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Manejo Integrado de Pragas do Algodoeiro no Brasil Raul Porfírio de Almeida Carlos Alberto Domingues Francisco de Sousa Ramalho Embrapa Algodão INTRODUÇÃO A cultura do algodão é de grande expressão sócio-econômica para os setores primário e secundário do Brasil. Todavia, as pragas constituem-se um dos fatores limitantes para sua exploração, caso não sejam tomadas medidas eficientes de controle. As medidas com que se procura envolver a utilização simultânea de diferentes técnicas de redução populacional objetivando manter os artrópodos em uma condição de “não praga”, de forma econômica e harmoniosa com o ambiente referem-se ao que é conhecido por “Manejo Integrado de Pragas - MIP”. Na cultura do algodão, o MIP constituiu-se, durante muito tempo, em verdadeiro desafio para os entomologistas brasileiros em razão do grande volume de inseticidas aplicados nas práticas convencionais. Entretanto, foi na década de 1970 que surgiram as primeiras pesquisas desenvolvidas na área de manejo de pragas no Brasil, evidenciando-se a Embrapa Algodão em Campina Grande, PB como precussora nesta linha de estudo. Batista (1990), além da Embrapa Algodão, citou a participação da equipe de entomologistas da Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias da UNESP, Jaboticabal, SP. A situação atual da cotonicultura nacional exige um alto nível de conhecimentos pelos cotonicultores, de modo que os seus lucros ou prejuízos, em cada ano agrícola dependem principalmente da sua eficiência na luta contra as pragas e preservação do meio ambiente. O futuro dos programas de manejo integrado de pragas, frente às oportunidades de expansão de estratégias de controle como o biológico, o desenvolvimento de algodão transgênico, entre outras alternativas de controle, leva a crer na menor dependência do uso de produtos químicos, tornando o agroecossistema algodoeiro ecologicamente viável (Frisbie & Adkisson, 1985; Frisbie et al., 1989; King & Coleman, 1989; Castro, 1992; King & Phillips, 1993; Luttrell et al., 1994). Por outro lado, tem-se observado uma redução no mercado de novos princípios ativos de inseticidas sintéticos. De acordo com Berenbaum (1989) durante o período de 1961 a 2 1970, 16 novos princípos ativos foram produzidos e segundo Simmonds et al. (1992), nos últimos 10 anos, apenas quatro outros foram sintetizados. No Brasil, os esforços de pesquisadores e extensionistas no desenvolvimento e implementação do MIP-Algodão, têm promovido significativas mudanças na abordagem da artropodofauna algodoeira, havendo muito a se atingir no século que se inicia. Entretanto, informações adicionais, sobre o potencial de reguladores de crescimento de insetos, parasitóides, predadores, inseticidas biológicos, práticas culturais, controle climático e engenharia genética, são necessárias (Ramalho, 1994). Dentre as pragas que atacam o algodoeiro no Brasil, destacam-se: broca (Eutinobothrus brasiliensis), percevejo castanho (Scaptocoris castanea), lagarta rosca (Agrotis ipsilon), tripes (Frankliniella spp., Thrips tabaci; Hercothrips spp), pulgões (Aphis gossypii e Myzus persicae), moscas branca (Bemisia argentifolii), broca da haste (Conotrachelus denieri), curuquerê (Alabama argillacea), besouro amarelo (Costalimaita ferruginea), bicudo (Anthonomus grandis), lagarta-das-maçãs (Heliothis virescens), lagarta rosada (Pectinophora gossypiella), ácaros (Tetranychus urticae, Tetranychus ludeni, Polyphagotarsonemus latus), percevejos (Horcias nobilellus e Dysdercus spp.) e mosquito (Gargaphia torresi). Para controlar essas pragas, o agricultor geralmente utiliza-se das aplicações de inseticidas químicos de forma inadequada, ocasionando danos ao meio ambiente e à saúde do agricultor. No entanto, pode-se reduzir o efeito negativo desses inseticidas, através da utilização do Manejo Integrado de Pragas (MIP), o qual é constituído de várias estratégias de controle. Todavia, para o sucesso no emprego dessas estratégias é necessário que se façam amostragens para determinação dos níveis de controle das pragas e de ação dos inimigos naturais, visando otimizar a utilização de inseticidas. ARTRÓPODOS-PRAGA No Brasil, estima-se que a entomofauna associada à cultura do algodão inclua cerca de 259 espécies de insetos (Silva et al. 1968), das quais 12 são consideradas pragas importantes juntamente com 3 espécies de ácaros fitófagos (Gallo et al. 1988). Levantamentos da artrópodofauna algodoeira indicam que o número de espécies encontradas nesta cultura pode variar de poucas centenas a mais de milhares. A grande maioria destas espécies é predadora e parasitóide de espécies fitófagas. Estima-se que o número de artrópodos-praga varia de 20 a 60, mas danos 3 significantivos são causados por 5 a 10 pragas-chave em muitos sistemas produtivos (Bachelor & Bradley, 1989). Atualmente, foram relatadas cinco espécies de insetos associados ao algodoeiro: a mosca branca que foi observada causando surtos no Paraná e São Paulo (Costa et al., 1973) e mais tarde citada por Lourenção & Nagai (1994) e Lourenção (1997). A broca da haste relatada por DeGrande (1992) e Santos (1997). O ataque de Spodoptera frugiperda em vários Estados do Brasil (PRANCHA I-A) e a ocorrência da cochonilha Phenacoccus solenopsis Tinsley (Hemiptera: Pseudococcidae), a qual tem se destacado por apresentar alto nível de infestação em alguns municípios dos estados da Bahia, Paraíba e Ceará (PRANCHA I-B, C e D). Nas últimas duas safras da região oeste do estado da Bahia, têm sido relatados ataques severos de lagartas do gênero Helicoverpa spp., nas culturas do milho, soja e algodão. Isto se deve ao fato de que o empresário agrícola não maneja adequadamente o sistema, favorecendo a ocorrência de outras pragas. De tal maneira que o crescimento populacional de lagartas de Helicoverpa spp. e consequentes prejuízos observados a produção de milho, soja e algodão tem sido ocasionado por um processo cumulativo de práticas de cultivo inadequadas caracterizadas pelo plantio sucessivo e contiguo de poucas espécies vegetais que são plantas hospedeiras de diversos lepidópteros-praga, especialmente aquelas pertencentes ao gênero Helicoverpa. BROCA-DA-RAIZ - Eutinobothrus brasiliensis (Hambleton) (Coleoptera: Curculionidae) O inseto adulto é um besouro com cerca de 3 a 5 mm de comprimento e coloração creme logo após sua emergência, tornando-se, em seguida, de cor preta. Tem o hábito de perfurar o caule na altura do coleto alimentando-se de folhas antes do acasalamento. Faz a postura à noite, no colo da planta, rente ao solo. Os ovos apresentam coloração variável entre o creme-esbranquiçado ao amarelo, formato oval, arredondado nas extremidades e variável no tamanho, apresentando diâmetro de 0,45mm; as larvas apresentam coloração variável entre o branco, amarelo e até o pardo, medindo aproximadamente 7mm de comprimento (PRANCHA I – E). O ciclo biológico da broca é de 83 dias (ovo: 11 dias à 21oC; larva: 58 dias à 23oC; pupa: 15 dias à 22oC). A longevidade varia de 100 a 200 dias, respectivamente, para fêmeas e machos. O período de pré-oviposição varia entre 6 a 7 dias à 25oC. Cada fêmea oviposita em média 1 ovo/dia, com produção média de 4 160 ovos/fêmea. A razão sexual é de 0,51 (Hambleton, 1937). Podem ocorrer até quatro gerações anuais. As plantas atacadas murcham, ficando as folhas avermelhadas e pendentes (PRANCHA I–F); quando arrancadas mostram as raízes deformadas com nós ou calosidades e partes mortas, podendo se encontrar no seu interior, a broca (PRANCHA II-A), cujas larvas abrem galerias entre a casca e o lenho em todas as direções, às vezes circundando completamente a planta, provocando murcha e morte. Quando não há morte ocorre hipertrofia, necrose dos tecidos e um enfraquecimento geral da planta. Ataques severos são notados em solos úmidos, observando-semorte de plantas jovens com 20 a 25 cm de altura. O período crítico compreende desde a germinação até o aparecimento da primeira flor; o tratamento preventivo de sementes, em áreas de reconhecida ocorrência deve ser empregado, principalmente por não se ter estabelecido o nível de controle para esta praga; cujo ataque só é detectado, após o dano ter sido realizado. PERCEVEJO CASTANHO - Scaptocoris castanea Perty, 1839 (Heteroptera, Cydnidae) O inseto adulto mede cerca de 8 mm de comprimento, de coloração castanho claro. Apresenta as pernas anteriores fossoriais e tíbias medianas com área dorsal achatada e glabra. Os ovos são colocados isoladamente no solo próximo as raízes das plantas e apresentam coloração branca e formato oval; as ninfas apresentam coloração branca. Atacam as raízes das plantas, sugam a seiva, provocando amarelecimento seguido