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Universidad Nacional de Ingeniería Facultad de Ingeniería Química y Textil Departamento Académico de Ingeniería Química Laboratorio de Bioquímica y Microbiología (PI721 A) Informe N°4 Enzimas Integrantes: Alumno 1: Effio Castillo, Melissa Alicia Alumno 2: Oliva Peña, Héctor Piero Alumno 3: Sandoval Mariños, Miguel Antenor Profesores: - Dra. Jessica Ivana Nieto Juárez - Ing. Janet Rojas Orosco (responsable de la práctica) Fecha de realización de la práctica: 12/05/2021 Fecha de presentación del informe:19/05/2021 2021-1 2 ÍNDICE Introducción .......................................................................................................................................... 3 Las enzimas ......................................................................................................................................... 3 Especificidad de acción enzimática .................................................................................................... 3 Acción catalítica de las enzimas ......................................................................................................... 4 Mecanismo de catálisis ................................................................................................................... 4 Enzimas oxidorreductasas ................................................................................................................... 5 Catalasa .......................................................................................................................................... 6 Enzimas Hidrolasas ............................................................................................................................. 6 α-amilasa ........................................................................................................................................ 7 Inhibición enzimática .......................................................................................................................... 7 Efecto temperatura .......................................................................................................................... 7 Efecto de pH .................................................................................................................................... 7 Objetivo .................................................................................................................................................. 8 Objetivo general .................................................................................................................................. 8 Objetivos específicos .......................................................................................................................... 8 Diagrama de flujo ................................................................................................................................. 9 Parte experimental .............................................................................................................................. 10 Materiales ................................................................................................................................... 10 Reactivos ........................................................................................................................................... 13 Seguridad en el laboratorio ............................................................................................................... 15 Resultados esperados .......................................................................................................................... 17 A. Reconocimiento de la enzima catalasa en tejidos animales y vegetales ................................... 17 B. Efecto de la temperatura sobre la enzima catalasa .................................................................... 18 C. Actividad de la enzima α-amilasa y efecto del pH .................................................................... 19 Discusión de Resultados ..................................................................................................................... 19 A. Reconocimiento de la enzima catalasa en tejidos animales y vegetales ................................... 19 B. Efecto de la temperatura sobre la enzima catalasa .................................................................... 20 C. Actividad de la enzima α-amilasa y efecto del pH .................................................................... 23 Cuestionario......................................................................................................................................... 25 Pregunta 1. ........................................................................................................................................ 25 Pregunta 2. ........................................................................................................................................ 29 Pregunta 3. ........................................................................................................................................ 30 Conclusiones ........................................................................................................................................ 31 Anexo .................................................................................................................................................... 