Métodos Parasitológicos

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Métod� Parasitológic�
Método Direto a Fresco
Método indicado principalmente para
trofozoítos de protozoários em
fezes diarréicas recém emitidas (no
máximo 30 minutos após coleta), mas
podem ser encontrados outros tipos
também.
Técnica:
- Identificar a lâmina com um lápis
de cera;
- Colocar uma gota de salina no
centro da metade esquerda da lâmina
e uma gota de lugol na metade
direita da lâmina;
- Com o auxílio de um palito, uma
pequena porção da amostra e misture
com a gota de solução salina;
- Da mesma forma, misture uma
porção de fezes com a solução de
lugol;
- Coloque uma lamínula sobre cada
uma das gotas, tomando o cuidado
para não formar bolhas de ar e
examine no microscópio
Método de Ho�mam
Também conhecido como método de
sedimentação, utilizado para
identificação das diversas
infestações parasitárias (ovos e
larvas de helmintos e cistos de
protozoários) e na triagem das
infecções intestinais. A intensidade
do parasitismo influi no número de
formas parasitárias eliminadas.
Técnica:
- Em um pequeno recipiente colocar
um pouco de água e uma pequena
porção de fezes. Homogeneizar bem
com auxílio de um palito de madeira
para obter uma suspensão;
- Transferir a suspensão de fezes
para um copo cônico contendo água,
tendo o cuidado de passar
previamente por uma peneira para a
obtenção de um filtrado de fezes;
- Deixar em repouso de 2 a 24
horas;
- Com o auxílio de uma cânula, retirar
pequena porção do sedimento
formado e transferir para uma
lâmina. Adicionar uma gota de lugol e
analisar em microscópio óptico
(objetiva de 10 e 40x).
Método de Faust
Método de Faust (centrifugação
com sulfato de zinco) é muito
utilizado na prática clínica nas
suspeitas de helmintoses e
protozooses.
Técnica:
- Colocar cerca de 5g de fezes em
um becker, em seguida por 10 ml de
água destilada e movimentar com
movimentos circulares;
- Filtrar a amostra com gaze
dobrada, o coador e um novo becker,
retende porções sólidas, colocando
na centrífuga por 1 minuto em 2500
rpm.;
- Após este tempo, retirar o tubo da
centrífuga, descartar o
sobrenadante turvo, homogeneizar o
sedimento e repetir o processo (água
destilada + centrifugação 45 a 60
segundos a 650 g) até que o
sobrenadante fique límpido.
- Quando límpido, você irá descartar
o sobrenadante, homogeneizar o
sedimento e adicionar a solução de
sulfato de zinco (33%, densidade de
1,18 g/ml), colocando novamente o
conjunto na centrífuga (45 a 60
segundos a 650 g).
Método de Kato Katz
Permite identificação e a
quantificação por grama de fezes
das infestações por alguns helmintos
(Ascaris lumbricoides, Necator
americanus, Schistosoma mansoni,
Trichuris trichura, Taenia sp), que
calcula a quantidade de ovos
eliminados pelas fezes.
Técnica:
- Preparar um pequena quantidade de
fezes em papel higiênico;
- Comprimir essa porção de fezes
com a tela de metal (do kit); apenas
os ovos dos helmintos e detritos
menos passaram pela malha;
- Retirar as fezes que passaram pela
tela e com o auxílio do coletor, passe
para a um cartão retangular do kit
(que possui um orifício de 6 mm de
diâmetro onde as fezes serão
colocadas). Este será colocado em
uma lâmina comum de microscopia;
- Após preencher completamente o
orifício, retire o cartão com cuidado,
deixando as fezes na lâmina de vidro;
- Cobrir as fezes com celofane
impregnado com verde malaquita
(kit), pressionando a lâmina, depois
de invertida, contra uma folha de
papel absorvente;
- Aguardar 1 a 2 horas, examine no
microscópio todos os campos. O
número de ovos encontrados no
esfregaço fecal deve ser
multiplicado pela constante 24 para
obter o número de ovos por grama de
fezes.
Método de Graham
Também conhecida como método da
fita, muito utilizado na pesquisa de
ovos e larvas de Enterobius
Vermicularis e Taenia Sp.
Técnica:
- Colocar um pedaço de fita adesiva
transparente em uma espátula de
madeira tipo abaixador de língua com
a parte adesiva voltada para fora.
- Pressionar firmemente a espátula
contendo a fita adesiva contra as
pregas anais e perianais.
- Colar a fita adesiva em lâmina
devidamente identificada.
- No momento da execução do
exame, levantar cuidadosamente a
fita da lâmina e pingar uma gota de
toluol ou xileno e pressionar
novamente a fita contra a lâmina. A
preparação ficará clara ou levemente
corada, tornando os ovos bem
visíveis. Analisar o material
imediatamente.