de secamento. LAGARTA ROSCA - Agrotis ipsilon (Hufnagel, 1767) (Lepidoptera, Noctuidae) O inseto adulto é uma mariposa de aproximadamente 20 mm de comprimento e 30-35 mm de envergadura, que apresenta as asas anteriores escuras, de coloração cinza ou marrom mosqueado, enquanto as posteriores são claras e semi- transparentes. As lagartas apresentam coloração variável entre o cinza até o marrom e, quando completamente desenvolvidas, podem atingir 50 mm de comprimento (PRANCHA II-B). São facilmente reconhecidas por apresentarem o hábito de se enroscarem quando tocadas. A oviposição geralmente é efetuada nas folhas ou no 5 caule, mas pode ser feita em fendas do solo, separadamente ou em pequenos grupos; uma fêmea coloca em média 1.000 ovos. O ciclo biológico da lagarta rosca varia de 34 a 64 dias (ovo: 4; larva: 20-40 e pupa: 10-20). Uma fêmea pode colocar até 1.260 ovos; período de pré-oviposição: três dias (Zucchi et al., 1993). Os danos são provocados pelas larvas do inseto nas plantas jovens; podem alimentar-se do caule, das folhas e das raízes; o dano mais significativo ocorre no caule, na região acima do colo, chegando a seccioná-lo, ocasionando, em alguns casos, diminuição do número de plantas por hectare. O período crítico compreende desde a emergência das plântulas até o aparecimento do primeiro botão floral. TRIPES - Thrips spp., Frankliniella spp., Thrips tabaci (Lindeman); Hercothrips spp. (Thysanoptera: Thripidae) Os adultos são pequenos insetos com cerca de 1-2 mm de comprimento, de coloração geralmente preta e asas franjadas; as fêmeas são maiores e em maior número que os machos; a coloração das formas imaturas em geral é branca ou levemente amarelada, sendo as espécies dificilmente diferenciadas uma das outras. De acordo com Nakano et al. (1981), o ciclo biológico do tripes é de 14 dias (ovo: 5 dias; ninfa: 5 dias e pupa: 4 dias). A longevidade dos adultos varia de 14 a 21 dias; número de ovos/fêmea: 20 a 100 e número médio de ovos/fêmea/dia: 14. Atacam as plantas jovens, provocando o encarquilhamento e espessamento das folhas do ponteiro, acompanhado de enfezamento da planta. O período crítico compreende desde a emergência das plântulas até os primeiros 20 dias após a germinação e o controle deve ser realizado quando forem detectados 70% de plantas com sintomas de ataque do tripes no ponteiro. PULGÕES - Aphis gossypii Glover; Myzus persicae (Sulzer) (Hemiptera: Aphididae) Os adultos e as ninfas (PRANCHA II–C) são pequenos insetos providos ou não de asas, com cerca de 1-3 mm de comprimento, formato de pera e coloração variável do amarelo claro ao verde-escuro. O período ninfal varia entre 5 a 6 dias, durante o qual são verificados quatro ínstares. Os períodos reprodutivo e pós-reprodutivo variam, respectivamente, de 15 a 6 23 dias e 3 a 4 dias (Khalifa & Sharaf El-Din, 1964; Passlow & Roubicek, 1967; Vendramin & Nakano, 1981). A reprodução ocorre por partenogênese telítoca (Bergamin, 1954; Campos, 1960; Vendramin & Nakano, 1981), em que cada fêmea dar origem de 2 a 4 ninfas/dia, com uma média de 46 a 48 ninfas/fêmea (Hassanein et al., 1971; Vendramin & Nakano, 1981). Os danos caracterizam-se pelo encarquilhamento ou encrespamento das folhas (PRANCHA II-D) que ficam com os bordos voltados para baixo; a face superior das folhas adquire aspecto brilhante, devido à deposição de substâncias açucaradas excretadas pelo inseto. Essa substância açucarada é vulgarmente denominada “mela”; no período de abertura dos capulhos os danos implicam na redução da qualidade da fibra. Alta temperatura e tempo nublado favorecem o aparecimento do pulgão do algodoeiro. Os pulgões são ainda importantes vetores das fitoviroses conhecidas como Vermelhão e o Mosaico das Nervuras forma Ribeirão Bonito. Em regiões de reconhecida ocorrência, sugere-se evitar o plantio de cultivares suscetíveis. O período crítico compreende desde a emergência das plântulas até o aparecimento dos primeiros capulhos. O controle dessa praga deve ser realizado, ao se detectar, a presença de colônia de pulgões ( 5 insetos) no ponteiro, em pelo menos 70% das plantas amostradas. MOSCAS BRANCA - Bemisia argentifolii Bellows & Perring, Bemisia tabaci (Gennadius, 1889) (Homoptera, Aleyrodidae) Os adultos são insetos com cerca de 1,5 mm de comprimento, de olhos vermelhos e antenas longas em relação ao tamanho da cabeça com dois pares de asas membranosas brancas; os ovos de formato elíptico medem cerca de 0,2 mm de comprimento e são de coloração branca, tornando-se marrom quando próximos a eclosão; as ninfas de primeiro ínstar locomovem-se vagarosamente, enquanto as de segundo e terceiro ínstares são imóveis como as pupas e podem ser erroneamente confundidas com algumas espécies de cochonilhas (PRANCHA II-E). A duração média do ciclo biológico da Bemisia tabaci à 25oC é de 28 dias (Albergaria & Cividanes, 2002) . A longevidade de machos e fêmeas é de dois e oito dias, respectivamente. Número de gerações por ano: 11 a 15; capacidade reprodutiva: 100 a 300 ovos/ciclo (Brow & Bird, 1992). 7 Os danos iniciais caracterizam-se pelo aparecimento de pequenas pontuações brancas e amareladas na face inferior das folhas devido a sucção da seiva pelas ninfas e adultos do inseto (PRANCHA II-F); na face superior das folhas surgem manchas cloróticas, que posteriormente, adquirem aspecto brilhante, devido à deposição de substâncias açucaradas excretadas pelo inseto; ataques severos provocam o definhamento das plantas e intensa formação do “mela”, seguida pela queda das folhas, dos botões e dos frutos. A ocorrência do “mela” coincidentemente com o período de abertura dos capulhos implicam na redução da qualidade da fibra. Serrano et al. (1993) relataram que os principais danos são provocados pela queda precoce das folhas e o manchamento das fibras, porém as maiores perdas são atribuídas a transmissão de vírus, podendo atingir até 100%. Segundo Passos (1977), o vírus do Mosaico Comum; causa redução no crescimento da planta, podendo ocorrer esterilidade parcial ou total. BROCA DA HASTE - Conotrachelus denieri (Coleoptera, Curculionidae) Os adultos são pequenos besouros medindo cerca 0,5 mm de comprimento, coloração marrom avermelhada, apresentando manchas esbranquiçadas nos élitros. De acordo com Santos (1997), os ovos são colocados nos ponteiros das plantas e, após a eclosão, as larvas penetram na parte terminal do caule, produzindo galerias no sentido descendente. Em plântulas, o ataque poderá provocar a morte das mesmas. Quando o ataque ocorre a partir de 15 dias de idade das plantas, o crescimento é paralisado, os entrenós ficam curtos e ocorre superbrotamento. As maçãs também são atacadas por esse inseto principalmente aquelas localizadas na metade inferior das plantas. As larvas penetram nas maçãs pela base, destruindo as fibras e deixando intactas as sementes. O período crítico não se encontra definido, entretanto, possivelmente,compreende desde a germinação até o aparecimento do primeiro capulho; em áreas onde já é conhecida sua ocorrência, sugere-se o controle preventivo através de tratamento de sementes. CURUQUERÊ - Alabama argillacea (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae) Os adultos são mariposas com cerca de 30 mm de envergadura, apresentando coloração marrom avermelhada, com duas manchas reniformes nas asas anteriores; 8 os ovos são de coloração azul-esverdeada, circulares e achatados, com 0,6 mm de diâmetro (PRANCHA III-A); as lagartas podem atingir 40 mm de comprimento e apresentam coloração variando do verde-amarelado ao verde-escuro ou quase preto, com duas listras longitudinais e cabeça de cor amarela com pontuações pretas (PRANCHA III-B); são facilmente reconhecidas por apresentarem o hábito de saltarem quando tocadas e se locomovem como “mede palmo”. As pupas têm formato reniforme, afiladas na parte posterior e de cor castanho-escuro. A duração média do ciclo biológico do curuquerê à 25oC é de 18 dias. O período de incubação é de 2 e 3 dias, respectivamente, à 25 e 30oC; O período larval varia de 18, 14, 8, e 9 dias, respectivamente, à 20, 25, 30 e 35oC; o período pré- pupal à 20 oC é de 2 dias e o pupal varia de 18, 9, 6 e 6 dias, respectivamente, à 20, 25, 30 e 35oC. A longevidade dos adultos é de 3 e 21 dias, respectivamente, à 35 e 20oC, enquanto o número médio de ovos/fêmea é de 327 e 179, respectivamente, à 25 e 30oC. Podem ocorrer 2 a 7 gerações/ciclo do algodoeiro (Kasten Júnior & Parra, 1984; Parra et al., 1984). Os danos são observados inicialmente nas folhas novas do ponteiro que se apresentam raspadas e, em seguida, as folhas medianas da planta, apresentam-se com perfurações irregulares (PRANCHA III-C); posteriormente, ocorre a desfolha generalizada, deixando a planta sem folhas. A sua ocorrência está associda a períodos de estiagem após precipitações pluviais. O período crítico compreende desde a germinação das plântulas até o aparecimento do primeiro capulho; o nível de controle (NC) estabelecido é de 22 ou 53% de plantas amostradas com a presença de lagartas maiores e menores que 15 mm, respectivamente. BESOURO AMARELO - Costalimaita ferruginea vulgata (Lefreve) (Coleoptera, Chrysomelidae). Os adultos são besouros com cerca de 5 mm de comprimento, de coloração pardo-amarelada brilhante . É um inseto polífago e bastante ágil nesta fase; as larvas vivem no solo. Atacam preferencialmente as folhas jovens; o dano característico é o rendilhamento decorrente de diversas perfurações no limbo foliar (PRANCHA III-D); ataques severos podem afetar o desenvolvimento das plantas. 