31 Referencias bibliográficas .................................................................................................................. 33 3 Introducción Las enzimas Las enzimas son estructuras celulares, generalmente proteicas, catalizadoras específicas que permiten el desarrollo en simultáneo de un gran número de reacciones químicas al interior de la célula. Las enzimas se pueden encontrar de forma intracelular, solubilizadas o en las membranas y también se hallan en forma extracelular como es el caso de las enzimas digestivas. Una enzima tiene entre 100 y 2500 aminoácidos, en su composición pueden integrar iones inorgánicos o moléculas orgánicas para ayudar a ampliar su espectro de acción. Las altas velocidades que alcanzan las reacciones químicas producidas por las enzimas quedan determinadas por el pH y temperatura en la célula. Las enzimas no son capaces de llevar a cabo reacciones imposibles, solo facilitan la reacción incrementando su velocidad. Se les puede clasificar según el tipo de reacción catalizada en 6 grupos generales, como se observa en la siguiente tabla: Tabla 1. Clases de enzimas según el tipo de reacción catalizada. (Fundamentos de la bioquímica. Bañó et al., 2007) Especificidad de acción enzimática Las enzimas son catalizadores altamente efectivos (acelera reacciones muy lentas) pero debe tomarse en cuenta que una determinada enzima acelera una reacción determinada pues, para cualquier otra reacción, se convierte en un mal catalizador o no la cataliza en lo absoluto. A esto le llamamos especificidad de acción catalítica y gracias a ella, las reacciones que permiten la vida ocurren de forma ordenada y equilibrada. 4 La especificidad por sustrato de las enzimas radica en una región ubicada en su superficie, llamada centro activo o centro de fijación del sustrato. Alrededor de este centro activo se encuentran acomodados grupos químicos que determinan la fijación (o no) de un sustrato específico. Algunas enzimas tienen una especificidad absoluta para cierto sustrato, pero no siempre. Generalmente las enzimas tienen una especificidad ligeramente amplia que les permite aceptar análogos estructurales de un sustrato específico, aunque la velocidad de la catálisis también se ve modificada. Acción catalítica de las enzimas El poder catalítico de las enzimas permite incrementar notablemente la velocidad de una reacción en específico,además de darles la facultad de elegir sustratos alternativos. La eficacia enzimática se debe a la complementariedad de las enzimas con el estado de transición (estructura inestable y transitoria para llegar de sustrato a producto) de la reacción que catalizan. Investigaciones han permitido conocer que las enzimas tienen un “sitio activo” que es una superficie donde ocurre la catálisis. En este espacio, encaja la molécula de sustrato y es retenida fuertemente. Cerca al sitio activo se encuentran grupos funcionales que contribuyen a la catálisis. Algunas enzimas tienen más de 1 sitio activo por molécula. Mecanismo de catálisis Las enzimas catalizan diversas reacciones en donde transforman moléculas del sustrato en productos. El sustrato requiere una cantidad de energía para ser activado y que la reacción se lleve a cabo, a esta energía se le llama energía de activación Ea. Usualmente esta energía se aporta como calor; pero, por ejemplo, en condiciones ambientales de 37 °C (cuerpo humano) incrementar la temperatura para alcanzar la activación perjudica y daña células. Para evitar ello, las enzimas reducen la cantidad necesaria de energía de activación, estabilizando el estado de transición de la reacción, permitiendo que las reacciones químicas se den a temperatura corporal regular, pero a la velocidad que requiere el desarrollo de las funciones vitales. Principalmente las enzimas realizan catálisis covalente que involucra ataques nucleofílicos para la formación de un enlace covalente transitorio. Las enzimas se acercan a los sustratos, formando un complejo enzima-sustrato enlazados por el centro 5 de fijación, y los fuerzan a tomar una orientación correcta reactiva. Después de la formación del complejo, este enlace por el centro activo modifica las propiedades químicas originales del sustrato, debilitando los enlaces iniciales y permitiendo nuevos enlaces que originen los productos de reacción. Terminada la catálisis, la enzima queda libre para continuar catalizando otras reacciones y no se ha visto modificada. La reacción general de catálisis enzimática es la siguiente: Enzima+Sustrato→Complejo Enzima-Sustrato→Producto+Enzima Figura 1. Función de las enzimas. (Bioquímica de los procesos metabólicos. Cuatmazi, O., Melo, V., 2006) Enzimas oxidorreductasas Estas enzimas catalizan reacción de oxidorreducción o transferencia de átomos de H o electrones de un sustrato a otro. Dentro de esta clasificación destacan las deshidrogenasas y las oxidasas. 