Relatório Prática_Bioquímica Humana 2 (1)

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
BIOQUÍMICA HUMANA
	
RELATÓRIO 
01 e 02
	
	
	DATA:
______/______/______
RELATÓRIO DE PRÁTICA 
Vivian Tatiani Lima Lisboa /04121078
	NOME: Vivian Tatiani Lima Lisboa 
	MATRÍCULA: 04120330
	CURSO: Fisioterapia 
	POLO: Unama Ananideua 
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Claudeir Dias da Silva
	ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
A amilase salivar ou ptialina trata-se de uma hidrolise cuja função é degradar os carboidratos, em especial o amido. O amido começa a ser digerida na boca por ação da enzima α-amilase salivar (ptialina), que hidrolisa as ligações das cadeias do amido, dando origem à glicose, maltose e oligossacarídeos. A α-amilase salivar é produzida nas glândulas salivares (cavidade bucal) e responsável para o início da degradação dos carboidratos, catalisando a hidrólise das ligações da cadeia glicosídica do polissacarídeo amido. Nessa aula prática utilizamos uma técnica enzimática e uma técnica química, onde a hidrólise enzimática foi utilizada saliva e na hidrólise química foi utilizado ácido cloridríco.
Materiais utilizados: 
Vidrarias: Pipeta de vidro e tubos de ensaio.
Reagentes: Amilase salivar (saliva); Ácido Clorídrico; Lugol 2%; Solução de amido 1%; Água destilada; Banho Maria; Banho de Gelo;
Equipamentos: Pera de borracha, estante para tubos de ensaio, descarte de pepitas, termômetro, cronometro e pinça.
a) Qual a composição bioquímica do amido?
O amido é formado por uma cadeia composta por dois polissacarídeos: amilose, numa proporção de 20-15%, e amilopectina, numa proporção de 75-80%. A amilose é um polímero linear de D-glicose α-(1,4). A amilopectina é um polímero de D-glicose com ligações α-(1,4) e 5% de ramificações α-(1,6).
b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido?
Foi utilizado HCL (ácido clorídrico) para obter um meio ácido. Os ácidos têm a capacidade de degradar as ligações glicosídicas que formam o amido e causam a quebra da amilase salivar. As enzimas são proteínas e, de acordo com seu ambiente, apresentam características de desnaturação. Calor, temperatura, reação catalítica e substrato são todos
c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose.
A reação do iodo com as moléculas de amido resulta em uma cor azul que interage com a cadeia de amilose por possuir uma estrutura helicoidal. Na cadeia da amilopectina, o resultado será vermelho porque essa cadeia tem muitos ramos e a interação será menor.
Ao testar a atividade da enzima em um experimento, essa cor mudará conforme a hidrólise ocorre ao longo do tempo. Isso ocorre porque a maltobiose é um hidrolisado e reage negativamente com o iodo.
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico.
O método do biureto tem sido aplicado para determinar a concentração de proteína Apesar de ser rápido, utilizar reagentes de baixo custo e não apresentar grande variação da absortividade específica para diferentes proteínas, este método não é muito sensível, como foi destacado por diversos autores, colocando-o em grande desvantagem, em relação a outras metodologias, e por isto tem sido, ao longo dos anos, substituído por métodos mais sensíveis. Mesmo assim, o método de biureto continua sendo recomendado para a determinação da concentração de proteínas totais. Entre 1 minuto e 2 minutos já percebemos a intensificação de cor onde fica violeta, identificando a presença da ptn, apresenta do ovobulmina que é a proteína do ovo, indicativo desses agrupamentos em acabamentos que interagem com biureto, com água com controle negativo, reação com as proteínas do ovo.
	REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Tubo para glicose adicionar 1ml de glicose adicionar 1,5 ml de ácido clorídrico HCL
Homogeneizar Adicionar 0,5 ml do reativo de Seliwanoff Agitar os tubos e levar ao banho maria até visualizar o resultado observar a coloração após 2 minutos em banho maria o’ tubo da glicose permaneceu inalterado. Confirmando que ela não é uma cetose. Não tem produção do furfurol e nem reação com o resorcinol.