9 Os maiores danos são observados no período compreendido entre a emergência das plantas e o aparecimento das primeiras maçãs. ÁCARO RAJADO - Tetranychus urticae (Koch) (Acari: Tetranychidae) São artrópodos minúsculos cujas formas ativas de desenvolvimento são de coloração esverdeada, apresentando duas manchas mais escuras no dorso, uma de cada lado; as fêmeas medem cerca de 0,5 mm de comprimento e possuem corpo ovalado; os machos são menores e têm as pernas mais longas em relação ao corpo que as fêmeas; formam colônias que recobrem com grande quantidade de teias, nas quais são colocados os ovos, que são esféricos e esbranquiçados. O ciclo biológico do ácaro rajado à 24 a 26oC, 52 a 62% U.R. e fotofase de 14 horas, em três cultivares de algodão apresenta duração média variando de 10 a 11 dias (ovo: 5 dias; larva: 1 dia; larva quiescente: 1 dia; protoninfa: 1 dia; protoninfa quiescente: 1 dia; deutoninfa: 1 dia; deutoninfa quiescente: 1 dia); período de pré- oviposição: 1 dia; oviposição: 16 dias; número de ovos/fêmea/dia: 5; número de ovos/fêmea: 80; longevidade: 5 dias; razão sexual: 2:1 (Silva & Parra,1983) Os danos caracterizam-se inicialmente pelo aparecimento de pequenas manchas avermelhadas entre as nervuras, as quais coalescem tomando toda a folha que, posteriormente, cai. O período crítico compreende desde o aparecimento dos botões florais até o primeiro capulho; níveis populacionais a partir de 40% (NC) de plantas com colônia, determinam o início do controle. ÁCARO VERMELHO - Tetranychus ludeni (Zacher) (Acari: Tetranychidae) São artrópodos minúsculos cujas formas ativas apresentam coloração vermelha intensa (PRANCHA III-E). As fêmeas medem cerca de 0,43 mm de comprimento e têm corpo ovalado, sendo os machos menores, de forma afilada e com as pernas mais longas em relação ao corpo que as fêmeas; localizam-se na parte inferior das folhas, onde formam colônias que recobrem com grande quantidade de teias, nas quais são colocados os ovos, arredondados e de coloração vermelha. Para caracterização do dano (PRANCHA III-F) ver ácaro rajado. Este arachinídeo tem sido favorecido por temperaturas elevadas e estiagem. 10 O ciclo biológico do ácaro vermelho é de 13 dias (ovo: 4 dias; larva: 3 dias; protoninfal: 3 dias; deutoninfal: 3 dias); período de oviposição: 16 dias; número de ovos/fêmea/dia: 5 a 6; número de ovos/fêmea: 50 a 60; longevidade: 10 a 17 dias (Nakano et al., 1981). Para caracterização do dano, período crítico e nível de controle, ver ácaro rajado. ÁCARO BRANCO - Polyphagotarsonemus latus (Banks) (Acari: Tarsonemidae) São artrópodos de coloração branca-brilhante, praticamente imperceptíveis a olho nu. As fêmeas apresentam coloração de branco a amarelo-brilhante e medem pouco menos de 0,2 mm de comprimento, enquanto os machos são de cor branca- hialina brilhante e menores que as fêmeas; têm preferência pelas folhas do ponteiro, onde fazem postura; entretanto, não fazem teia, como os tetranichídeos; os ovos medem cerca de 0,1 mm de diâmetro e são de coloração pérola com formato oval e morulado. O ciclo biológico do ácaro branco à 27oC varia de 5 a 7 dias (ovo: 1 a 3 dias; larva: 2 dias; pupa: 2 dias) (Flechtmann, 1983). Cada fêmea põe em média cerca de 4 a 7 ovos/dia (Guérout, 1969). Os danos são observados nas folhas do ponteiro que apresentam a face inferior brilhante e margens voltadas para cima; com o decorrer do tempo ficam espessas e coriáceas, tornando-se quebradiças; plantas com ataque intenso ficam com caules deformados, em forma de “S”, devido ao atraso do seu desenvolvimento. O período crítico compreende desde a formação das maçãs ao aparecimento dos capulhos. Para o nível de controle, ver ácaro rajado. MOSQUITO - Gargaphia torresi Lima (Heteroptera: Tingidae). São pequenos percevejos com aproximadamente 5-6 mm de comprimento, caracterizados por apresentarem as asas rendadas; são vulgarmente denominados de mosquitos; os adultos e as ninfas apresentam aspecto reticulado na face dorsal do corpo e nas expansões do tórax, facilitando sua identificação (PRANCHA IV-A). Os danos são observados nas folhas do baixeiro que apresentam manchas prateadas na face superior e descoloração na face oposta, com pequenas pontuações pretas (PRANCHA IV-B). As plantas podem se apresentar com 11 enfezamento ou nanismo. Tempo quente e seco e estiagens prolongadas propiciam a ocorrência dessa praga. O período crítico é provável que compreenda desde a emergência das plântulas até o surgimento dos botões florais; o nível de controle estabelecido é de 53% das plantas com colônia na face inferior das folhas. LAGARTA ROSADA - Pectinophora gossypiella (Saunders) (Lepidóptera: Gelechiidae) Os adultos são mariposas com 18 a 20 mm de envergadura e apresentam as asas anteriores de coloração pardacenta com manchas escuras, formando desenhos variados; as asas posteriores são cinza-clara brilhantes com franjas nas bordas; o ovo é branco-esverdeado e as larvas branco-leitoso, quando pequenas, e rosadas com o crescimento (Prancha IV-C), chegando a atingirem 12 mm de comprimento. A duração média do ciclo biológico da lagarta rosada varia de 21a 45 dias (Ahamad, 1976; Zucchi et al., 1993); períodos de incubação (USDA, 1965; Ahamad, 1976; Zucchi et al., 1993), larval e pupal (Noble, 1969; Ahamad, 1976, Zucchi et al., 1993) variam, respectivamente, de 3 a 12, 10 a 30 e 6 a 20 dias. A longevidade (Zucchi et al., 1993) varia de 7 a 15 dias; período de pré-oviposição de 3 a 4 dias (USDA, 1965); número médio de ovos/fêmea/dia varia de 13 a 49; produção média de 200 ovos por fêmea. Podem ocorrer 4 a 6 gerações/ciclo do algodoeiro (Ahmad, 1976; Zucchi, 1993). Os danos são caracterizados pela imbricação das flores formando uma roseta; as maçãs apresentam a parede do carpelo com galerias, minas ou verrugas e as fibras, de uma ou mais lojas, ficam manchadas ou destruídas; sementes parciais ou totalmente destruídas; as maçãs apresentam orifícios de saída contruídos pela largarta (PRANCHA IV-D) e os capulhos amadurecem prematuramente, chegando muitas vezes a não abrirem. Veranicos durante anos de baixa precipitação favorecem a ocorrência da lagarta rosada. O período crítico compreende desde o surgimento da primeira maçã firme até o aparecimento do primeiro capulho; o controle deve ser iniciado quando se registrar 11% de maçãs com sinal de ataque. LAGARTA-DAS-MAÇÃS - Heliothis virescens (Fabricius) (Lepidoptera: Noctuidae) 12 Os adultos são mariposas que apresentam coloração verde-pálida com três listras castanhas e oblíquas na asa anterior (PRANCHA IV-E); os ovos são de cor branco-brilhante, semi-esféricos e estriados longitudinalmente; as larvas são esverdeadas e algumas vezes avermelhadas, com listras longitudinais e pontuações no dorso, apresentando cerca de 25 a 30 mm de comprimento. A duração média do ciclo biológico da lagarta-das-maçãs alimentada com dieta artificial à 24oC é de 33 dias (ovo: 3 dias; lagarta: 15 dias; pré-pupal: 4 dias; pupal: 11 dias). Período de pré-oviposição: 4 dias; longevidade do adulto: 10 dias (Moreti & Parra, 1983); produção de ovos/fêmea: 600 (Zucchi et al., 1993). Os primeiros danos são observados nas folhas do ponteiro, caracterizados por perfurações irregulares na superfície foliar, tanto na parte interna como nos bordos do limbo; perfurações circulares são verificadas nos botões e maçãs com penetração total ou parcial das lagartas; são observados, paralelamente ao ataque, excrementos (fezes) em grande quantidade entre as brácteas e na superfície dos órgãos atacados. Sua ocorrência é favorecida com o aparecimento da lua nova e precipitações pluviais regulares. O período crítico compreende desde o surgimento dos botões florais até o aparecimento do primeiro capulho; 13% de plantas com lagartas determinam o início do controle. BICUDO - Anthonomus grandis Boheman (Coleoptera: Curculionidae) Os adultos são pequenos besouros