6 Figura 2. Oxidorreductasas. (Fundamentos de bioquímica estructural. Garrido, A., Teijón, J., 2006) Dentro de esta clasificación encontramos a la catalasa, que aumenta la velocidad de la descomposición del peróxido de hidrógeno aproximadamente 1000 millones de veces. La proteína hemoglobina, que contiene hierro, también incrementa eficazmente la velocidad de descomposición del peróxido de hidrógeno, aproximadamente en 1 millón de veces. Catalasa La catalasa es una enzima intracelular, actúa sobre el peróxido de hidrógeno H2O2 el cual es un compuesto muy tóxico que resulta del metabolismo celular en muchas especies, por lo que es necesario convertirlo rápidamente en compuestos menos peligrosos. Esta enzima convierte el peróxido de hidrógeno en agua y oxígeno molecular. Esta enzima se inactiva por acción de la temperatura, por desnaturalización. El reconocimiento de la actividad enzimática de la catalasa se evalúa mediante el desprendimiento de oxígeno en el tubo tras reacción catalítica. Enzimas Hidrolasas Estas enzimas se consideran una clase especial de transferasas donde el sustrato se rompe y sus fragmentos se transfieren a los componentes del agua, iones OH y H. Las reacciones catalizadas por hidrolasas involucran la ruptura hidrolítica de enlaces C-O, C-N, O-P y C-S. Figura 3. Hidrolasas. (Fundamentos de bioquímica estructural. Garrido, A., Teijón, J., 2006) 7 α-amilasa Las amilasas son enzimas que catalizan la hidrólisis de los enlaces 1-4 en la glucosa que contienen polisacáridos como amilopectina, amilosa, amilopectina, glucógeno y otros. La α-amilasa se encuentra en nuestro organismo en la saliva, se encuentra también en la malta y diversos hongos, levaduras, tejidos animales y vegetales. La α-amilasa es un tipo de enzima hidrolasa que cataliza la hidrólisis de los enlaces C1-C4 de la cadena lineal y la cadena ramificada del almidón. Tras esto, la estructura helicoidal del almidón originada por la amilosa desaparece. El reconocimiento se evalúa comprobando la presencia de glucosa mediante reactivo de Fehling. Inhibición enzimática La actividad catalítica de las enzimas puede verse afectada por la concentración del sustrato, concentración de la enzima, pH del medio o por la temperatura. Efecto temperatura A bajas temperaturas muchas enzimas no logran su funcionamiento, para que este se desarrolle correctamente debe trabajarse a su punto óptimo de temperatura donde la actividad catalítica es máxima. Al incrementar la temperatura, la velocidad de las reacciones catalíticas aumenta también, pero solo hasta cierto valor. Si se sobrepasa el rango crítico o “temperatura de transición” la actividad de la enzima decrece rápidamente pues el aumento de la velocidad de reacción es contrarrestado por la desnaturalización térmica de la enzima, decreciendo su actividad catalítica hasta anularse. El aumento de temperatura, si bien aumenta la energía cinética de las moléculas. También desorganiza su estructura y destruye las interacciones débiles, desnaturalizando la enzima. Efecto de pH Una enzima tiene típicamente un pH óptimo en el cual la conformación es la ideal para la actividad catalítica y se realiza la reacción de un modo mucho más efectivo; pero, al contener aminoácidos, son sensibles a cambios de pH debido a que 8 algunos aminoácidos reaccionan con radicales libres alterando así la conformación funcional de la enzima, un pH extremo puede desnaturalizar a la enzima. La conformación total de la molécula de enzima depende en ocasiones de la existencia de cargas electrostáticas, por ejemplo, una atracción entre un grupo amonio y un grupo carboxilato no existirá a concentración de H+ muy bajas o altas porque eso significa que uno u otro grupo perdería su carga. Se debe considerar también que la creación de enlaces de hidrógeno puede no ocurrir a concentración de H+ extremas. La carga que tengan los grupos ionizables de las cadenas laterales de los aminoácidos podrá ser positivas, negativas o neutras dependiendo del pH del medio. Un cambio en condiciones de pH óptimo afecta considerablemente la actividad de la enzima pues, si esta se desnaturaliza, cambia sus propiedades fisicoquímicas: incrementa su viscosidad y disminuye el coeficiente de difusión, disminuye su solubilidad y la hace perder sus propiedades biológicas. Objetivo Objetivo general Evidenciar la naturaleza catalítica y actividad de las enzimas tanto animales como vegetales y estudiar los efectos que generan sobre estas la variación de distintos parámetros. Objetivos específicos ● Estudiar la acción catalítica de la enzima catalasa en tejido de animales y vegetales. ● Determinar la relación entre el cambio de temperatura y la velocidad de reacción de descomposición del peróxido de hidrógeno producida por el enzima catalasa. ● Estudiar la reacción catalítica de descomposición del almidón por la enzima α- amilasa, así como el efecto que causa la variación del pH en esta reacción. 9 Diagrama de flujo 10 Parte experimental Materiales 10 tubos de ensayo con tapa 2 vasos de precipitado 50, 150 y 600 ml 11 Pipeta graduada de 5, 10ml PropipetaGradilla para tubos de ensayo 2 Fiolas de 100 mL Pinza para tubos Gotero o pipeta Pasteur 12 Bagueta Jeringa Termómetro Cronómetro Hígado de pollo Carne molida de res 13 Zanahorias Tomates Papa Espinaca Reactivos peróxido de hidrogeno 30% (controlado) Solución de glucosa 0.5% 14 Solución de almidón 0.5% Solución de saliva 2 % HCl 0.1N (controlado) NaOH 0.1N (controlado) Reactivo de Fehling A y B Reactivo de Lugol 15 Seguridad en el laboratorio REACTIVO RIEGOS PREVENCIÓN PRIMEROS AUXILIOS Peróxido de hidrógeno 30 % En caso de ingestión: provoca náuseas, vómitos, diarrea, dolor abdominal. En caso de contacto con los ojos. Provoca lesiones oculares graves, peligro de ceguera. Al inhalar: tos, dificultades respiratorias. Poco irritante al contacto con la piel, pero no es relevante para clasificar Utilizar el equipo de protección individual obligatorio. Evitar el contacto con la