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ESTUDOS IN VIVO INTRODUÇÃO ENSAIOS LABORATORIAIS Subtipos: - Estudos in vitro - Estudo in ex vivo / material humano (coleto a amostra / órgão do animal e continuo o experimento com esse material ainda vivo fora do animal, em ambiente laboratorial) - Estudo in vivo Vantagens: - Elimina a subjetividade dos achados e proporciona melhor comparação de estudos - Ensaios controlados (redução de viés) - Útil quando há restrições no uso de seres humanos Desvantagens: - Limitação da extrapolação de resultados laboratoriais para seres humanos ESTUDOS EM ANIMAIS Histórico: - Hipócrites (450 aC) com dissecção de órgãos de animais - Galeno (340 dC) com vivissecção experimentais - 1964 – Declaração de Helsinque: regulamentou a pesquisa clínica em humanos e a pesquisa em animal. Necessidade de desenvolvimento de modelos animais prévios a pesquisa em humanos Porque ainda fazemos pesquisas em animais? - Questões econômicas e práticas - Organismos complexos (cultura – único tecido) - Repetição de experimentos, extração dos tecidos tratados, análises invasivas - Questões éticas envolvendo a pesquisa em seres humanos - Sequencia: Estudos experimentais (cultura de células) → Modelos em animais → Ensaios clínicos - Hoje em dia usamos em pesquisas mais ratos e camundongos devido a alta compatibilidade do DNA deles com o humano PRINCIPIOS ÉTICOS PARA ESTUDOS EM ANIMAIS Principio dos 3 R’s Replace (substituição): - Sempre que possível substituir o uso de modelo animal por outra estratégia - Uso de pesquisa bibliográfica visando a compilação de resultados pré-existentes - Uso de modelos matemáticos e computacionais - Uso de técnicas físico-químicas - Uso de técnicas in vitro - Acompanhamento de humanos pos-comercialização de drogas e compilação de dados epidemiologicos Reduce (redução): - Uso o menor número possível de animais - Tratamentos estatísticos: numero amostral a partir de pesquisas prévias - Escolha de espécie ou linhagem adequadas: variabilidade genética, características intrínsecas - Realização de estudos pilotos: verificar a viabilidade M EL IS SA B A ST O S - @ m el is sa cb as to s ESTUDOS IN VIVO ESTUDOS EM ANIMAIS PRINCIPIOS ÉTICOS PARA ESTUDOS EM ANIMAIS Principio dos 3 R’s Refine (refinamento): - Reduzir o sofrimento ao qual os animais serão submetidos - Treinamento da equipe: biologia e comportamento animal, manejo adequado - Procedimento experimental: técnicas anestésicas e adequação de fármacos - Enriquecimento ambiental: melhorias no bem-estar e funções do animal - Ex: dar medicação para dor, separar machos e femeas... TIPOS DE ANIMAIS E CARACTERÍSTICAS DE MANEJO - Camundongos (50%) e ratos (25%) são os animais mais utilziados atualmente Ratos: - Linhagem mais utilizada: wistar (rattus novergicus) - Albinos, orelhas alongadas, tamanho 35 cm - Gestação: 20 a 22 dias - Tempo de vida máximo: 14-20 meses Camundongo: - Linhagem mais utilizada: swiss (mus muscullus) - Albinos, tamanho médio: 13 cm - Gestação: 19 a 20 dias - Tempo de vida máximo: 10-12 meses Quanto a status sanitário: - Gnobioticos (podem ser axenicos – germ free ou de biota definida) - Convencionacis Quanto a genetica - Heterogenicos - Isogenicos (animais parentes entre si) - Mutantes espontâneos (mutação importante para estudo) - Geneticamente modificados (knock-in tem gene modificado ou substituído x knock-out tem gene deletado) Biotério - Estrutura - Gaiolas de prolipropileno ou policarbonato (convencionais ou IVC – controles individuais e com filtro) - Trocas 2-3 vezes por semana: ração, água e maravalha (raspa de madeira) - Ficam dentro de estufas para controle de temperatura de umidade, filtragem de ar e ciclo claro/escuro Manejo do animal - Há diversas técnicas de imobilização Vias de administração de drogas - Via oral, via subcutânea, via intramuscular, via endovenosa, via intraperitoneal Coleta sanguinea - Possibilita analise de parâmetros hematológicos semelhante ao humano - Eritrograma, leucograma, plaquetograma / Dosagens bioquímicas: glicemia, TGO, TGP, Lipidograma / Dosagem de citocinas M EL IS SA B A ST O S - @ m el is sa cb as to s ESTUDOS IN VIVO ESTUDOS EM ANIMAIS Meios / Vias de coleta sanguínea: - Plexo Retroorbital: animal sedado e anestesiado topicamento→ uso de capilar 45º no ângulo globo ocular, quantidade media de sangue (só pode fazer essa coleta no dia de sacrifício do animal) – é a coleta com mais sangue - Mandibular (veia facial) - Veia caudal EUTANÁSIA Métodos recomendados: Quimicos inalantes: - Camara de CO2 - Sobredosagem de isoflurano Quimicos injetáveis: - Sobredosagem de barbitúrico - Sobredosagem anestésica - Cloreto de potássio + anestésico Físicos: - Deslocamento cervical - Decapitação por guilhotina REGULAMENTAÇÃO PARA PESQUISA EM ANIMAL - Comitê de ética – CEUA – Comissão de Ética na utilização de animais - Esse comitê é próprio pra cada faculdade onde será realizado o estudo Documentos necessário para submissão ao comitê de ética animal: - Uma versão impressa completa do projeto - Uma versão impressa completa do protocolo de subsmissão (contendo as assinaturas solicitadas) - Dois CDS contendo uma copia do projeto de pesquisa, uma copia do protocolo e uma copia do termo de responsabilidade de submissão preenchido - Termo de responsabilidade do responsável pelo projeto - Licenças para coleta - Transporte - Manipulação de animais - Registros - Termo de consentimento livre e esclarecido do proprietarario ou responsável pelo animal - Caso o projeto fosse pendente e esteja sendo reencaminhado: anexar o numero do projeto no CEUA MELISSA BASTOS - @melissacbastos ESTUDOS IN VIVO CULTIVO CELULAR - Manutenção de células vivas (in vitro) - Crescimento em recipientes estéreis - Estudos funcionais, bioquímicos e moleculares, alvos farmacológicos e produtos biológicos - Medicina regenerativa→ Células-tronco - Engenharia de tecidos → Criação de tecidos artificiais Vantagens: - Controle do ambiente - Homogeneidade da amostra - Economia - Principal modelo alternativo para a substituição dos animais Desvantagens: - Deve haver um ambiente altamente controlado para evitar contaminação Tipos de células cultivadas: - Amostra de tecido→ Dissociação→ Adesão → 1º Monocamada Cultura celular primarias: - Obtenção direta do tecido - Manutenção das características de origem - Tempo de vida curto: apoptose Cultura secundaria: - Obteñção de culturas primarias - Podem ocorrer modificações em relação a célula de origem Meios de cultura: - Fornecem as substancias essenciais para o crescimento - Controlam o crescimento in vitro - Complementares as substancias biossintetizadas pelas células - Suprir necessidades especificas das células - Devem apresentar: sais minerais, hidratos de carbono, aminoácidos, vitaminas, proteínas, peptídeos... Ensaios: Ensaios de citotoxicidade: Objetivo: identificar se o material ou dispositivo produz efeitos letais ou subletais Aplicado a todos os biomateriais: - Caracterização de biocompatibilidade - Criterio de exclusão - Segurança referente a resposta in vivo Vantagens: - Curto tempo de ensaio - Pequeno numero de variáveis experimentais Produção de imunológicos: Imunoensaios, anticorpos, vacinas... Obtençao de isolamento viral Terapia celular: células-tronco: Medicina regenerativa e engenharia de tecidos, Restabelecer a função ou a estrutura de um tecido M EL IS SA B A ST O S - @ m el is sa cb as to s ESTUDOS IN VIVO BIOCOMPATIBILIDADE DOS MATERIAIS DENTARIOS - Avaliar o comportamento biológico dos materiais odontológicos Teste de implantação em tecido subcutâneo de ratos: - Tricotomia da região dorsal: eliminação de pelos - Desinfecção da área: álcool - Incisão central em tecido subcutâneo: 8mm – divulsão tecidual para se obter 2 ou 4 lojas cirúrgicas - Obs: cuidado para não haver sangramento - Uso de tubos - Cortes histológicos: avaliação da resposta tecidual presente na interface entre o material experimental e tecidoconjuntivo do animal MELISSA BASTOS - @melissacbastos
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