com cerca de 4 a 9 mm de comprimento e 7 mm de envergadura, caracterizados por apresentarem coloração acinzentada ou castanha, com aparelho bucal mastigador em forma de tromba (Prancha IV-F). A fêmea de A. grandis deposita a maioria dos seus ovos dentro dos botões florais de tamanho médio (com diâmetro > 3 mm e < 6 mm) (PRANCHA V-A), desde o aparecimento dos primeiros botões florais na planta até o final do ciclo da cultura (Ramalho & Jesus, 1988). Os botões florais são as estruturas preferidas para alimentação (PRANCHA V-B) e oviposição pelo bicudo; embora no final do ciclo da cultura, as fêmeas depositam os ovos tanto em botões florais como em maçãs jovens. A fêmea de A. grandis deposita o ovo dentro do botão floral, entre as anteras imaturas ou da maçã, na parede carpelar, sendo um ovo por botão floral, exceto quando a densidade populacional da praga é alta. O orifício de oviposição é fechado por uma mistura de substância micótica e resíduos provenientes do botão floral; em 13 seguida, a planta reage fisiologicamente, produzindo uma protuberância ou calo, conhecido por orifício de oviposição (PRANCHA IV-C) que cicatriza de imediato, fechando-o. Ela põe 10 a 12 ovos por dia, produzindo cerca de 150 ovos durante a sua vida. Dois a três dias após a oviposição, a larva (PRANCHA IV-D) eclode e começa a se alimentar das anteras e de outros tecidos. A duração dos primeiro, segundo e terceiro ínstares nos botões florais é de um, dois e três a quatro dias, respectivamente (Alvarez, 1990). À medida que a larva se alimenta e cresce, ela constrói um local (cela pupal) para se empupar, dentro do botão floral. Isto ocorre até que o alimento se torne escasso ou os tecidos vegetais se tenham tornados inadequados, como alimento para a larva; a partir daí, o interior do botão floral tem sido, em geral, quase inteiramente consumido, e então, a mistura de excrementos fecais produzidos e os resíduos provenientes do botão floral são espalhados nas paredes da cavidade, sob a forma de uma camada fina e compacta. Esta camada fina é compactada através de um trabalho intenso de giro, executado pela larva quando se aproxima o final do seu último ínstar, isto é, terceiro ínstar. Nesta cela, a pupa (PRANCHA V-E) permanece pelo período de quatro a cinco dias e se transforma em adulto e, com dois a três dias de idade, escapa ou emerge do botão floral, através de um orifício de diâmetro igual ao seu corpo, feito com suas mandíbulas. No Brasil, os adultos são ativos das 6:00 às 18:00, sendo o período de maior atividade das 9:00 às 12:00 horas. Vinte e quatro horas após os botões florais serem danificados por orifícios de oviposição e/ou alimentação, apresentam-se com as brácteas abertas e amareladas. Para as cultivares brasileiras, os botões florais danificados pelo bicudo podem permanecer fixados a planta por um período de cinco a nove dias, quando então, caem no solo (PRANCHA V-F). O sintoma do dano causado por orifício de oviposição em botão floral de idade avançada é o surgimento da “flor sorvete”, isto é, as pétalas e cépalas não se abrem, ficando as extremidades terminais entrelaçadas e abalãozada (PRANCHA VI-A), formando uma estrutura semelhante a uma bola de sorvete. As maçãs pequenas quando danificadas por orifício de oviposição caem no solo; enquanto que as firmes, mesmo danificadas permanecem na planta. Dependendo do número de lóculos danificados, as maçãs poderão abrir um ou mais lóculos ou mesmo nenhum (PRANCHA VI-B). A redução na produtividade de algodão herbáceo em rama na Paraíba e Pernambuco causado pelo bicudo varia de 54 a 87%. Elevadas umidade do solo e temperatura ambiente em torno de 27oC, favorecem a multiplicação do bicudo. 14 O período crítico compreende desde o aparecimento dos primeiros botões florais até o surgimento dos primeiros capulhos; o nível de controle estabelecido para o bicudo do algodoeiro é de 10% de botões amostrados com orifícios de oviposição e/ou alimentação (Ramalho et al., 1990). PERCEVEJO RAJADO - Horcias nobilellus (Bergman) (Heteroptera: Miridae) Pequenos percevejos com asas de coloração avermelhada, com manchas brancas ou amarelas; a porção anterior da cabeça e do ventre apresenta-se amarela e o dorso com desenho em forma de “V”. Estudos realizados por Sauer (1942) à 25oC, demonstraram que a duração média do ciclo biológico do percevejo é de 28 dias (ovo: 12 dias e ninfa: 16 dias, durante o qual são verificados 5 ínstares); longevidade varia de 16 a 30 dias; período de oviposição de 19 dias; número médio de ovos/fêmea/dia é 4 e a produção média de ovos/fêmea é 71. Os danos são caracterizados pela abscisão das estruturas reprodutivas, apresentando as maçãs deformadas, as quais são denominadas “bico de papagaio”. O período crítico se inicia no florescimento e vai até o período de frutificação; o nível de controle é de 20% de plantas atacadas. PERCEVEJO MANCHADOR - Dysdercus spp. (Heteroptera: Pyrrhocoridae) Os adultos apresentam apêndices e cabeça de coloração escura, medem cerca de 15 mm de comprimento, possuemno tórax três listras brancas situadas nas bases das pernas e apresentam asas de coloração que varia do castanho-claro ao escuro. O ciclo biológico ocorre ao redor de 45 dias (ovo: 10 dias e ninfa: 23 a 35 dias); pré-oviposição de 5 a 12 dias. A cópula dura em média 3 dias, ficando o casal em posição oposta durante o ato. Cada fêmea deposita em média 400 ovos (Zucchi et al.,1993). Os danos são caracterizados pela queda e má formação das maçãs (bico de papagaio) principalmente quando atacados ainda jovens e bem como frutos com aberturas defeituosas e os capulhos com manchas nas fibras. Para o período crítico ver percevejo rajado. 15 AMOSTRAGEM DE PRAGAS O estabelecimento da necessidade de controle é a primeira condição para se iniciar o controle de uma determinada praga em uma cultura (Chiarappa, 1971; Stern, 1973), principalmente se considerar a grande habilidade do algodão em tolerar ou compensar os danos provocados pelos artrópodos. Na literatura existem vários trabalhos que demonstram a tolerância do algodoeiro a reduções foliares em diferentes estágios fenológicos (Garcia et al.,1977; Falcon & Smith, 1973; Silva et al., 1980), remoção (Beltrão et al., 1990; Beltrão et al., 1992) e abscisão de estruturas frutíferas (Falcon & Smith, 1973; Santos & Marur, 1980). Assim, os danos causados pelas pragas na agricultura devem ser avaliados cuidadosamente em cada caso particular, uma vez que as diferenças nas práticas agrícolas e nas condições ambientais influenciam marcadamente a ação dos artrópodos e a reação das plantas a essas pragas (Matthews, 1984). Este fato é importantíssimo no manejo de pragas, pois assim se pode tolerar um número de artrópodos que servirá de alimento para outros benéficos, sem o comprometimento da produção (Bleicher, 1990). Desta forma, tomadas de decisão que visem aumentar e preservar as populações de inimigos naturais dentro do agroecossistema algodoeiro, são ações promissoras, técnica e ecologicamente viáveis e poderão resultar em grande economia para os cotonicultores, em melhoria na qualidade do meio ambiente e na redução dos problemas de saúde pública decorrentes do uso indiscriminado de produtos químicos. Portanto, é necessário que o cotonicultor esteja apto em reconhecer as pragas e seus inimigos naturais que venham a ocorrer durante o ciclo da cultura, realizando amostragens periódicas na lavoura, para uma tomada de decisão inteligente que seja econômica, social e ecologicamente indicada para as condições de sua empresa (Silva et al., 1997). Para que a amostragem atinja a eficiência esperada, faz-se necessário que sejam observados aspectos importantes, tais como o que, onde, como e quando amostrar, de modo que, a avaliação seja capaz de expressar, de forma mais aproximada, a real densidade populacional da praga na cultura. Ao se levar em consideração o que amostrar, é definido se a amostragem será realizada pela avaliação populacional da praga considerada ou em função dos seus danos (diretos e indiretos). A localização da amostragem (onde amostrar), é definida em função do habitat do inseto em relação à região da planta preferencial para o seu desenvolvimento. Essas medidas podem ser exemplificadas, respectivamente, pla 16 avaliação do curuquerê do algodoeiro, o qual é avaliado, segundo Bleicher et al. (1982), em cada planta, na terceira folha, contada a partir do ápice para a base; e do bicudo que é amostrado verificando-se um botão floral de tamanho médio (Ramalho et al., 1990), tomado aleatoriamente, na metade superior da planta, a fim de verificar a presença ou não de orifícios de oviposição e/ou alimentação. Como amostrar envolve três aspectos básicos da amostragem: o tamanho da amostra, que se refere ao número de amostras/área; o tipo do caminhamento, que diz respeito à forma de deslocamento na área a ser amostrada e o uso de ficha de amostragem. No caso do algodoeiro, as amostragens deverão ser feitas tomando-se aleatoriamente 100 plantas em talhões com até 100 ha, em área homogênea, através do caminhamento em ziguezague (Figura 1). A ficha de amostragem (Figura 2) deverá ser preenchida, anotando-se sobre o número correspondente a planta examinada e somente quando necessário, na célula pertencente à coluna da praga ou dos inimigos naturais. Em relação a quando amostrar, os dois principais aspectos a serem levados em consideração são o período crítico e a freqüência de amostragem. O primeiro é definido para cada praga e a fase do desenvolvimento da cultura que é suscetível ao seu ataque. No caso do pulgão do algodoeiro, essa fase se extende da germinação ao aparecimento do primeiro capulho. A frequência determina o intervalo de cada avaliação da praga, devendo ser realizada a cada cinco dias. Figura 1. Caminhamento para amostragens de pragas do algodoeiro. 