piel, los ojos y la ropa. No respirar los vapores. Mantener el producto alejado de los desagües y de las aguas superficiales y subterráneas. Consérvese únicamente en el recipiente de origen. Proteger de la luz del sol. Durante mucho tiempo a la luz puede causar descomposición En caso de contacto con la piel: Lavar con abundante agua. En caso de contacto con los ojos: Enjuagar con agua cuidadosamente durante varios minutos. Quitar las lentes de contacto cuando estén presentes y pueda hacerse con facilidad. Proseguir con el lavado. En caso de ingestión: Enjuáguese la boca con agua (solamente si la persona está consciente). HCl 0.1 N Produce humos tóxicos más pesados que el aire. Al ser calentada la solución libera vapores tóxicos de cloruro de hidrógeno. Provoca quemaduras graves en la piel y lesiones oculares graves Puede irritar las vías respiratorias. Usar siempre protección personal así sea corta la exposición o la actividad que realice con el producto. Mantener estrictas normas de higiene, no fumar, ni comer en el sitio de trabajo. Usar las menores cantidades posibles Lavar la boca con agua. Si está consciente, suministrar abundante agua. No inducir el vómito. Si esto se produce de manera natural, inclinar la persona hacia el frente para evitar la broncoaspiración. Después de proporcionar los primeros auxilios, 16 contactar con un médico especialista en toxicología. NaOH 0.1 N Causa quemaduras a piel y ojos. Puedes ocasionar irritación severa de tracto respiratorio digestivo con posibles quemaduras En casos crónicos puede producir cáncer en el esófago y dermatitis en la piel Uso de lentes de seguridad, bata y guantes de neopreno, nitrilo o vinilo. Manejarse en una campana. En el caso de trasvasar pequeñas cantidades de disoluciones de sosa con pipeta, utilizar una propipeta, nunca aspirar con la boca. Quitar toda la ropa contaminada. Enjuagar la piel con agua durante varios minutos. Quitar las lentes de contacto cuando estén presentes y pueda hacerse con facilidad. Proseguir con el lavado. Reactivo de Fehling Provoca lesiones oculares graves. Muy tóxico para los organismos acuáticos, con efectos nocivos duraderos. En caso de ingestión causa náuseas En caso de contacto con los ojos provoca lesiones oculares graves, peligro de ceguera En caso de inhalación causa irritación ligera a moderada En caso de contacto con la piel causa eritema localizado Úsense guantes adecuados, guante de protección química probado. Protección respiratoria es necesaria para: Formación de aerosol y niebla. Utilizar gafas de protección con protección a los costados. El material es estable bajo condiciones ambientales normales y en condiciones previsibles de temperatura y presión durante su almacenamiento y manipulación. En caso de contacto con los ojos: Enjuagar con agua cuidadosamente durante varios minutos. Quitar proseguir con el lavado. En caso de inhalación: Proporcionar aire fresco. En caso de contacto con la piel: aclarar la piel con agua/ducharse. En caso de ingestión Enjuagarse la boca. Llamar a un médico si la persona se encuentra mal 17 Reactivo de Lugol Puede provocar daños en los órganos (tiroides) tras exposiciones prolongadas o repetidas (en caso de ingestión) Lavar las manos antes de las pausas y al fin del trabajo. Manténgase lejos de alimentos, bebidas. Mantener el recipiente herméticamente cerrado. Temperatura recomendada de almacenamiento: 15 – 25 °C. Úsense guantes adecuados. Adecuado es un guante de protección química y también gafas protectoras. En caso de inhalación: Proporcionar aire fresco En caso de contacto con la piel: aclarar la piel con agua/ducharse. Si aparece malestar o en caso de duda consultar a un médico. En caso de contacto con los ojos: aclarar cuidadosamente con agua durante varios minutos. consultar a un médico. En caso de ingestión: enjuagarse la boca. Resultados esperados A. Reconocimiento de la enzima catalasa en tejidos animales y vegetales Tabla 2. Observaciones, tiempo y altura de burbujeo alcanzada por cada muestra. Muestra Observaciones Tiempo(s) Altura (cm) Papa Burbujeo lento 8 1.5 Piña Burbujeo muy lento 14 1 Zanahoria Burbujeo moderado 42 4.1 Melocotón Burbujeo muy lento 30 2 Hígado Burbujeo muy rápido 4 11.7 Apio Burbujeo muy lento 10.6 2.3 18 Cebolla Burbujeo muy lento 19 1.2 Plátano Burbujeo Muy lento 5 1 Tabla 3. Velocidad de burbujeo Muestra Velocidad (mm/s) Papa 1.875 Piña 0.714 Zanahoria 0.976 Melocotón 0.666 Hígado 29.25 Apio 2.169 Cebolla 0.631 Plátano 1.937 B. Efecto de la temperatura sobre la enzima catalasa Tabla 4. Datos experimentales de la acción de la catalasa en la reacción de oxidación de peróxido de hidrógeno Temperatura °C Distancia recorrida cm Tiempo de reacción s Rapidez de reacción cm/s 4 12 6.2 1.935 23 12 6.1 1.967 34 12 1.81 6.63 39 12 3.5 3.43 48 12 5.51 2.178 58 12 7.5 1.6 19 Graficando los valores se obtiene, C. Actividad de la enzima α-amilasa y efecto del pH Tabla 5. Resultados prueba de Fehling N° tubo Muestra pH Observación 3 Almidón + α-amilasa 7 Ppdo rojo 5 Almidón + α-amilasa + HCl 2 Solución verde azulado 7 Almidón + α-amilasa + NaOH 11 Ppdo rojo Discusión de Resultados A. Reconocimiento de la enzima catalasa en tejidos animales y vegetales ¿Qué tejido presenta mayor o menor desprendimiento de oxígeno? ¿Cuáles de los tejidos presentan mayor o menor actividad enzimática? La acción de la catalasa sobre el peróxido de hidrógeno es añadir un electro en presencia de hidrógeno al agua y