Roteiro de Aula Prática

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Roteiro de Aula Prática 
 
Introdução à Biologia Celular e 
do Desenvolvimento 
 
Disciplina: Introdução à Biologia Celular e do 
Desenvolvimento 
ROTEIRO DE AULA PRÁTICA 1 
Unidade: 3 
Aula (White Label)/Seção (KLS): 3.1 
 
 
 
SOFTWARE 
☐Software / ☒ Acesso on-line 
☐Pago / ☒ Não Pago 
 
Infraestrutura: 
O LABORATÓRIO VIRTUAL DEVE SER ACESSADO POR COMPUTADOR. ELE NÃO DEVE 
SER ACESSADO POR CELULAR OU TABLET. 
O REQUISITO MÍNIMO PARA O SEU COMPUTADOR É UMA MEMÓRIA RAM DE 4 GB. 
SEU PRIMEIRO ACESSO SERÁ UM POUCO MAIS LENTO, POIS ALGUNS PLUGINS SÃO 
BUSCADOS NO SEU NAVEGADOR. A PARTIR DO SEGUNDO ACESSO, A VELOCIDADE DE 
ABERTURA DOS EXPERIMENTOS SERÁ MAIS RÁPIDA. 
 
1. Caso utilize o Windows 10, dê preferência ao navegador Google Chrome; 
2. Caso utilize o Windows 7, dê preferência ao navegador Mozilla Firefox; 
3. Feche outros programas que podem sobrecarregar o seu computador; 
4. Verifique se o seu navegador está atualizado; 
5. Realize teste de velocidade da internet. 
Descrição do software: 
Laboratório Algetec 
 
ATIVIDADE PRÁTICA 1 
Atividade proposta: 
Extração e purificação de DNA e RNA 
Objetivos: 
Analisar as funções e as finalidades de cada reagente e/ou material descritos no protocolo de 
extração e purificação de DNA ou RNA; 
Definir cada etapa descrita no protocolo de extração e purificação de DNA ou RNA. 
Procedimentos para a realização da atividade: 
Materiais necessários: 
Jaleco; 
Luvas; 
Máscara; 
Óculos; 
Centrífuga de Eppendorf; Vórtex; 
 
Incubadora; 
Tubo de coleta com amostra de sangue; 
Tubo Eppendorf; 
Tubo spin; 
Hipoclorito de sódio; 
Ponteira para micropipeta; 
Micropipeta; 
Nanodrop (espectrofotômetro); 
Água Mili-Q; 
Notebook; 
Álcool 96%; 
Kit de extração DNA – Tampão de lise S; 
Kit de extração DNA – Tampão de lavagem SI; 
Kit de extração DNA – Tampão de lavagem SII; 
Kit de extração DNA – Tampão de eluição SI; 
Kit de extração DNA – Proteinase K tipo L; 
Kit de extração DNA – Tampão de proteinase. 
 
 
PROCEDIMENTO 
 
1. Segurança do experimento 
 
Coloque os equipamentos de proteção individual localizados no “Armário de EPIs”. 
 
 
 
 
Visualize a pia clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Pia” 
localizada dentro do painel de visualização no canto superior esquerdo da tela. Se preferir, 
também pode ser utilizado o atalho do teclado “Alt+1”. 
 
 
 
Abra a torneira clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a pia. 
 
 
 
 
Abra o armário de EPI clicando com o botão esquerdo do mouse sobre as portas. 
 
 
 
Selecione os EPIs necessários para a realização do ensaio clicando com o botão esquerdo 
do mouse sobre eles. Nesse experimento, é obrigatório o uso de jaleco, luvas máscaras e 
óculos. 
 
 
 
 
Feche as portas do armário de EPIs clicando com o botão esquerdo do mouse sobre elas. 
 
 
 
2. Etapa da Lise 
Nesta etapa, você deverá pipetar 25 μl da Proteinase K no tubo Eppendorf. Em seguida, 
pipetar 200 μl da amostra de sangue no mesmo tubo, e por último, pipetar 200 μl do tampão 
lise S no tubo. Tampe o Eppendorf e homogeneíze no Vórtex por 20 segundos. Após esse 
tempo, incube o Eppendorf por 15 min. 
 
 
Para isto, siga as etapas ilustradas a seguir: 
 
Visualize a bancada clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome 
“Bancada” ou através do atalho do teclado “Alt+3”. 
 
 
 
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
 
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto 
inferior esquerdo digite o volume e, em seguida, clique em “OK”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo de Proteinase K clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Proteinase K”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”. 
 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
 
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto 
inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo com a amostra de sangue clicando com o botão direito do 
mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Amostra de sangue”. 
 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”. 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
 
 
 
Posicione a pipeta no tampão de lise S clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão de lise S”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”. 
 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
Tampe o tubo Eppendorf clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele. 
 
