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GABRIELE RODRIGUES CONCEIÇÃO DOUTORANDA EM BIOTECNOLOGIA - RENORBIO Para otimizar o processo é necessário: -Garantir a pureza do processo -Aumentar a transferência massa/microrganismo -Possibilitar o controle de fatores limitantes do processo, como controle de pH, aeração, concentração de substrato Reatores são aparelhos utilizados para promover um ambiente controlado para um ótimo crescimento do microrganismo e obtenção do produto desejado. Fase exponencial Fim da Fase exponencial Fase estacionária Fase de declínio Cultura Estoque Frasco Erlenmeyers Fermentador Inóculo Esterilização de meio Formulação de meio Matéria prima Fermentador de produção Cultura liquida Separação de células Sobrenadante Biomassa Recuperação do produto Recuperação do produto Meio ▪ Indústria clássica ▪ Indústria farmacêutica ▪ Indústria de produtos químicos ▪ Indústria de enzimas Proteases Lipases Isomerases Liases etc. Erlenmeyer Bancada Industrial Células/enzimas livres Reatores agitados mecanicamente Reatores agitados pneumaticamente • Coluna de bolhas • Reatores “air-lift” Reatores de fluxo pistonado Células/enzimas imobilizadas em suportes Reatores com leito fixo Reatores com leito fluidizado Células/enzimas confinadas entre membranas Reatores com membranas planas Reatores de fibra oca Reatores em fase aquosa (fermentação submersa) Fonte: Kleinstreuer, 1987 ▪ Agitados mecanicamente Reator de tanque agitado “Stirred tanks” O agitador é montado no eixo central, podendo possuir ao longo de sua altura uma série de turbinas, as quais podem ser de diferentes tipos. ▪ Agitados Pneumaticamente O líquido é agitado pelo borbulhamento de gás (normalmente ar). Apresentam menor tensão de cisalhamento, o que torna atraente para o cultivo de células animais e vegetais. A diferença básica entre o reator coluna de bolhas e Air-Lift, é que este último tem movimentação cíclica do líquido (bem ordenado) e o primeiro apresenta movimentação aleatória. ▪ Leito fixo “Fixed bed reactors” Nos reatores de leito fixo, a movimentação é praticamente inexistente. ▪ Leito fluidizado “Fluidized bed reactor” Nos reatores de leito fluidizado as partículas (pellets) nas quais o biocatalisador está imobilizado se movimentam intensamente. A fluidização do leito pode ser realizada por: ▪ Injeção de ar ▪ Gás inerte ▪ Corrente de recirculação do líquido no reator ▪ Reatores de fluxo pistonado Preenchimento com líquido. E posteriormente o inóculo e meio de cultura são misturados na entrada do sistema. A cultura flui com uma velocidade constante, sem ocorrer mistura longitudinal. Há uma variação de concentração de nutrientes e de células ao longo do comprimento do reator. Reatores Descontínuo ou Batelada Inóculo + meio é inoculado no reator. Após o tempo de cultivo todo o cultivo é retirado. Reatores Contínuos Processos ininterruptos em vários reatores, no qual o primeiro reator é responsável por alimentar o segundo, e assim em diante. Reatores Descontínuo Alimentado Caracterizam-se pela alimentação (intermitente ou contínua) de mosto ao fermentador. Reatores Descontínuo são o 2º mais utilizado. Ex.: produção de vinhos Reatores Descontínuo Alimentado são os mais utilizados para produzir produtos biológicos. Ex.: produção de leveduras Os reatores contínuos são vastamente utilizados em tratamento de efluentes. Ex.: produção de antibióticos Perda de calor por irradiação e evaporação, e então a temperatura é controlada por troca de calor facilitadas por jaquetas d’água ou serpentinas. 1. Fatores limitantes na operação do biorreator ▪ Temperatura ▪ pH ▪ Aeração ▪ Agitação Eletrodos esterilizáveis permitem incluir nos fermentadores como acessórios, com ou sem um sistema automático de adição de álcali ou de ácido para corrigir o meio. Receber o suprimento de oxigênio adequado. O oxigênio dissolve em água e a dissolução depende da temperatura e da ocorrência de outras substâncias dissolvidas. Medição através de eletrodos que medem continuamente o potencial gerado pelo oxigênio. Boa distribuição do ar no interior do fermentador. Com agitação há uma dispersão uniforme das bolhas de ar e também dos nutrientes, que não ficam concentrados em determinadas zonas. 