el oxígeno diatómico. El oxígeno se reduce de nuevo a superóxido y después a peróxido de hidrógeno y otra vez comience la reacción. Una molécula de catalasa puede convertir millones de moléculas de peróxido de hidrógeno en oxígeno y 0 1 2 3 4 5 6 7 0 10 20 30 40 50 60 V el o ci d ad d e re ac ci ó n m /s Temperatura °C Temperatura Vs velocidad de reacción 20 agua en cuestión de segundos y es la primera línea de defensa del cuerpo contra la formación de radicales libres de hidroxilo. (Altman, 1995) La actividad enzimática se expresa habitualmente en micro moles (µmol) de sustrato convertido en producto por minuto, Una unidad estándar de actividad enzimática (U) es aquella actividad que cataliza la transformación de 1 µmol min- de sustrato. (Devlin, 2004) Tabla 6.Actividad enzimática (decreciente) Muestra Velocidad (mm/s) Hígado 29.25 Apio 2.169 Plátano 1.937 Papa 1.875 Zanahoria 0.976 Piña 0.714 Melocotón 0.666 Cebolla 0.631 B. Efecto de la temperatura sobre la enzima catalasa ¿Cómo afecta la actividad de la enzima? ¿A qué temperatura es la máxima y mínima actividad? ¿Por qué la actividad disminuye o es negativa a altas temperaturas? En las reacciones enzimáticas el sustrato se va a unir al sitio activo y se puede mantener ahí por medio de interacciones débiles como enlaces iónicos y puentes de hidrógeno. Las cadenas de los aminoácidos presentes en el sitio activo catalizan la conversión de sustrato en producto y el producto sale del sitio activo. 21 Figura 4. Estructura de la enzima y complejo enzima sustrato. (Neil A. Campbell, 2005) En la figura izquierda el sitio activo de esta enzima forma un surco en su superficie. Su sustrato es glucosa(rojo) y en la derecha el sustrato entra al sitio activo e induce el cambio en la forma de la proteína, se forman interacciones débiles que provocan que el sitio activo abrace al sustrato y lo mantenga en su lugar. (Neil A. Campbell, 2005) Cada enzima opera mejor en algunas condiciones que en otras. Hasta cierto punto la velocidad de reacción enzimática aumenta con el aumento de la temperatura debido a que los sustratos (el sustrato es el reactivo sobre el cual actúa la enzima) colisionan con los sitios activos con mayor frecuencia cuando las moléculas se mueven con una mayor rapidez. Pero por encima de cierta temperatura la velocidad de reacción va a caer de manera abrupta. Se van a romper los enlaces mencionados anteriormente (iónicos y puentes de hidrógeno que mantiene) debido a la agitación térmica de la molécula desestabilizando la estructura activa desnaturalizando la molécula proteica. Cuando la enzima está sin desnaturalizar la temperatura óptima va a permitir un mayor número de colisiones y la conversión más rápida de reactivos en productos. Todo aumento más allá de la temperatura óptima va a reducir significativamente la velocidad de reacción, esta disminución de la velocidad es debido a la desnaturalización de la enzima que implica la ruptura de enlaces hidrógenos y otros enlaces no covalentes, esto modifica el sitio activo, modifica su forma y se da la pérdida de su actividad catalítica. 22 La actividad enzimática aumenta con el aumento de la temperatura hasta que la enzima comienza a desnaturalizarse por el calor. A partir de acá la velocidad de la reacción cae. (Gerard J. Tortora, 2007) Figura 5. Desnaturalización de las proteínas (Arias) Primero con el aumento de la temperatura, aumenta la actividad enzimática, si la temperatura se aumenta por encima de su temperatura óptimo las colisiones se tornan más violentas y se inicia el rompimiento de enlaces, más allá de esta temperatura la actividad enzimática comienza a disminuir hasta cerca del punto donde la proteína se desnaturaliza y su actividad llega a 0. (Jaime Fornaguera, 2004) 23 La temperatura óptima experimental según el gráfico se alcanza a los 32°C y la temperatura de menor actividad se da a la temperatura de desnaturalización de la catalasa. C. Actividad de la enzima α-amilasa y efecto del pH En la discusión de resultados, explicar: ¿En qué tubo se demuestra la actividad de la enzima α-amilasa y por qué?, ¿En qué tubo se ha inactivado la enzima y por qué no ha actuado? La enzima -amilasa es hidrolasa, la cual lleva a cabo la hidrólisis de los enlaces internos α-1,4-glicosídicos del almidón, para posteriormente obtener productos como glucosa o maltosa (Steyn & Pretorius, 1991). Figura 6. Hidrólisis del almidón con la amilasa. (Cremosi, P., 2002) Para identificar la presencia de glucosa/almidón en las muestras se usan 2 pruebas cualitativas: 0 1 2 3 4 5 6 7 0 10 20 30 40 50 60 V el o ci d ad d e re ac ci ó n m /s Temperatura °C Temperatura Vs velocidad de reacción 24 • Test con Lugol para identificar polisacáridos (almidón). • Test con reactivo de Fehling para identificar azúcares reductores (glucosa) procedentes de la acción de la amilasa. ¿En qué tubos se demuestra la actividad de la enzima α-amilasa y por qué? Tras el baño maría, el tubo 3 que contenía la solución de almidón y saliva al 2%, dio positivo a la prueba de Fehling con la aparición de un precipitado color rojo ladrillo que confirma la presencia de glucosa. La enzima α-amilasa presente en la saliva hidrolizó al polisacárido almidón tras alcanzar la temperatura fisiológica de 37°C, degradándolo en moléculas de glucosa detectables por la prueba de Fehling. Por este motivo, el tubo 4 que tiene la misma composición que el tubo 3, dio negativo a la prueba de Lugol pues el