 
 
 
Homogeneíze o eppendoff no vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o 
mesmo. 
 
 
 
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Pular tempo”. 
 
 
 
 
Retire o tubo do vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo. 
 
 
 
Coloque o tubo na incubadora clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo. 
 
 
 
 
Feche a tampa da incubadora clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ela. 
 
 
 
Ligue a incubadora clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de ligar. 
 
 
 
 
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Pular tempo”. 
 
 
 
Abra a tampa da incubadora clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ela. 
 
 
 
 
Retire o tubo da incubadora cliquando com o botão direito do mouse sobre a mesma. 
 
 
 
3. Etapa da Ligação 
 
Nesta etapa, você deverá pipetar 210 μl de álcool 96% no Eppendorf e homogeneízar de 
novo no Vórtex. Em seguida, pipete 640 μl do Eppendorf para o tubo spin e centrifugue a 
11.000 rpm por 1 minuto. 
 
 
Para isto, siga as etapas ilustradas: 
 
 
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto 
inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”. 
 
 
 
 
Posicione a pipeta no recipiente de álcool 96% pura clicando com o botão direito do mouse 
sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Álcool 96%”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”. 
 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
Tampe o tubo Eppendorf clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele. 
 
 
 
Homogeneíze o eppendoff no vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o 
mesmo. 
 
 
 
 
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”. 
 
 
 
Retire o tubo do vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo. 
 
 
 
 
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto 
inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”.Posicione a pipeta no Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, 
em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, 
em seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”. 
 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse 
sobre ele. 
 
 
 
 
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre 
ele. 
 
 
 
Ajuste a velocidade de rotação clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a seta para 
cima. 
 
 
 
 
Ajuste o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a seta para cima. 
 
 
 
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a 
tampa. 
 
 
 
 
Ligue a centrífuga clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de ligar. 
 
 
 
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”. 
 
 
 
 
 
4. Etapa da Lavagem 
 
Nesta etapa, você irá retirar o Eppendorf da centrífuga, descartar o tubo de coleta e colocar 
o tubo spin em um novo tubo de coleta. Em seguida, pipete 500 μl do tampão de lavagem SI 
no tubo spin e centrifugue novamente. Repita o mesmo processo de troca de tubo de coleta, 
porém a lavagem irá utilizar 600 μl o tampão de lavagem SII, e centrifugue novamente. Por 
fim, repita o mesmo processo da troca do tubo de coleta e centrifugue novamente. 
 
Siga as ilustrações abaixo: 
 
Abra a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a 
tampa. 
 
 
 
 
Retire o conjunto de tubos clicando com o botão direito do mouse sobre a centrífuga. 
 
 
 
Retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de 
coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin”. 
 
 
 
 
Descarte o tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e 
selecionado o box “Descartar”. 
 
 
 
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
 
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto 
inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tampão lavagem SI clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão lavagem SI”. 
 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”. 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
 
Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre 
ele. 
 
 
 
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre 
ele. 
 
 
 
 
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a 
tampa. 
 
 
 
Na sequência, repita os passos de centrífuga descritos acima. Ao finalizar a centrifugação, 
retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de 
coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin” e descarte o tubo de coleta clicando com o 
botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Descartar”. Lembre-se 
estas orientações já estão descritas no roteiro. 
 
 
Em seguida, ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma 
e, em seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tampão lavagem SII clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão lavagem SII”. 
 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”. 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
 Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre 
ele. 
 
 
 
 
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre 
ele. 
 
 
 
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a 
tampa. 
 
 
 
 
Na sequência, repita os passos de centrífuga descritos acima. Ao finalizar a centrifugação, 
retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de 
coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin” e descarte o tubo de coleta clicando com o 
botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Descartar”. Lembre-se 
estas orientações já estão descritas no roteiro. 
 
Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre 
ele. 
 
 
 
 
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre 
ele. 
 
 
 
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a 
tampa. 
 
 
 
 
Na sequência, repita os passos de centrífuga descritos acima. 
 
5. Etapa da Eluição 
 
Nesta etapa, retire o Eppendorf da centrífuga, descarte o tubo de coleta e coloque o tubo spin 
em um novo tubo de coleta. Em seguida, pipete 200 μl do tampão de eluição S no tubo spin, 
espere 1 minuto e centrifugue a amostra. 
 
Observe as orientações e lembre-se que estas etapas já foram ilustradas acima. 
 