2. Propriedades limitantes do meio de fermentação ▪ Propriedades físicas do substrato (líquido ou sólido); ▪ Propriedades reológicas (densidade e viscosidade); ▪ Componentes do meio sensíveis ao calor; ▪ Variações na concentração de substrato/produto/gases; ▪ Formação de espuma ▪ Antiespumante à base de silicone, de álcoois superiores e agentes de ação de superfície dispersos em óleos. ▪ Ser de fácil eliminação no momento de separação do metabólito do substrato fermentado. Deve conter: ▪ Fonte de carbono e energia ▪ Macro e micronutrientes ▪ Controle do processo Meio de cultura: oferece condições nutricionais para o crescimento de um microrganismo. - Preparação e Esterilização (asséptico). • Carbono: inorgânico (CO2) ou compostos orgânicos • Macronutrientes: C, O, H, N, P, S, K, Mg, Ca, Na • Elementos traços: B, Co, Cu, Mn, Ni, Se, Zn • pH, tampão, agentes antiespumante, precursores e inibidores de vias metabólicas. C Fotoautotróficos Fotoheterotróficos Quimiolitotróficos Quimioheterotróficos Luz como fonte de energia e CO2 como fonte de carbono Luz como fonte de energia e compostos orgânicos como fonte de carbono Energia Subst. Químicas inorgânicas como fonte de energia e CO2 como fonte de carbono Subst. Químicas orgânicas como fonte de energia e fonte de carbono ▪ Definidos ▪ Adição precisa de compostos orgânicos e inorgânicos ▪ Composição química exata ▪ Complexos ▪ Não se sabe a composição exata do meio de cultura. ▪ Exemplos: Caseína (proteína do leite), extrato de levedura (células de levedura), extrato de carne, soja ▪ Fontes altamente nutricionais ▪ Real composição é desconhecida 20 a 75% dos custos de produção Meio-cultura Açúcares e amidos são os substratos mais comuns para a fermentação Etanol Cerveja Queijo Cana de açúcar, milho, batata, etc. (mistura com água, 12% de açúcares). Rendimento máximo 100 g açúcar -> 45g etanol Semente de cevada germinadas. Maltose e glicose (mistura com água, 8% de açúcares) Lactose presente na parte coagulada sem o soro. (4-8g de lactose em 100g de leite coagulado Definido Definido Complexo Definido Como fazer uma solução estoque de NaOH a 3M? Como fazer 10mL de uma solução 1M de NaOH a partir de uma solução de 3M? Como fazer uma solução com 20% de glicose (W/W)? É colocar 20g em 1L? Como fazer uma solução com 20% de glicerol (v/v)? Como fazer uma solução aquosa contendo 10g de etanol por 1 litro? Como fazer um meio de cultura contendo: 4g de N-NO3 por litro a partir de diferentes substâncias químicas? Em 84,99 de NaNO3 existem 62g de NO3. Portanto = 5,48g de NaNo3 em 1L. Em 228,14 g de Ca(NO3)2+4H2O ---- 124 g de NO3 = 7,35 g de Ca(NO3)2+4H2O em 1L ▪ Eliminar todas as formas de vida de seu interior ou superfície. ▪ Em alguns casos, a eliminação parcial da população microbiana dos equipamentos é suficiente para garantir a qualidade que se deseja no produto. ▪ Ex.: indústria de laticínios: pasteurização não elimina todos os microrganismos ▪ Resistência do microrganismo ▪ Composição do meio ▪ Dimensões de um recipiente ▪ Esterilização de reatores vazio ▪ Esterilização de reatores com meio de cultura ▪ Quantidade de inóculo: 5 a 30% do volume do meio. ▪ Depende do volume do reator a ser utilizado. ▪ Período em que possua maior quantidade de células viáveis. ▪ Densidade ótica ▪ UFC ▪ Peso seco/Peso úmido Legenda: O efeito do tempodo inóculo no crescimento e na produtividade da fermentação de streptomycetes. (a) O perfil da taxa de produção do dióxido de carbono mostra os pontos onde os inóculos foram retirados. (b)O efeito do tempo do inóculo na produtividade de um produto da fermentação. ▪ Em escala industrial, podem ser divididos em: Culturas puras: inoculação de um reator com um microrganismo que foi propagado a partir de uma cultura pura; Recirculação do microrganismo: reaproveitam como inóculo o microrganismo da batelada anterior; Por meio de cortes: inocula-se um reator A, quando a fermentação atinge um determinado estágio, passa-se por parte de conteúdo para um reator vazia B e, em seguida, enchem-se as duas como meio de cultivo. Então, o reator A foi cortada para o reator B. Reatores são aparelhos utilizados para promover um ambiente controlado para um ótimo crescimento do microrganismo e obtenção do produto desejado. Os principais objetivos dos reatores são: transferência de massa do substrato para o microrganismo e transferência de gases. Os reatores podem ser classificados de acordo com o comportamento de crescimento do microrganismo (livre ou imobilizado) e o tipo de mistura do meio (agitação mecânica ou pneumática) Em relação a operação dos reatores: ▪ É necessário conhecer a fisiologia do microrganismo; ▪ A cinética de crescimento e produção de bioprodutos; ▪ Testes em escala de bancada devem ser feitos antes da escala industrial; ▪ O tipo de operação utilizada: contínuo, descontínuo ou descontinuo alimentado; ▪ Agitação, aeração, temperatura e pH devem ser controladas durante a operação; ▪ As variáveis limitantes do processo: variações na concentração de substrato/produto/gases e formação de espuma; ▪ Constituição do meio de cultura: barato; ▪ Assepsia do processo; ▪ Proporção do inóculo / meio deve ser estudada; ▪ Para inocular um reator é necessária aumento da biomassa do microrganismo em fases pré-produção.
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