almidón fue degradado a glucosa, desapareciendo la estructura espiralada del polisacárido, no quedando huecos para que entre el yodo. Tras el baño maría, el tubo 7 que contenía la solución de almidón, NaOH y saliva al 2%, dio positivo a la prueba de Fehling con la aparición de un precipitado color rojo ladrillo que confirma la presencia de glucosa. El hidróxido de sodio NaOH llevó a la solución a un pH de 11 que no impidió la degradación del almidón en glucosa detectable por Fehling. Por este motivo, el tubo 8, que tiene la misma composición que el tubo 7, dio negativo a la prueba de Lugol pues ya no se encuentra almidón en el tubo al haber sido degradado en glucosa por la amilasa salival. ¿En qué tubos se ha inactivado la enzima y por qué? Tras el baño maría, el tubo 5 que contenía la solución de almidón con HCl y saliva al 2%, dio negativo a la prueba de Fehling exhibiendo un color azul-verdoso indicando la ausencia de glucosa. Lo anterior se debe a que la amilasa salival no degradó al almidón, por lo que no existen moléculas libres de glucosa en la solución que el reactivo de Fehling pudiera detectar. El HCl añadido llevó a la solución a tener un pH de 2, este pH desnaturalizó a la enzima α-amilasa salival inhibiendo su actividad, pues su rango óptimo para que la α- amilasa realice su actividad enzimática se encuentra entre 5-8. 25 Tras el baño maría, el tubo 6 que contenía la solución de almidón con HCl y saliva al 2%, dio positivo a la prueba de Lugol lo que verifica la presencia del polisacárido almidón. Esto debido a que el ácido clorhídrico perjudicó la actividad enzimática de la enzima α- amilasa salival, impidiendo que se hidrolice el almidón y lo degrade en glucosa. El almidón aún presente en el tubo 6 reacciona químicamente con yodo del reactivo de Lugol para producir un color azul oscuro cuando las moléculas de yodo se insertan en los hoyos de la molécula espiralada del almidón (amilosa). Cuestionario Pregunta 1. En la superficie de algunas frutas y vegetales cuando se cortan, se forman una coloración café oscuro denominado pardeamiento enzimático, ¿qué enzima produce este efecto? Fundamente su respuesta y esquematice las reacciones químicas involucradas. El pardeamiento enzimático es una alteración química, aunque enzimática en sus primeras etapas, que tiene como sustratos a los compuestos fenólicos que transforman en estructuras poliméricas poco aclaradas, por lo general con coloraciones pardas. Las enzimas implicadas en este pardeamiento se conocen con el nombre de polifenol oxidasas, también denominadas polifenolasas o simplemente fenolasas. Generalmente se admite que todos estos términos incluyen las enzimas que tienen la capacidad de oxidar los compuestos fenólicos a orto-quinonas. Su nombre sistemático corresponde al de orto-difenol oxígeno oxidorreductasa. Se trata de metaloenzimas que contienen un 0,2 % de cobre como grupo prostético. El sistema presenta una doble actividad capaz de catalizar dos tipos de reacciones: ● El paso de monofenoles aorto-difenoles mediante una actividad cresolasa, que implica una hidroxilación. ● La conversión de orto-difenoles a orto-quinonas, a través de una actividad catalasa, que implica una oxidación. Mecanismo de reacción 26 El pardeamiento enzimático transcurre a través de un proceso muy complejo, se pueden distinguir cinco etapas, cada una de ellas con mecanismo de actuación propio, de naturaleza enzimática los dos primeros: Hidroxilación inicial mediante actividad cresolasa Tiene como sustrato a los monofenoles(incoloros) que para ser convertidos en difenoles (incoloros) necesitan de una hidroxilación enzimática, con la ayuda de una actividad cresolasa con intervención de la molécula de O2, de la cual un átomo se usa para formar el difenol y el otro es reducido a agua, como se expresa en la reacción: Oxidación a quinonas por actividad catecolasa. No se conoce con claridad el mecanismo de oxidación de los difenoles, aunque puede ser esquematizado como se expresa en la reacción: También interviene el oxígeno del aire como aceptor de hidrógenos y la actividad enzimática conocida con el nombre de catecolasa. la implicación 27 del catión cobre que se encuentra en todos los sistemas polifenolasas resulta esencial. Tanto para la actividad cresolasa como para la catecolasa, la intervención catalítica del cobre comprende un mecanismo que se desarrolla en varias etapas. Aunque la enzima se encuentra en los productos vegetales a concentraciones reducidas, suele ser la cantidad de sustrato el que limite la velocidad de la alteración Los autores han explicado el mecanismo de reacción como una oxidación no enzimática en la que deben intervenir a la vez tanto los monofenoles como las quinonas ya presentes en el alimento, según el esquema de la reacción: Hidroxilación química secundaria de las quinonas La formación de quinonas es un proceso que depende de la presencia de oxígeno y enzima, pero una vez que han sido formadas se producen de modo espontáneo una serie de reacciones de muy diversa naturaleza. Entre otras posibilidades, las quinonas pueden ser hidroxiladas de modo secundario mediante reacción con moléculas de agua para dar lugar a trihidroxibenceno, según: Cambios intramoleculares entre quinonas y fenoles 28 La gran capacidad de reacción de estos compuestos trifenólicos los lleva a cambios intramoleculares entre quinonas y fenoles para dar lugar a la formación de hidroxiquinonas, según: Condensaciones de quinonas para dar lugar a polímeros. Las hidroxiquinonas son la base de condensaciones oxidativas que conducen a la formación de polímeros denominados melaninas, que tras pasar por una gran variedad de colores rosa, rojo, azulado intermedios, alcanzan su coloración final parda o negra. Estas melaninas responden a las estructuras complejas no bien aclaradas, cuyo esquema general corresponde lo siguiente: Las proteínas y los aminoácidos también pueden reaccionar, a través de sus grupos libres aminos (-NH2) y tioles (-SH), con las quinonas para dar compuesto de coloración intensa, según la siguiente reacción: 29 Algunas estructuras específicas de ciertos aminoácidos también pueden experimentar una serie de transformaciones químicas, que llevan a la formación de polímeros con coloraciones que varían desde el rosa al pardo después de pasos sucesivos. (Bello Gutiérrez, 2000) Figura 7. Etapas de la reacción de pardeamiento enzimático (Hernández Rodríguez, 2008) Pregunta 2. ¿Qué métodos o técnicas se podría recomendar para evitar el pardeamiento de las frutas y vegetales? El oscurecimiento de las frutas y vegetales se da cuando hay una disrupción a nivel celular y una exposición de los sustratos del tipo fenólico al oxígeno del aire siendo convertidos por vía enzimática en melaninas que son compuestos oscuros de calor marrón. Las fenolasas son las enzimas que catalizan estas reacciones, dicha reacción se dará en presencia de oxígeno molecular y cobre como un grupo prostético en un medio 30 ligeramente ácido. El oscurecimiento se da en frutas y vegetales donde no se ha desactivado las enzimas previamente Este oscurecimiento enzimático en las frutas y verduras se puede controlar empleando diversas técnicas que desactivan las enzimas o reducen su actividad como las siguientes: ● Tratamiento térmico o escaldado para inactivar las enzimas antes de la conservación por bajas temperaturas. (José A. Barriero M.) ● Aplicación de compuestos azufrados como SO2 gaseoso o soluciones de sulfito, bisulfito para inactivar las enzimas antes de la congelación. (José A. Barriero M.) ● Reducción de la temperatura para retardar el oscurecimiento enzimático, debido a que la actividad enzimática a bajas temperaturas se reduce. (José A. Barriero M.) ● Uso de aditivos como boratos y ácido bórico. Según estudios soluciones de 1.5% de tetraborato de sodio pueden inhibir el oscurecimiento enzimático y especialmente si se utiliza junto a otros compuestos como ácido ascórbico y compuestos de azufre. (José A. Barriero M.) ● Aplicación de ácidos y reducción del pH. Las fenolasas tienen un pH óptimo entre 6 y 7, si se reduce el pH la actividad se reduce, por debajo de pH =3 la actividad es prácticamente nula. Los ácidos más utilizados son el ácido cítrico, málico, fumárico, fosfórico y ascórbico. Las frutas y verduras se sumergen en soluciones ácidas antes de la congelación con este fin. (José A. Barriero M.) ● Remoción de oxígeno como empacado al vacío o atmósferas inertes (N2) o protegiendo al producto del oxígeno del aire durante el proceso con procesos como la inmersión en agua. En las frutas congeladas, el tratamiento del alimento por inmersión en almíbares reduce la solubilidad del oxígeno en el tejido y retrasa la difusión de este y como consecuencia retrasa el oscurecimiento. (José A. Barriero M.) Pregunta 3. ¿En qué rango de pH trabaja mejor la enzima amilasa? La amilasa salival o ptialina se obtiene de la saliva. Según Lesli Smit (2004), la saliva posee una variedad de amilasas que actúa sobre el almidón y algodón. Las α-amilasas son generalmente estables a pH 5.0-8.0, la actividad óptima de las α- amilasas normalmente ocurre entre pH 4.8 a 6.5 (Maning y Campbell, 1961), pero el valor 31 apropiado dependerá de las diferentes enzimas de α-amilasas con la que se esté trabajando. Existen pocos reportes de α-amilasas con un pH óptimo por debajo de 5.0. La enzima amilasa salival es también conocida como ptialina. En el estómago, el HCl del jugo gástrico le da un carácter ácido con pH cercano a 2. El pH óptimo de la amilasa se encuentra alrededor de 7, por lo que llegado al estómago se inhibe la acción de la encima. (Arroyo A. et al., 2004) Conclusiones ● La enzima catalasa está presente en todas las muestras dadas, papa, piña, zanahoria, melocotones, hígado, apio, cebolla, plátano, va a generar la descomposición del peróxido H2O2 la velocidad de esta reacción de descomposición aumenta hasta llegar a su punto óptimo el cual es a una temperatura de 32°C según los resultados experimentales y una actividad mínima cuando esta enzima se desnaturaliza, en otras pruebas como la realizada por Departamento de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia se encontró una temperatura óptima de 37°C. Esta enzima se encuentra con una mayor actividad en el tejido del hígado, seguido en menor medida de la zanahoria, y menor actividad en los otros vegetales. ● El almidón es descompuesto por las enzimas en la saliva α-AMILASA en sus monómeros más simples encontrándose glucosa en las muestras 2 y 4 luego de la reacción de hidrólisis. Anexo La utilización de enzimas inmovilizadas como aceleradores de reacciones químicas de interés industrial Las enzimas son proteínas, a menudo combinadas con otrasmoléculas tales como azúcares, que están presentes en todos y cada uno de los organismos vivos. Su función básica es la aceleración y en parte, también la regulación de las reacciones químicas necesarias para la vida. También los llamamos biocatalizadores. 