1 2 3 4 25 50 75 85 100 95 Início da amostragem Fim da amostragem 17 No da planta Amostrada T R I P E S P U L G Õ E S C U R U Q U E R Ê < C U R U Q U E R Ê > B I C U D O L A G A R T A M A Ç Ã S R O S A D A Á C A R O S P E R C E V E J O S I N p U L G Õ E S * 01 02 03 04 05 06 07 08 09 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 81 82 83 84 85 86 87 88 89 90 91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 *Predadores: joaninhas, sirfídeos, lixeiro e aranhas. *Parasitóides: pulgão mumificado por L. testaceipe Figura 2. Ficha para amostragem de pragas do algodoeiro e seus inimigos naturais. MIP Algodão 18 ESTRATÉGIAS DE CONTROLE As principais estratégias de controle de pragas de algodão no Brasil incluem: a) manipulação de cultivares; b) controle biológico por parasitóides, predadores e patógenos; c) controle cultural; d) controle climático e e) controle químico atravésde inseticidas e acaricidas seletivos (Ramalho, 1994). A manipulação de cultivar será incluída dentro do controle cultural, por razões didáticas. MANIPULAÇÃO DE CULTIVAR E PLANTIO A utilização de cultivares de ciclo curto tem sido sugerida por diversos pesquisadores na tentativa de se reduzir o tempo de exposição das plantas a colonização e a infestação, principalmente de pragas como a broca, bicudo, lagarta- das-maçãs e lagarta rosada, cujas fases imaturas do ciclo biológicoocorrem internamente na planta e cada qual sincronizado com determinado tipo de estrutura. No Brasil, esta prática evidenciou-se quando o bicudo foi introduzido na região Nordeste (EMBRAPA, 1985; Ramalho, 1994). Desta forma, sugere-se a utilização de cultivares produtivas de algodão de ciclo curto (Ramalho & Gonzaga, 1990c; Ramalho et al., 1990) e uniformidade da época de plantio (Bleicher & Jesus, 1983; Bleicher et al., 1979; Cruz & Passos, 1985; Ramalho et al., 1989; Santos, 1989), sempre que possível, em áreas e períodos comprovadamente com menor incidência de pragas, visando quebrar a sincronia entre a fonte alimentar da praga e sua ocorrência, além de possibilitar a antecipação da colheita e, consequentemente, à destruição precoce dos restos de cultura (Silva et al., 1997). BIOLÓGICO Existem diversas definições para o controle biológico de pragas na literatura. De acordo com DeBach (1964), o controle biológico pode ser definido como a ação de parasitóides, predadores e/ou patógenos que mantêm a densidade populacional de outros organismos em uma média mais baixa, em relação a que ocorreria na sua ausência. Moraes (1991) relatou que do ponto de vista ecológico, o controle biológico é uma parte do controle natural, o qual pode ser definido como a regulação 19 de um organismo dentro de certos limites, por qualquer combinação de fatores naturais classificados como abióticos e bióticos. Em programas de manejo de pragas, o controle biológico natural assume uma importância de grande relevância do ponto de vista econômico, ecológico e social, ou seja, aquele que ocorre sem a interferência do homem. Entretanto, o aplicado pode também ter muito valor, o qual engloba a introdução e a manipulação de inimigos naturais pelo homem, visando à redução de danos causados por pragas a níveis toleráveis (Bosch et al. 1982). No Brasil, o incremento e conservação de inimigos naturais nativos são particularmente promissores, porque muitos agroecossistemas algodoeiros, principalmente aqueles da região Nordeste têm um complexo muito rico de artrópodos benéficos e microorganismos entomógenos que ocorrem naturalmente nos seus ecossistemas agrícolas (Ramalho et al.,1989). Entomologistas como Pyenson (1938); Chiavegato (1972); Bleicher et al. (1979); Silva (1980); Campos (1981); Bleicher & Jesus (1983); Cruz & Passos (1985); Ramalho et al. (1989); Santos (1989); Ramalho et al. (1993) têm demonstrado a importância ecológica e econômica do uso de parasitóides e predadores como tácticas para serem utilizadas dentro do controle integrado de pragas do algodoeiro no Brasil. Dentre os principais insetos entomófagos associados a esta cultura no Nordeste do Brasil, destacam-se a joaninha (Cycloneda sanguinea), o besouro Calosoma spp., Paederus spp., o bicho-lixeiro Crysoperla externa (PRANCHA VI-C, D, E e F), Chrysopa sp., Geocoris spp., Podisus nigrispinus (PRANCHA VI-A, B e C), os braconídeos (Bracon vulgaris e outros Bracon spp.) (PRANCHAS VII-D, E e F; VIII-A), os chalcidídeos (Brachymeria spp.), os icheneumonídeos (Netelia spp.), o microhimenóptero parasita de ovos (Trichogramma spp.) (PRANCHA VII-B, C, D, E e F; IX-A e B), os aphidídeos (Lysiphlebus testaceipes) (PRANCHA IX-C), os eulofídeos (Euplectrus comstockii), as vespas (Polistes spp.) (PRANCHA IX-D), os piteromalídeos (Catolaccus grandis) (PRANCHA IX-E e F; X-A e B), os sírfídeos (Pseudodoros clavatus) (PRANCHA X-C e D), as aranhas caranguejeiras (Mysumenopsis guyannensis, Synaemopsis rubropunctatus, Xysticus spp.), e as aranhas que tecem teia (Lycosa spp.). No Nordeste, Bleicher & Jesus (1984) encontraram o minúsculo percevejo predador (Orius spp.), tesourinhas (Euborellia annulupes) (PRANCHA X-E, F; XI-A), taquinídeos e cicindelídeos desempenhando importante função no controle de lepidópteros-praga do algodão. Numerosos estudos (Muesebeck, 1937; Mendes, 1938; Sauer, 1946; Berry, 1951; 20 Campos, 1981; Silva, 1980; Ramalho & Silva, 1993) descreveram a função dos inimigos naturais na regulação dos problemas de pragas do algodoeiro brasileiro. Existem várias referências na literatura demonstrando a importância dos entomopatógenos no controle das pragas do algodoeiro. A eficiência da bactéria Bacillus thuringiensis no controle do curuquerê e da lagarta-das-maçãs tem sido demonstrada por Figueiredo et al. (1960); Campos (1981); Bleicher & Jesus (1983); Moreira & All (1995). Pesquisadores concentraram esforços na utilização da bactéria Pseudomonas aeruginosa (Lima et al., 1962; Lima et al., 1963) e do vírus da poliedrose nuclear (Andrade, 1981, Andrade & Habib, 1981, 1982 e 1983; Andrade et al., 1982) contra o curuquerê. Em relação ao fungo Beauveria bassiana, resultados interessantes foram demonstrados no controle de lagartas de Heliothis spp. (Moreira & All, 1995). Entretanto, a maioria dos trabalhos utilizando B. bassiana tem sido realizado visando o controle do bicudo (PRANCHA XI-B), cuja ocorrência em condições naturais tem sido registrada com certa frequência, enzooticamente ou provocando epizootias (Andrade et al., 1984; Camargo et al., 1984; Pierozzi Junior & Habib, 1993). Estudos sobre a suscetibilidade do bicudo (McLaughlin, 1962; Camargo et al., 1985), viabilidade dos esporos (Batista Filho & Cardelli, 1986) e a eficiência (Gutierrez, 1986; Coutinho & Oliveira, 1991; Almeida & Diniz, 1997) a fungos entomopatogênicos também têm sido executados. O curuquerê do algodoeiro também é alvo de infecção de B. bassiana (Miranda, 2004) (PRANCHA XI-C). O impacto de Metarhizium anisopliae nas populações do bicudo (PRANCHA XI-D) foi reportado por Jamarillo & Alves (1986); Oliveira (1991); Almeida & Diniz (1997); Almeida (1998). Dentre os vários agentes de controle biológico, o parasitóide Trichogramma pretiosus e o predador Podisus nigrispinus encontram-se disponíveis para sua utilização contra lepidópteros (curuquerê e lagarta-das maçãs) e o parasitoide Catolaccus grandis contra o bicudo, através de liberações inundativas. Quanto a T. pretiosus, sugere-se efetuar uma vez por semana, liberações inundativas de 100.000 ovos parasitados/ha, no momento do aparecimento na lavoura de lepidópteros-praga, tais como: curuquerê e lagarta-das-maçãs (Almeida, 1996; Silva et al. 1997). A liberação