 
 
Observação: Frascos aeróbios são apropriados para cultivo de bactérias e leveduras, 
e por recomendação do fabricante devem ficar incubados no equipamento por até 5 
dias. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
HEMOCULTURA DE CATETER 
 
RESPONSABILIDADE DA COLETA: Equipe de enfermagem 
 
CADASTRAMENTO NO SISTEMA DE ADMINISTRAÇÃO HOSPITALAR: 
 
Hemocultura de cateter: Cadastrar as siglas HMC, HM1 e HMA 
 
ORIENTAÇÕES GERAIS 
 
Normalmente a hemocultura não deve ser coletada por cateter. 
 
Coletar somente para diagnóstico de infecção relacionada ao cateter!!! 
 
Nos casos de suspeita de Infecção relacionada a cateter coletar: 
 
 1 frasco aeróbio (tampa azul) do cateter (identificar como CATETER) 
 1 hemocultura periférica: 1 frasco aeróbio de veia periférica (tampa azul) com 
mesmo volume que o frasco de cateter (identificar o frasco como PERIFÉRICO) e 1 
frasco anaeróbio (tampa laranja) da mesma punção. 
 
Nota: É fundamental identificar corretamente cada frasco com o local da punção, pois a 
confirmação de infecção relacionada ao cateter se dará quando o frasco coletado do cateter 
positivar no mínimo 2 horas antes do frasco coletado por punção periférica, para o mesmo 
microrganismo. 
 
O coletador deve utilizar o mesmo tipo de frasco para a amostra do cateter e para a amostra 
periférica aeróbica (frasco de tampa azul), e distribuir o mesmo volume de amostra em cada 
frasco. Exemplos: 10ml frasco aeróbio (CATETER) = 10 ml frasco aeróbio (PERIFÉRICO) 
 7 ml frasco aeróbio (CATETER) = 7 ml frasco aeróbio (PERIFÉRICO) 
 
Evitar coletar amostra de cateter dentro de uma hora após a administração de 
antimicrobianos. Esperar e coletar um pouco antes da próxima dose! 
 
TIPO DE FRASCO DE HEMOCULTURA 
 
A coleta do cateter deve ser realizada somente em frasco aeróbio (tampa azul)!!! 
 
PROCEDIMENTO DE COLETA 
 
1º Passo: Preparo do material 
 
 Identificar dois frascos aeróbios (tampa azul); 
 Colar a etiqueta e anotar a hora da coleta e o sítio anatômico de maneira clara 
(Exemplo: em 1 dos frascos escrever PERIFÉRICO e no outro escrever CATETER) 
 IMPORTANTE!!! NÃO escrever ou colar etiqueta sobre o código de barras ou 
fundo do frasco; 
 Calçar as luvas; 
 Remover o lacre e limpar a tampa de borracha da garrafa utilizando algodão 
embebido em álcool 70%. 
 
2º passo: coleta de sangue periférico (hemoculturaperiférica) 
 
 
 Realizar a coleta periférica conforme descrito acima: 1 punção = 1 frasco aeróbio 
(tampa azul) com identificação PERIFÉRICO e 1 frasco anaeróbio (tampa laranja). 
 
ATENÇÃO!!!! Observar o volume de sangue adicionado ao frasco aeróbio periférico 
(máximo 10 ml) pois deverá ser adicionado o mesmo volume ao frasco aeróbio 
(azul) coletado do cateter. 
 
3º passo: coleta do sangue de cateter 
 
 Fazer antissepsia do dispositivo (cateter) utilizando algodão embebido em álcool 70% 
e deixar secar por 30 segundos. 
 Desconectar o dispositivo, atarrachar uma seringa e coletar o sangue para cultura 
através do cateter; 
 NÃO desprezar volume de sangue inicial antes da coleta via cateter; 
 No frasco aeróbio (tampa azul) identificado CATETER, adicionar o mesmo volume de 
sangue introduzido no frasco utilizado na coleta de sangue periférica (máximo 10 ml) 
(observar o volume correto na guia de marcação da seringa); 
 Homogeneizar delicadamente os frascos de hemocultura para evitar coagulação. 
 
TRANSPORTE E ARMAZENAMENTO 
 
As amostras devem ser enviadas imediatamente ao laboratório!!! 
 
Não refrigerar os frascos de hemocultura. Eles devem permanecer a temperatura ambiente 
até serem introduzidos no equipamento de automação no Setor de Microbiologia, dentro de 
no máximo 4 horas. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
HEMOCULTURA PARA MICOBACTERIAS E FUNGOS FILAMENTOSOS 
 
RESPONSABILIDADE DA COLETA: Técnicos de Laboratório (exceto em pacientes da UTI) 
 Equipe de enfermagem (UTI) 
 
CADASTRAMENTO NO SISTEMA DE ADMINISTRAÇÃO HOSPITALAR: 
 
Hemocultura para Micobactérias (ou hemocultura para M.tuberculosis): Cadastrar a sigla 
HMM 
 
Hemocultura para FUNGOS FILAMENTOSOS: Cadastrar a sigla HMM 
 
ORIENTAÇÕES GERAIS 
 
O sistema automatizado possui frascos líticos apropriados para cultura de micobactérias e 
fungos filamentosos. 
 
A coleta deverá ser realizada conforme descrito para as demais hemoculturas. 
 
Nota: Para este tipo de frasco a coleta não deve ser realizada por meio de cateter. 
 
TIPO DE FRASCO DE HEMOCULTURA 
 
 Frasco Lítico (tampa vermelha) (volume máximo de 5 ml) 
 
PROCEDIMENTO DE COLETA 
 
A coleta deverá ser realizada seguindo os mesmos passos descritos para hemocultura (1º a 
5° passos). 
 
 Observar o volume correto na guia de marcação da etiqueta do próprio frasco (volume 
máximo de 5 ml); 
 Homogeneizar delicadamente os frascos. 
 
TRANSPORTE E ARMAZENAMENTO 
 
As amostras devem ser enviadas imediatamente ao laboratório!!! 
 
Não refrigerar os frascos de hemocultura, eles devem permanecer a temperatura ambiente 
até serem introduzidos no equipamento de automação no laboratório de microbiologia, 
dentro de no máximo 4 horas. 
 
IMPORTANTE: Os frascos ficarão incubados por até 45 dias. 
 
Este exame deverá ser solicitado somente em casos suspeitos de infecções por 
micobactérias ou fungos filamentosos, sendo necessária avaliação da infectologia para 
sua solicitação. Devido ao tempo elevado de incubação, os frascos bloqueiam as células do 
equipamento limitando a realização das demais hemoculturas. Por esse motivo, o exame 
não deve ser solicitado quando a suspeita for infecção por leveduras.