Tubo para frutose adicionar 1 ml de frutose adicionar 1,5 ml de ácido clorídrico HCL
Homogeneizar Adicionar 0,5 ml do reativo de Seliwanoff Agitar os tubos e levar para o banho maria até visualizar o resultado observar a coloração após 2 minutos em banho maria o tubo da frutose ficou vermelho. Houve alteração na cor. Indica reação do resorcinol com o furfurol. Indica que ela é uma cetose.
Reagentes: Solução de HCL 0,1 Glicose 1% Frutose 1% Reativo de Seliwanoff
Equipamentos:
1 tubo para frutose 1 tubo para glicose 1 tubo para água (serve de controle negativo)
Banho maria temperatura em torno de 70 graus Becker Pera de borracha Pipeta.
2. Responda as Perguntas:
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff?
Aldoses e cetoses são grupos que são identificados dentro dos carboidratos
Aldoses são grupos de carboidratos simples. Cetoses são monossacarídeos que contém grupo. Essa reação é chamada de Seliwanoff. Onde utiliza o reativo Seliwanoff.
b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada.
Serve de controle negativo
c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff?
Aldoses e cetoses são grupos que são identificados dentro dos carboidratos. Aldoses são grupos de carboidratos simples, os cetoses são monossacarídeos que contém grupo cetona, essa reação é chamada de seliwanoff. Onde utiliza o reativo seliwanoff. Essa reação se dá porque as cetonas reagem com ácidos fortes. Iremos utilizar o ácido clorídrico e ao reagir com esses ácidos fortes esse composto produz furfural reage com resorcinol. O resorcinol é um composto derivado da ureia que está presente no reativo de seliwanoff.
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose e cetoses.
Confirmamos que a frutose é uma cetose. Na reação ocorre a produção do furfural e tem a reação com resorcinol dentro de seliwanoff e conseguimos perceber pela coloração
vermelha intensa do tubo com frutose.
	PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
É um procedimento realizado para verificar a influência de sais de metais pesados e de ácidos fortes sobre a solubilidade da proteína, bem como a influência do Ph sobre a carga liquida da molécula polipeptídica.
Materiais utilizados:
Vidrarias: Pipeta de vidro e tubos de ensaio
Reagentes: Ácido tricloroacético a 20%, acetato de chumbo 20%, ovoalbumina 10%
Equipamentos: Pera de borracha, estante para tubos de ensaio.
2. Responda as Perguntas:
a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados?
Na precipitação da ovoalbumina com ácido forte e metal pesado, forma um liquido leitoso banco indicando a precipitação e formação de alguns grumos de proteína. Antes da precipitação conseguíamos visualizar a concentração da solução, mas depois a solução ficou turva mostrando que houve precipitação da proteína pelo áciso.
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação.
A ovoalbumina foi desnaturada por isso ela precipitou. As proteínas podem ser desnaturadas de acordo com as condições de Ph e temperatura do meio quando essas variáveis se alteram demais. A proteína tende a perder a sua função e a sua formação.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Em PH situado do lado alcalino do seu ponto isoelétrico, algumas proteínas combinam-se com cátions de metais pesados formando proteínas insolúveis. Os sais de metais pesados reagem com seu cátion com o ânion da proteína (COO) formando proteinatos, são insolúveis e por isso precipitam.Os ácidos fortes desnaturam (precipitam) as proteínas, transformando-as em meta proteínas que são solúveis.
Conclui-se que a temperatura é um agente que pode ser utilizado para diminuir a solubilidade de uma proteína.
	PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
proteína é uma biomolécula muito importante. As proteinas são classificadas de acordo com o seu ponto isoelétrico e de pendendo do ambiente onde ela está colocada ela interage de forma iônica com alguns compostos e podemos mudar essa concentração iônica de acordo com o adicionamento de sais. Esse adicionamento de sais a gente consegue fazer com que mude a concentração desse ambiente onde está a proteína e consiga dissociar as proteínas de forma a precipita-las. Esse é o intuito da pratica. Que consigamos em uma concentração onde temos vários tipos de proteínas fazer uma separação. Ela é muito utilizada em colunas de sílica, de resinas para separação de proteinas.