deverá ser feita com 15 cartões de 2 pol2 contendo ovos parasitados distribuídos em 15 pontos equidistantes/ha (Almeida & Silva, 1996). A tecnologia da produção massal de Trichogramma pretiosum, encontra-se a disposição de cotonicultores na Embrapa Algodão (PRANCHA VII-A,B,C E D). No caso do parasitóide C. grandis, as liberações inundativas deverão ser feitas semanalmente, 21 utilizando-se 700 a 1.000 fêmeas adultas/ha com 0 a 7 dias de idade (Ramalho et al., 2000). A primeira liberação de C. grandis visando o controle do bicudo deverá ser realizada no momento em que o nível de infestação da praga atingir 3% de botões florais atacados (orifícios de oviposição e/ou alimentação). No caso, do predador P. nigrispinus, sugere-se realizar semanalmente, liberações inundativas de 1.200 ninfas de quinto instar/ha desse predador no algodoal, sendo que a primeira liberação do predador deverá ser realizada logo que surgirem as primeiras lagartinhas na cultura. Com relação ao B. thuringiensis, deve-se efetuar pulverizações na dosagem comercial de 8 a 16 e 16 a 32 g i.a./ha, respectivamente, quando o curuquerê e a lagarta-das- maçãs atingirem o nível de controle. Deve-se ter bastante atenção para a presença de predadores (joaninhas, sirfídeos, bicho-lixeiro e aranhas) e parasitóides (vespinha: Lysiphlebus testaceipes) do pulgão na lavoura, obedecendo o nível de ação desses inimigos naturais (70% de plantas com predadores e/ou parasitóides). CULTURAL O controle cultural pode ser definido como a manipulação das diversas práticas de cultivo visando modificaro agroecossistema para torná-lo desfavorável ao desenvolvimento das pragas e ao mesmo tempo favorável ao desenvolvimento de seus inimigos naturais. A principal vantagem na adoção de medidas culturais para o controle de pragas, baseia-se no baixo custo requerido para sua implementação sendo, na maioria das vezes desnecessários gastos adicionais por se tratar simplesmente de pequenas modificações nas práticas agronômicas (Coopel & Mertins, 1977). Por outro lado, estas modificações nas práticas agrícolas podem alterar a atratividade e a suscetibilidade das plantas e do meio ambiente as pragas, ou mesmo agravar e criar novos problemas (Ramalho, 1994; Ramalho & Wanderley, 1996). Assim, o controle cultural deve ser encarado como método profilático de controle de pragas, devendo raramente ser empregado como estratégia principal e (Dent, 1991) e básica do MIP Algodão. No Brasil, as principais práticas culturais utilizadas para reduzir problemas de pragas na cultura do algodão herbáceo baseam-se naquelas revisadas por Newson & Brazzel (1968), sendo incorporadas e adaptadas às condições dos ecossistemas do algodoeiro do Brasil (Ramalho 1994). De acordo com Ramalho (1994), o controle cultural é constituído de tácticas, tais como: extensas áreas com datas de plantio uniforme; períodos livres de plantio do algodão; destruição de botões florais e maçãs 22 atacados e de hospedeiros alternativos; destruição antecipada e uniforme de restos culturais; uso de rotação de cultura com espécies de plantas que não sejam plantas hospedeiras das principais pragas do algodoeiro, isto é, que não sejam hospedeiras de artrópodos-praga que na sua ausência venham a atacar o algodoeiro. Conservação do Solo e Adubação Resultados de pesquisas têm mostrado que a falta de um ou mais nutrientes na planta hospedeiro faz com que aumente o dano causado por insetos e ácaros. Há também resultados de pesquisas mostrando, entretanto, que o excesso de um elemento no solo ou na adubação, por seu efeito direto ou, talvez, pelo desequilíbrio provocado no meio, pode contribuir para aumentar os prejuízos causados pelas pragas as culturas agrícolas (Malavolta, 1981). Pesquisadores (Beckman, 1970; Leigh et al., 1970; ABD El-Fattah, 1975) têm demonstrado que o uso inadequado de fertilizantes, com destaque aos nitrogenados, dentre outros fatores, tem contribuído para aumentar a incidência de pragas na cultura do algodão. Jones (1976) relatou 40 casos em que o uso de nitrogênio resultou em aumento populacional de insetos e ácaros em diferentes culturas. As plantas hospedeiras contêm baixas quantidades de nutrientes essenciais necessários aos artrópodos herbívoros, particularmente proteínas e aminoácidos (McNeill & Southwood, 1978), induzindo-os a consumirem maior quantidade de tecido e/ou conteúdo celular vegetal, para compensarem sua baixa qualidade nutricional (Mattson, 1980; Slansky Júnior & Scriber, 1985). Entretanto, esta adaptação nem sempre é capaz de suprir as deficiências da inadequada fonte alimentar, influenciando sua sobrevivência. De acordo com Creighton (1938), a deficiência de cobre e zinco na cultura do algodão afeta negativamente a sobrevivência de A. argillacea (Tabela 1) aumentando, de forma significativa, sua taxa de mortalidade. Por outro lado, o aumento do consumo pelo inseto, implica na sua maior permanência sobre o hospedeiro, havendo maior exposição aos inimigos naturais (Slansky Júnior & Scriber, 1985). Certas espécies de insetos apresentam taxas de crescimento e consumo, e eficiência de utilização de alimento, variáveis em função dos teores de nutrientes contidos nas plantas, especialmente o nitrogênio (Panizzi & Parra, 1991) e quando a aplicação deste macronutriente no solo é suficiente para aumentar seu nível na planta, um aumento na alimentação do inseto e crescimento populacional deve ser esperado (Vrie & Delver, 1979; Vince et al. 1981, Archer et al. 1982) (Tabela 1). No caso do algodoeiro, todos os elementos devem ser 23 utilizados de forma balanceada e com precaução. A aplicação de nitogênio além do necessário, em determinado solo, poderá induzir um crescimento vegetativo acentuado da planta, tornando-a mais atrativa para certos insetos (Falcon & Smith, 1973; Frisbie et al., 1989). Desta forma, a utilização correta do solo, baseada em recomendações técnicas de preparo e adubação, constituem-se em ferramentas indispensáveis para manutenção da sua fertilidade e estrutura, contribuindo diretamente para formação de plantas vigorosas e, portanto, menos vulneráveis ao ataque de pragas. Tabela 1. Efeito do estado nutricional do algodoeiro sobre os insetos e ácaros. Artrópodos – praga Fertilizante Parâmetros Efeito Referências Alabama argillacea Zn e Cu* Desenvolvimento ( - ) Creigton (1938) Anthonomus grandis N População (+) Mistric Junior (1968) Aphis gossypii N População (+) Isley (1946) N + ArCa “ (+) McGarr (1942 e 1943) ArCa “ ( 0) “ Bemisia tabaci N População (+) Joyce (1958) Empoasca devastans N, P e K População ( 0) Parnell (1927) N Reprodução (+) Sloan (1938) Completa Desenvolvimento (+) Balasubramanian & Iyengar (1950) N “ (+) Joyce (1958) N “ (+) Jayaraj & Venugopal (1964) N+ P “ (+) “ P “ ( 0) “ Esterco bovino “ ( 0) “ Helicoverpa armigera N Reprodução (+) Fletcher (1941) Helcoverpa obsoleta N Reprodução (+) Gaines (1933) Helicoverpa zea N, P e K População (+) Adkisson (1958) N População (+) Kumar et al. (1982) N Peso larval (+) Zeng et al. (1982) Consumo (+) “ Desenvolvimento (+) “ Pectinophora gossypiella Completa Dano (+) El-Gabaly (1952) Tetranychus urticae N e S Desenvolvimento (+, 0) Maia & Busoli (1992) Reprodução (+, 0) “ Tetranychus pacificus N População (+) Leigh et al. (1970) Desenvolvimento (+) “ Eutetranychus orientalis N e S População (+) Rasmy & Hassib (1974) Predadores Coleomegilla maculata langi N, P e K População (+) Adkisson (1958) Crysopa “ “ (0) “ Geocoris punctipes “ “ (+) “ Hippodamia convergens “ “ (+) “ Nabis “ “ (0) “ Orius insidiosus “ “ (+) “ (0) Sem efeito; (+) Aumento e (-) Diminuição *Deficiência Fonte: Dale (1988) Adaptada. 