32 En una parte importante de la llamada biotecnología blanca o industrial, las enzimas son producidas en grandes cantidades y utilizadas para acelerar reacciones con un interés comercial. Ante la química tradicional, las enzimas aportan las ventajas de ser selectivas para un tipo de reacción, específicas para un sustrato (molécula a convertir) concreto y de trabajar en condiciones mucho más suaves de temperatura y presión o utilizar y / o generar muchos menos productos contaminantes. En cuanto a su producción, bacterias, hongos o células animales son los huéspedes que, modificados genéticamente, nos sintetizan la enzima deseada. Una vez ya ha sido probada la eficiencia de estas "fábricas biológicas de enzimas", estas se emplean en la aceleración de reacciones para producir todo tipo de productos químicos: fármacos, suplementos nutricionales, aditivos alimentarios, fragancias, etc. Las enzimas se pueden utilizar mientras todavía están dentro del organismo que les ha producido, pero el sustrato tiene la tarea añadida de tener que entrar y salir de la célula, lo que no siempre es fácil. Por otro lado, también se pueden utilizar libres en solución acuosa, pero a menudo la enzima es desactivada por las nuevas condiciones en las que se encuentra. Existe una tercera opción. La unión de las enzimas libres a partículas sólidas, las enzimas inmovilizadas, confiere una mayor rigidez y estabilidad a la estructura tridimensional (esencial para ser activa) de la proteína y también permite separarlas fácilmente del resto de contenido. Ambos atributos combinados, hacen que sea posible la reutilización del biocatalizador en varios ciclos de reacción. De este modo, la cantidad de producto obtenido con una cierta cantidad de enzima, el llamado rendimiento del biocatalizador se ve incrementada significativamente y los costes del proceso disminuyen. En el Grupo de Ingeniería de Bioprocesos y Biocatálisis Aplicada, dentro del marco del proyecto europeo Roboxer, nos hemos encargado de la inmovilización y aplicación de enzimas que actúan en reacciones de intercambio de electrones, es decir, de oxidorreductasas. En colaboración con la Universidad de Maastricht, de entre estas oxidorreductasas, se pudieron inmovilizar y aplicar en reacción, dos de destacadas: la Ciclohexanona Monooxigenasa (EC 1.14.13.22) y la Glucosa Deshidrogenasa (EC 1.1.1.47). Ambas, clave para la producción de la trimetil-ε-caprolactona, un precursor del novedoso polímero que lleva el mismo nombre, poli-trimetil-ε-caprolactona. Este polímero se puede utilizar, entre otros, como aditivo en tintas de impresora mejorando la dispersión en la superficie aplicada. En nuestro caso, el hecho de utilizar la enzima inmovilizada ha implicado que se pueda producir 50 veces más de producto con la misma cantidad de enzima dada. 33 Figura 8. Bio-reactor y equipamiento utilizado en las transformaciones biocatalizadas. En la imagen izquierda, vista superior del reactor, se puede ver: el agitador, la sonda de pH, el condensador y las entradas de sustrato, NaOH (control pH) y aire. En la imagen central, vista frontal de todo el equipamiento, se puede ver: el bio-reactor encamisado (parte superior derecha de la imagen), el dosificador de sustrato (inferior de la imagen) y el controlador de pH (aparato central de la imagen). La imagen de la derecha es la vista frontal del bio-reactor con los mismos componentes descritos. (Solé, 2019) Referencias bibliográficas Arroyo, A., Gómez, A., Peña, A., Tapia, R. (2004) Bioquímica. México: Editorial Limusa. Arias, F. A. (s.f.) Química Orgánica. EDITORIAL UNIVERSIDAD ESTATAL A DISTANCIA. Altman, N. (1996). Terapias de oxígeno. México, D.F.: Lasser Press mexicana. Bañó, C., Pamblanco, M., Sendra, R., Peretó, J. (2007) Fundamentos de bioquímica España: Universidad de Valencia. 34 Bello Gutiérrez, J. (2000). Ciencia bromatológica. Madrid: Díaz Santos. Bender, M., Brubacher, L. (1977). Catálisis y acción enzimática. España: Editorial Reverté. Cuamatzi, O., Melo, V. Bioquímica de los procesos metabólicos. México: Reverté ediciones. Devlin, T. (2004). Bioquímica. Barcelona: Reverté. Garrido, A., Teijón, J. (2006). Fundamentos de la bioquímica estructural. Madrid: Editorial Tébar. Garrido, J. (2019). Manual de prácticas de Biología. España: Editorial Universidad de Almería. Gerard J. Tortora, B. R. (2007). Introducción a la microbiología. EDITORIAL MÉDICA panamericana. Hernández Rodríguez, M. (2008). Tratado de nutrición. España: Ediciones Díaz de Santos. Jaime Fornaguera, G. G. (2004). Bioquímica: la Ciencia de la Vida. EDITORIAL UNIVERSIDAD ESTATAL A DISTANCIA. José A. Barriero M., A. J. (s.f.). Operaciones de conservación de alimentos por bajas temperaturas. Caracas: EDITORIAL EQUINOCCIO. Neil A. Campbell, J. B. (2005). Biología. EDITORIAL MÉDICA panamericana. Jhon Alexander Castro Rivera1, L. E. (2006). CATALASA, PEROXIDASA Y POLIFENOLOXIDASA DE PITAHAYA AMARILLA (Acanthocereus pitajaya). Bogotá: Rev.Colomb. Quim. vol.35 no.1. Solé, J. (2019). La utilización de enzimas inmovilizadas como aceleradores de reacciones químicas de interés industrial. Recuperado 18 May 2021, de https://www.uab.cat/web/detalle-noticia/la-utilizacion-de-enzimas-inmovilizadas- como-aceleradores-de-reacciones-quimicas-de-interes-industrial- 1345680342040.html?noticiaid=1345788498856
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