Câmera Neubauer leuc e hc

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CÂMERA DE 
NEUBAUER 
Contagem de leucócitos 
Contagem de hemácias 
Câmera de Neubauer 
• É equivalente a uma lâmina mais larga e 
mais alta. 
• Rigorosamente dividida para possibilitar 
contagem de estruturas microscópicas 
Características do retículo da 
câmera 
Possui 9 grandes 
áreas com três tipos 
de quadrantes de 
diferentes 
subdivisões (A, B, 
C). Estruturas 
menores são 
contadas nos 
quadrantes “C”, 
intermediárias no “B” 
e maiores no “A”. 
Câmera Neubauer 
• Cada quadrante mede 1 mm2. Quando se 
coloca a lamínula a distância entre a 
lâmina e a lamínula (profundidade) é de 
0,1mm. 
• Quadrante - 1 mm2 X 0,1mm = 0,1 mm3 
ou seja em cada quadrante = 0,1 mm3 
 
 
Câmera Neubauer 
• As 4 áreas grandes 
angulares ( L ) são 
subdivididas em 16 
áreas com 0,25 mm 
de cada lado. 
• Elas são utilizadas 
para contagem de 
leucócitos. 
Câmera Neubauer 
• Ex: contou 4 quadrantes = 0,1 X 4 = contou 0,4 
mm3 
• Se tivesse contado 8 estruturas faria a regra de 
três 
• 8 estruturas ----------0,4 mm3 
• X---------------- 1,0 mm3 
• X = 8/0,4 = 20 estruturas em 1 mm3 ou mililitro 
• Se a estrutura contada tiver sido diluída 
multiplicar pelo fator de diluição. 
• Ex: diluiu a 1/5 na situação acima = 20 X 5 = 100 
PRINCÍPIO DA CONTAGEM EM CÂMARA 
• 1) o sangue colhido em frasco, contendo 
anticoagulante (geralmente EDTA), 
deverá ser homogeneizado antes da 
utilização . Se sangue capilar, a diluição 
deverá ser efetuada logo após a coleta. 
• 2) após a diluição, o tubo de diluição, 
deverá sempre ser homogeneizados 
antes do preenchimento da câmara. 
PRINCÍPIO DA CONTAGEM EM CÂMARA 
• 3) Não deverá haver demora na 
contagem, evitando-se assim a secagem 
do líquido contido na câmara, a câmara, 
parcialmente seca, não poderá ser 
utilizada. 
• 4) Para algumas contagens especiais, a 
câmara preenchida deverá ser mantida 
em câmara úmida 
Contagem de leucócitos 
• Diluição em tubo de ensaio (macrodiluição): 
• 1)Em um tubo de ensaio colocar 0,4 mL da solução 
diluente. 
• 2) Acrescentar 20 microlitros de sangue homogeneizado 
e rinsar a pipeta. 
• 3)Homogeneizar a solução final por inversão do tubo ou 
em vortex. 
• 4)Preencher a câmara de Neubauer com o auxílio de um 
tubo capilar. 
• 5) Contar os leucócitos de 4 quadrados médios e 
multiplicar por 50. 
• Analisar no microscópio as variações morfológicas 
dos leucócitos 
 
Preenchimento da Câmera 
Contagem de hemácias 
• A grande área central é subdividida em 25 
grupos quadrados de 0,2 mm de cada 
lado. 
• Cada grupo consiste de 16 mini-áreas 
com 0,05 mm de lado, tendo cada área 
0,0025 mm2 . 
• Os 5 grupos marcados ( E ) são usados 
para contagem de eritrócitos 
Contagem de hemácias 
Figura Divisões para contagem de eritrócitos manual (100x 
www6.ufrgs.br/favet/lacvet/eritrocitos.htm 
 
http://www6.ufrgs.br/favet/lacvet/eritrocitos.htm
Contagem de hemácias 
• É observado que todas as áreas têm uma 
borda tripla em cada lado. 
• A linha central é o limite e determina 
quando uma célula deve ser incluída na 
contagem ou não. 
 
 
Contagem de hemácias 
Contagem de hemácias 
(macrodiluição) 
• 1) Em um tubo de ensaio colocar 4mL da solução 
diluente. 
• 2) Acrescentar 20 microlitros de sangue homogeneizado 
e rinsar a pipeta. 
• 3) Homogeneizar a solução final por agitação do tubo ou 
uso vortex em rotação lenta. 
• 4) Preencher a câmara de Neubauer com o auxílio da 
pipeta ou de um tubo capilar. 
• 5) Contar as hemácias de 5 quadrados médios e 
multiplicar por 10000. 
• Analisar no microscópio as variações morfológicas 
das hemácias.