24 Densidade de Plantio A manipulação do espaçamento pode ser utilizado em alguns casos para minimizar os danos provocados pelas pragas (President´s Science Adivisory Committee, 1965; National Academy of Sciences, 1969). O espaçamento pode afetar a taxa relativa de crescimento da cultura, e consequentemente a população e sobrevivência das pragas, influenciando sua busca por sítios de alimentação e oviposição. Assim, altas populações de plantas dentro das fileiras de algodão tendem a encurtar seu ciclo fenológico, reduzindo o tempo de exposição das estruturas reprodutivas (botões, flores e maçãs) ao ataque de pragas importantes e geralmente a um custo relativamente baixo (Smith, 1972). No Brasil, a densidade de 9 a 10 plantas/m da cultivar IAC 17 apresentou a melhor resposta de produção (Gutierrez et al. 1984), reduziu os prejuízos provocados pela broca da raiz, E. brasiliensis (Santos et al.,1989) e a quantidade de inseticidas destinados ao seu controle (Ramalho, 1994). Beltrão (1987), Beltrão & Cavalcanti (1989) e Beltrão & Silva (1989) demonstraram que altas densidades de plantio dentro das fileiras da cultivar CNPA Precoce 1, apresentava rápida frutificação e altas porcentagens de retenção de estruturas reprodutivas, sugerindo sua possível utilização para favorecer o escape da cultura ao ataque do bicudo. Por outro lado, altas densidades de plantio podem aumentar a infestação da lagarta-das-maçãs e percevejos (Nakano et al., 1981; USDA, 1981). A densidade de plantio deverá ser constituída de tal maneira que se tenha alta densidade de plantas dentro de fileiras e baixa entre fileiras, evitando o adensamentoexcessivo da cultura. Isto facilitará a penetração dos raios solares, a ação dos inimigos naturais especialmente dos parasitóides e bem como o deslocamento de gotas da calda do inseticida até o alvo biológico. Portanto, sistemas de cultivo, utilizando algodão adensado e ultra adensado, não é indicado, do ponto de vista de sustentabilidade. Catação de botões florais e maçãs caídos no solo A catação de botões florais é uma prática bastante antiga, desenvolvida nos Estados Unidos no início do século, visando o controle do bicudo (Coad & McGehee, 1917; EMBRAPA, 1985; Bleicher, 1989 e 1990). Burt et al. (1969) demonstraram que a catação e destruição de botões florais atacados pelo bicudo reduzem 25 significativamente as populações de adultos do bicudo e o número de aplicações com inseticidas. No Brasil, vários estudos foram realizados sobre a viabilidade desta técnica e comprovaram que a catação pode reduzir até 60% das pulverizações com inseticidas, dependendo das condições ambientais, da cultivar e da proximidade de outros campos, com seu respectivo controle de pragas (Beltrão et al., 1997); desta forma, em pequenas áreas de algodão e abundância de mão-de-obra, sugere-se que se faça a coleta semanal de todos os botões florais e maçãs caídas no solo, a partir do início da queda dos botões florais. Para grandes áreas, sugere-se coletar as estruturas reprodutivas caídas no solo, dentro das bordaduras (15 a 20 fileiras ao redor do campo) e com frequência de uma a duas vezes por semana, dependendo do nível populacional da praga (Bleicher, 1990; Busoli, 1991; Cruz, 1991; Santos, 1991a). As estruturas reprodutivas coletadas deverão ser mantidas em pequenas caixas teladas, até a emergência dos adultos do bicudo e de seus parasitóides. Os adultos do bicudo serão destruídos e os parasitóides liberados na área de algodão. Destruição dos Restos de Cultura A destruição dos restos de cultura visando reduzir populações remanescentes de pragas é bastante antiga. Chapman & Cavit (1937), aplicando esta táctica, conseguiram reduções acima de 75% na população da largarta rosada. No Brasil, diversos pesquisadores (Bleicher et al., 1979; Nakano et al.1981; Cruz & Passos, 1985; Ramalho et al., 1989; Santos, 1989; Ramalho, 1994; Ramalho & Wanderley, 1996) têm sugerido a destruição de restos de cultura, inicialmente empregada no Estado de São Paulo, visando o controle da broca da raiz, do bicudo, da lagarta-das-maçãs e da lagarta rosada. Em decorrência dos resultados positivos alcançados, foi criado um Decreto Estadual SP, no 19.594-A, de 27/7/1950, que estabelece a data limite para destruição dos restos culturais do algodoeiro naquele Estado. Com o surgimento do bicudo, esta prática tornou-se obrigatória na maioria dos estados brasileiros, onde se cultiva esta malvácea. Assim, imediatamente após a colheita, deve-se proceder à destruição dos restos de cultura, tais como: raízes, caules, botões florais, flores, maçãs, carimãs e capulhos não colhidos, respectivamente, através do arranquio e/ou coleta, para destruição e incorporação ao solo. A destruição dos restos de cultura no final da safra visa quebrar o ciclo biológico das pragas, através da eliminação dos sítios de proteção, alimentação e reprodução (Silva et al., 1997). 26 Rotação de Cultura O cultivo alternado do algodoeiro com outras culturas, as quais não temham pragas comuns, além de contribuir para a redução de pragas específicas associadas a uma delas, concorrem favoravelmente para a melhoria das condições físicas e químicas do solo (Silva et al., 1997). Neste sentido, entomologistas têm sugerido sua utilização (Bleicher et al., 1979; Cruz & Passos, 1985; Santos, 1989; Ramalho, 1994), principalmente em áreas desequilibradas, pelo uso indiscriminado de inseticidas, como forma de reestabelecer o equilibrio. A utilização frequente da rotação de culturas, geralmente conduz a quatro importantes resultados, os quais são: 1) morte de pragas por inanição; 2) reestabelecimento da matéria orgânica no solo; 3) estímulo à competição intraespecífica das pragas e 4) aumento na capacidade de retenção da umidade do solo (McNew, 1972). Bleicher & Jesus (1983) recomendaram a rotação do algodoeiro com mamona. CLIMÁTICO No Nordeste, principalmente na região do Seridó, as condições edafoclimáticas exercem papel preponderante na redução populacional de pragas. A insolação excessiva aumenta a taxa de evaporação d’água presente no solo e nos insetos, funcionando como fator negativo para a sua sobrevivência, principalmente da broca e do bicudo (Ramalho & Santos, 1991; Ramalho, 1994). De acordo com Ramalho & Gonzaga (1990 a,b), Ramalho et al. (1993), Ramalho & Silva (1993), Ramalho (1994), o controle climático através da dessecação se constitui no principal fator de mortalidade natural de larvas, pupas e adultos pré-emergentes do bicudo. De acordo com Ramalho (1994), a dessecação de larvas e pupas, juntamente com o controle biológico natural, a manipulação de cultivar e a adoção de práticas culturais têm reduzido o bicudo a uma condição de praga menos severa, raramente necessitando o emprego de inseticidas químicos para o seu controle. QUÍMICO: INSETICIDAS E ACARICIDAS SELETIVOS Muito tem se pesquisado para o desenvolvimento de tecnologias alternativas para o controle de pragas, entretanto, para algumas pragas à utilização de inseticidas e acaricidas seletivos aos inimigos naturais se constitui uma das estratégias de 27 grande relevância para o MIP Algodão. Lincoln & Graves (1978) enfatizaram a importância do método químico para o controle do bicudo nos EUA e Bleicher & Almeida (1991) destacaram ser predominante o uso de produtos químicos na supressão dessa praga. Pacheco et al. (1995) relataram que, para a broca E. brasiliensis, a utilização de inseticidas é a estratégia mais eficiente. De acordo com Adan (1977), seminários regionais promovidos pela FAO e OMS, sobre o emprego de defensivos agrícolas na América Latina, África e Ásia, mostraram que 52% dos fracassos identificados no uso de defensivos agrícolas se deveram as seguintes causas: falha na seleção ou uso do equipamento; calibração inadequada; inabilidade para controlar o tamanho e colocação de partículas de pulverização; faixa de aplicação inadequada; volume errado de calda aplicado por unidade de área tratada; falta de conhecimento referente à avaliação prática da cobertura da superfície-alvo e deriva; efeitos adversos de condições ambientais afetando a aplicação; falha no embandeiramento nas aplicações aéreas; escolha incorreta de bicos; procedimento inadequado de misturas no campo; manutenção deficiente dos equipamentos. Estas causas conduziram às seguintes consequências: custo de aplicação extremamente alto; desperdício de produtos caros e potencialmente perigosos; intoxicações; destruição de organismos benéficos; danos à cultura devido à deriva e manuseio errado de produtos; resíduos excessivos; contaminação ambiental. Os cotonicultores brasileiros geralmente ao utilizarem inseticidas e acaricidas contra as pragas não levam em consideração os efeitos colaterais que estes produtos podem causar aos artrópodos benéficos presentes no agroecossistema (Campos & Gravena, 1984). Estes efeitos foram reportados por Ridgway et al. (1967); Dinkins et al. (1969); Carruth & Moore (1972); Shepard et al. (1972); Wilkinson et al. (1975); Van Steenwyk et al. (1976), os quais enfatizaram como principais problemas causados pelo mau uso dos defensivos agrícolas, a ressurgência de pragas principais; o surgimento de pragas secundárias atingindo o status de principais; o aparecimento de raças resistentes e elevação do número de pulverização de produtos químicos. Deve-se lembrar que a resistência dos insetos e ácaros aos inseticidas e acaricidas, respectivamente, tem sido um dos fatores maislimitantes ao uso dos defensivos químicos (Greene & Workamn, 1971; Franco et al., 1978; Nakayama et al., 1979; Luttrell et al., 1994). Problemas de alterações morfológicas nas folhas do algodoeiro, aumento de número de ramos vegetativos, retardamento da maturidade dos frutos e redução da 28 produção tem sido atribuído a alguns organofosforados (Mcllrath, 1950; Fowler, 