• Ao finalizar a centrifugação, retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão 
direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin” e 
descarte o tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta 
e selecionado o box “Descartar”. 
• Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, 
em seguida, selecione “Reajustar volume” para 200 μl (conforme já demonstrado) e 
posicione a pipeta no tampão eluição S clicando com o botão direito do mouse sobre 
a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão eluição S”. 
• Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma 
e, em seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”. 
• Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, 
em seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
• Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”. 
 
• Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse 
sobre ele. 
• Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse 
sobre ele. 
• Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e 
fechar a tampa. Ligue a centrífuga clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o 
botão de ligar. 
• Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”. 
 
6. Realizando a mensuração da amostra 
Nesta etapa, retire o Eppendorf da centrífuga, e retire o tubo spin de dentro do tubo de coleta. 
Em seguida, abra o espectrômetro e limpe-o, depois pipete 10 μl de água mili-q no mesmo e 
feche o espectrômetro. Ligue o notebook, clique na opção “Nucleic acid” e depois na opção 
“blank”. Por último, limpe o novamente o espectrômetro e pipete 10 μl da amostra, feche o 
espectrômetro e selecione a opção “Measure”. 
 
Retire o conjunto de tubos clicando com o botão direito do mouse sobre a centrífuga. 
 
 
 
Retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de 
coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin”. 
 
 
 
 
Visualize o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o 
nome “Espectrofotômetro” ou atravésdo atalho do teclado “Alt+7”. 
 
 
 
Abra o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo. 
 
 
 
 
Limpe o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o mesmo. 
 
 
 
Visualize a bancada clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome 
“Bancada” ou através do atalho do teclado “Alt+3”. 
 
 
 
 
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto 
inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”. 
 
 
 
 
Posicione a pipeta na água ultra pura clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma 
e, em seguida, selecione “Colocar em Água Ultra Pura”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Espectrofotômetro”. 
 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
Feche o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre ele. 
 
 
 
 
Visualize o notebook clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome 
“Notebook” ou através do atalho do teclado “Alt+8”. 
 
 
 
Ligue o notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de ligar. 
 
 
 
 
Selecione “Nucleic Acid” no notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a tela. 
 
 
 
Selecione “Blank” no notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a tela. 
 
 
 
 
Visualize o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o 
nome “Espectrofotômetro” ou através do atalho do teclado “Alt+7”. 
 
 
 
Abra o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre ele. 
 
 
 
 
Limpe o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele. 
 
 
 
 
Visualize a bancada clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome 
“Bancada” ou através do atalho do teclado “Alt+3”. 
 
 
 
 
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Reajustar volume”. 
 
 
 
Posicione a pipeta no tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma 
e, em seguida, selecione “Colocar em Tubo de Coleta”. 
 
 
 
 
Posicione a pipeta no espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre a 
mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Espectrofotômetro”. 
 
 
 
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em 
seguida, selecione “Trocar ponteira”. 
 
 
 
 
Feche o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre ele. 
 
 
 
Visualize o notebook clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome 
“Notebook” ou através do atalho do teclado “Alt+8”. 
 
 
 
 
Selecione “Measure” no notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a tela. 
 
 
 
Checklist: 
Observar e analisar as etapas realizadas nos procedimentos focando na compreensão da técnica 
e reagentes. 
Resultado: Aluno, você deverá entregar: 
Um arquivo contendo as respostas para os questionamentos a seguir: 
1. No que consiste a etapa de eluição da purificação? 
2. Qual a diferença entre os tampões de lavagem SI e SII? 
3. Na etapa de ligação, porque se utiliza o álcool 96%? 
 
 
Referências: 
WATSON, J. D. Biologia molecular do gene. 7. ed. Porto Alegre: Artmed, 2015. 
MENCK, C. F. M. Genética molecular básica: dos genes aos genomas. 1. ed. Rio de Janeiro: 
Guanabara Koogan, 2017. 
GRIFFITHS, A. J. F. Introdução à genética. 12. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2022. 
 
ROTEIRO DE AULA PRÁTICA 2 
Unidade: 4 
Aula (White Label)/Seção (KLS): 4.1 
 
 
 
SOFTWARE 
☐Software / ☒ Acesso on-line 
☐Pago / ☒ Não Pago 
 
Infraestrutura: 
O LABORATÓRIO VIRTUAL DEVE SER ACESSADO POR COMPUTADOR. ELE NÃO DEVE 
SER ACESSADO POR CELULAR OU TABLET. 
O REQUISITO MÍNIMO PARA O SEU COMPUTADOR É UMA MEMÓRIA RAM DE 4 GB. 
SEU PRIMEIRO ACESSO SERÁ UM POUCO MAIS LENTO, POIS ALGUNS PLUGINS SÃO 
BUSCADOS NO SEU NAVEGADOR. A PARTIR DO SEGUNDO ACESSO, A VELOCIDADE DE 
ABERTURA DOS EXPERIMENTOS SERÁ MAIS RÁPIDA. 
 