1956; Roark et al., 1963; Bradley & Corbin, 1974). Por outro lado, tem sido enfatizado o efeito fitotônico do inseticida causando incremento do rendimento do algodoeiro (Cothren et al., 1984; Pfrimmer, 1984; Schuster et al., 1985). O efeito de inseticidas e inseticidas-acaricidas de largo especto sobre agentes de controle biológico tem sido a principal causa dos desequílibrios no agroecossistema algodoeiro (Ridway et al. 1967; Bartlett, 1968; Laster & Brazzel, 1968; Kinzer et al., 1976). O uso excessivo de piretróides pode induzir a resistência a Heliothis (Jackson, (1989) e a ácaros (Oliveria & Vecesi, 1983; Chiavegato et al., 1983; Gravena et al., 1988). Entretanto, tem sido observado que os piretróides são, em geral, mais tóxicos a insetos-praga que a alguns insetos benéficos (Plapp Junior & Bull, 1978; Rajakulendran & Plapp Junior, 1982; Yu, 1988), sendo verificado também exceções (Pree & Habley, 1985). A diversidade de informações sobre a eficiência dos produtos químicos utilizados para controle das diversas pragas da cultura do algodão está relacionada principalmente aos aspectos comportamentais e biológicos dos insetos, assim como as técnicas de manipulação e características intrínsecas dos produtos químicos e manejo da cultura. É de suma importância que os cotonicultores tenham consciência que os inseticidas e acaricidas devem ser selecionados para uso em programas de manejo de pragas com base na total segurança para o homem, animais domésticos, organismos não alvo, com efeito, positivo sobre a qualidade ambiental, assim como, para eficiência específica contra as espécies alvo (Ramalho, 1994). As informações do seu uso devem ser baseadas na amostragem e no período crítico da cultura ao ataque da praga e que as tomadas de decisões de controle sejam em função das densidades populacionais da praga e do seu nível de controle. Os níveis de ação devem considerar os predadores dos pulgões e o parasitóide de ovos Trichogramma spp., evitando aplicações desnecessárias com inseticidas e acaricidas e promovendo o máximo de seletividade ecológica. O controle químico somente deverá ser efetuado quando necessário, ou seja, quando as pragas atingirem o nível de controle dentro da fase crítica das plantas ao ataque de cada praga alvo. Até o aparecimento das primeiras maçãs firmes (cerca de 70 dias), não devem ser utilizados inseticidas piretróides. A escolha dos inseticidas e acaricidas deverá contar com a participação efetiva do profissional de agronomia e levar em consideração a efetividade, seletividade a inimigos naturais, toxicidade, 29 poder residual, período de carência, método de aplicação, formulação e preço. A adoção desses critérios de seleção conduzirão a diversos benefícios, tanto para o agricultor, como para a sociedade. Para o agricultor, a utilização do MIP resultará economia nos custos de produção e melhoria na sua qualidade de vida, enquanto que para a sociedade à garantia de preservação da biodiversidade, dos mananciais hídricos (lençóis freáticos, poços, açudes e rios) e à certeza na redução de resíduos nos subprodutos do algodão (Silva et al., 1997). Na Tabela 2, encontram-se listados alguns princípios ativos de inseticidas e acarticidas resgistrados pelo Ministério da Agricultura e do Abastecimento, destinados ao controle das principais pragas do algodoeiro. 30 Tabela 2. Insetos-praga e inimigos naturais, nível de controle, ingrediente ativo, concentração do ingresiente ativo, dosagem e nível de ação recomendados para o controle. Insetos-praga e Inimgos Naturais Nível de controle1 Ingrediente Ativo2 Concentração de Ingrediente ativo (g/l)*(g/kg)** Dosagem (g.i.a/ha) Nível de Ação3 Broca - Carbofuran 350** 3.000 a 4.000 - Tripes 70&% de plantas atacadas TiometonP DimetoatoO MonocrotofósO 250* 400* 400* 175,00 126,00 250,00 - Pulgão 70% de plantas c/ colônias PirimicarbP TiometonP MonocrotofósO 500** 250* 400* 37,5 a 50,00 65,50 120,00 - Curuquerê 22 ou 53% das plantas atacadas por lagartas >ou<15mm DiflubenzuronP ClofluazuronP TefluazuronP TefubenozideP EndosulfanP TriclorfonO AbamectinO MonocrotofósO CyfluthrinO 250** 50* 150* 340* 350* 500* 18* 400* 50* 12,50 25,00 a 37,50 7,50 300,00 350,00 450,00 5,40 120,00 25,50 - Bicudo 10% da plantas com botões florais danificados (orifício de oviposição e/ou alimentação) EndosulfanP PhosmetP CarbarylP MalathionO BetacyfluthrinO CyfluthrinO CypermethrinO DelmatetrinaO Labdacyhalothrin O 350* 500** 850** 480* 100* 125* 50* 200* 250* 25* 50* 50* 525,00 750,00 1.400,00 1.400,00 750,00 7,50 25,00 7,50 7,50 10,00 10,00 15,00 - Lagarta-das- maçãs 13% de plantas com lagartas EndosulfanP CarbarylP AcephateP DeltametrinaO 350* 850** 480* 750** 750* 25* 50* 525,00 a 700,00 1.200,00 1.200,00 750,00 750,00 10,00 10,00 - Lagarta rosada 11% das plantas com maças danificadas CarbarylP DetametrinaO CypermethrinO CyfluthrinO BetacyfluthrinO 850** 480* 25* 50* 250* 200* 50* 125* 1.200,00 1.200,00 7,50 7,50 37,50 37,50 25,00 7,50 - Ácaros 40% de plantas com colônia AbamectinP PropagiteP Bromopropilato 18* 720* 500* 7,20 681,00 250,00 - Percevejos 20% de plantas atacacas EdosulfanP DimetoatoP 350* 400* 525,00 126,00 - Predadores e Parasitóides - - - - 71% de planta c/ Inimigos naturais Preferencial (P); Opcional (O) Fonte: 1Bleicher & Jesus (1983); Ramalho at al. (1990); Ramalho (1994); Santos (1989); 2EMBRAPA/CNPA (1994); 3Ramalho (1994). 31 PRANCHA I A - Maçã a tacada por S. frugiperda B – Cochonilha Phenacoccus solenopsis C - Ponteiro com P. solenopsis D - Ataque severo de solenopsis E - Larva da broca atacando F - Vermelhão ocasionado pela a raiz broca 32 PRANCHA II A - Caule e raiz atacados pela branca B - Planta atacada pela lagarta rosca C - Pulgões do algodoeiro D - Encarquilhamento causado pelo pulgão E - Ovos e ninfas da mosca branca F - Folha com adultos de mosca 33 PRANCHA III A - Ovos do curuquerê-do-algodoeiro B - Lagarta do curuquerê-do- algodoeiro C - Folhas de algodão danificadas D - Folhas atacadas pelo besouro pelo curuquerê-do-algodoeiro amarelo E - Ácaro vermelho do algodoeiro F - Folha atacada pelo ácaro vermelho 34 PRANCHA IV A - Adulto e ninfa do mosquito B - Folhas atacadas pelo mosquito C - Lagarta rosada D - Maçã atacada pela lagarta rosada E - Adulto da lagarta-das-maças F - Adulto do bicudo-do-algodoeiro 35 PRANCHA V A - Ovo do bicudo-do-algodoeiro B - Botão floral com orifício de alimentação do bicudo C – Botão floral com orifício de D - Larva de bicudo-do-algodoeiro oviposição do bicudo E - Pupa do bicudo-do-algodoeiroF - Botões florais caídos no solo 36 PRANCHA VI A - Flor balão caudada pealo B - Maçã danificada por larva do bicudo- do-algodoeiro bicudo-do- algodoeiro C - Adulto de Chrysoperla externa D - Ovo de Chrysoperla externa E - Larva de Chrysoperla externa F - Pupa de Chrysoperla externa 37 PRANCHA VII A - Adulto de Podisus nigrispinus B - Ninfas de Podisus nigrispinus predando a lagarta do curuquerê predando a lagarta do cruruquerê C - Postura do predador P. nigrispinus D - Fêmea de Brancon vulgaris parasitando larva do bicudo E - Ovos de Bracon vulgaris sobre F - Larva de Brancon vulgaris larvas do bicudo alimentando-se de larva do bicudo 38 PRANCHA VIII A - Pupa de Bracon vulgaris B - Emergência de Adulto de Trichogramma pretiosum C - Ovos do curuquerê parasitado D - Ovos de Spodoptera frugiperda (preto) e não parasitado (verde- parasitados azulado) E - Laboratório produção massal do F - Coleta de Sitotroga cerealella Hospedeiro alternativo de (hospedeiro alternativo de Trichogramma Trichogramma) 39 PRANCHA IX A - Liberação de adultos de B - Liberação de pupas de Trichogramma pretiosum Trichogramma pretiosum C - Pulgões parasitados por D - Adulto de Polistes sp. Lysiphlebus testaceips E - Fêmea de Catolaccus grandis F - Ovos do parasitóide Catolaccus parasitando larva do bicudo grandis sobre a larva do bicudo Foto: Morales-Ramos. 40 PRANCHA X A- Larva de Catolaccus grandis B - Pupa de Catolaccus grandis C - Larva de sirfídeo D - Pupade sirfídeo E - Adulto de Euborellia annulipes F - Postura de Euborellia annulipes predando larva de bicudo 41 PRANCHA XI A - Ninfas de Euborellia annulipes B – Bicudo adulto parasitado por Beuaveria bassiana C - Larva do curuquerê parasitada por D - Bicudo adulto parasitado por Beauveria bassiana Metarhizium anisopliae 42 LITERATURA CONSULTADA ABD EL-FATTHAH, M.I. Effect of certain practices on the infestation of cotton by Aphis gossypii (Homoptera: Aphididae). I. Irrigation and nitrogen fertilization. Z. Angew Ent., v.78, p.85-190, 1975. ADAM, A.V. Importance of pesticide application equipment and related field practies in developing countries. In: WATSON, D.; BROWN, A.W.A. 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