1. Caso utilize o Windows 10, dê preferência ao navegador Google Chrome; 
2. Caso utilize o Windows 7, dê preferência ao navegador Mozilla Firefox; 
3. Feche outros programas que podem sobrecarregar o seu computador; 
4. Verifique se o seu navegador está atualizado; 
5. Realize teste de velocidade da internet. 
Descrição do software: 
Laboratório Algetec 
 
ATIVIDADE PRÁTICA 2 
Atividade proposta: 
Analisar as lâminas do aparelho reprodutor feminino e masculino, bem como as características 
de cada órgão como pênis, ductos genitais, glândulas acessórias, testículo, epidídimo e ovário. 
Objetivos: 
Observar as estruturas dos aparelhos reprodutores feminino e masculino; 
Analisar as características de cada órgão como pênis, ductos genitais, glândulas acessórias, 
testículo, epidídimo e ovário; 
Identificar os tecidos presentes nestas estruturas. 
Procedimentos para a realização da atividade: 
Materiais necessários: 
Microscópio óptico 
Kit de lâminas; 
Laminário; 
Óleo de imersão; 
Solução de limpeza (50% éter sulfúrico e 50% clorofórmio); 
C2H6O (álcool etílico); 
Cotonete; 
Algodão; 
Papel macio. 
 
PROCEDIMENTO 
 
1. Segurança do experimento 
Higienize as mãos na pia e coloque os equipamentos de proteção individual localizados no 
“Armário de EPIs: jaleco e luvas”. 
 
2. Escolhendo a lâmina 
Abra o laminário, selecione uma lâmina e mova para o microscópio. No laminário contém as 
seguintes lâminas: testículo, epidídimo, próstata, vesícula seminal, pênis e ovário. 
 
Selecione a lâmina clicando com o botão esquerdo do mouse na lâmina. 
 
 
3. Visualizando a lâmina no microscópio 
Ligue o microscópio. Visualize a lâmina na objetiva de 4x, 10x e 40x. Atente-se à instrução 
que, para movimentação do revólver ou para efetuar as configurações de 
posicionamento dos parafusos, condensador ou diafragma, deve-se clicar com o botão 
esquerdo do mouse sobre a área desejada e movimentar o cursor do mouse para direita 
ou esquerda. Coloque uma gota do óleo de imersão sobre a lâmina no microscópio e mude 
para a objetiva de 100x. Retorne a lâmina para o laminário. Selecione as demais lâminas 
para observação. 
 
Visualize a lâmina na objetiva de 4, 10 e 40x pressionando com o botão esquerdo do mouse 
sobre o revólver e movimentando o cursor à direita ou à esquerda. 
 
 
Para visualização na objetiva de 100x coloque o óleo de imersão clicando com o botão 
esquerdo do mouse no conta-gotas. 
 
Visualize a lâmina na objetiva de 100x pressionando com o botão esquerdo do mouse 
sobre o revólver e movimentando o cursor à direita ou à esquerda. 
 
 
Retire a lâmina do microscópio clicando com o botão esquerdo do mouse na lâmina de vidro. 
 
Repita as etapas para as demais lâminas. 
 
4. Ao finalizar, feche o laminário e desligue o microscópio. Limpe o microscópio clicando com 
o botão esquerdo do mouse no cotonete, algodão e lenço e papel filtro. 
 
Checklist: 
Observar as lâminas específicas para o experimento; 
Observar e analisar as principais características estruturais dos tecidos observados; 
Observar e esquematizar as lâminas estudada. 
Resultados da aula prática: Aluno, você deverá entregar: 
Um arquivo contendo o desenho esquemático das estruturas observadas bem como a resposta 
para os questionamentos a seguir: 
1. Quais os órgãos envolvidos com o sistema reprodutor feminino e masculino? 
2. Qual a importância das células de Sertoli e Leydig? 
 
3. Quais os estágios de maturação dos folículos ovarianos? 
 
Referências: 
JUNQUEIRA, L. C. U. Biologia celular e molecular. 9.ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 
2012. 
GARTNER, L. P. Atlas coloridode histologia. 7. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2018. 
PAWLINA, W. Ross histologia texto e atlas: correlações com biologia celular e molecular. 
8. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2021. 
SADLER, T. W. Langman, embriologia médica. 14. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 
2021.