Tubo A:
Solução de ovoalbumina e concentração salina 2 ml de solução de ovoalbumina e concentração salina
2 ml de solução de ovoalbumina 2 ml concentração de salina observar, pois, a reação é imediata.
Assim que adicionada percebemos a formação de um composto leitoso, esbranquiçado que indica precipitação das proteínas.
Tubo B:
Solução de ovoalbumina e concentração de sulfato de amônio e água 2 ml de solução de ovoalbumina
Adicionar água (não fala quantidade) adicionar sulfato de amônio (não fala quantidade)
Observar, pois, a reação é imediata não conseguimos perceber a formação desse precipitado. A água diminui, interfere na questão iônica das cargas. Essa pratica demonstra a importância do ponto isoelétrico das proteínas bem como o ambiente se é um meio dependendo da carga iônica a qual a proteína é submetida ela pode sim ser separada através de uma concentração salina que irá proporcionar essa separação das proteínas que pode ser através de uma coluna de resina, dependendo da coluna de onde for utilizada. E de importante utilização clínica e biológica para demais funções de onde queira isolar determinada proteína.
 Materiais utilizados. Reagentes: Ovoalbumina 10% Sulfato de amônio concentrado (solução concentrada de sais, salina, que vai proporcionar a precipitação das proteínas) Água (para padrão negativo) Equipamentos: Pera de borracha, Pipeta e Becker.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? 
Quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica (aumento da concentração de ions) do sistema. Assim, quando adicionamos pequenas quantidades de sal a uma solução contendo proteínas, as cargas provenientes da dissociação do sal passam a interagir com as moléculas proteicas, diminuindo a interação entre elas. Consequentemente, temos um aumento da solubilidade da proteína no meio aquoso. A esse fenômeno dá-se o no me de "Salting-in".
Em condições de elevada força iônica, decorrente da adição de grandes quantidades de sal, temos o efeito contrário. A água, que apresenta um grande poder de solvatação, passa a interagir com as duas espécies: as proteínas e os ions provenientes da dissociação do sal. Porém, a água apresenta maior tendência de solvatação de partículas menores (nesse caso, os ions). As moléculas de água, ocupadas em sua interação com os ions, deixam a estrutura proteica. Como consequência, temos maior interação proteína-proteína, diminuição da solubilidade em meio aquoso e, consequentemente, precipitação da proteína. A esse fenômeno de insolubilização da proteína em decorrência de um considerável aumento da força iônica do meio dá -se o nome de "Salting-out" Este é um processo importante para separação de proteínas uma vez que a concentração de sal necessária para precipitação é diferente para cada proteína.
b) Qual o princípio bioquímico do experimento?
Quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica (aumento da concentração de íons) do sistema. Assim, quando adicionamos pequenas quantidades de sal a uma solução contendo proteínas, as cargas provenientes da dissolução do sal passam a interagir com as moléculas proteicas, diminuindo a interação entre elas. 
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento.
Sem a presença de água o resultado é imediato.
Já com a presença de água não há precipitação das proteínas.
Conclui-se que dependendo da carga iônica que é submetida pode sim ser separada através da concentração salina que irá proporcionar essa separação.
	REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os açúcares redutores são alguns carboidratos que apresentam estrutura que é uma hidroxila em um dos carbonos que é o c1. E essa hidroxila ela consegue reagir com diversos ions principalmente metálicos. E a reação se baseia nessa ligação onde a carbonila vai se ligar a um reativo que é chamado reativo de Benedict.
Materiais usados: Glicose 1% (principal monossacarídeo vamos tentar visualizar se ele é um açúcar redutor)
Solução de sacarose 1% (dissacarídeo) Reativo de Benedict Água (controle negativo)
Equipamentos Pera de borracha Pipeta Becker Banho maria (temperatura 70 graus por 5 minutos)
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento.
O Reagente de Benedict (também chamado de Solução de Benedict ou Teste de Benedict), é um reagente químico de cor azulada, desenvolvido pelo químico americano Stanley Rossiter Benedict, geralmente usados para detectar a presença de açúcares e açúcares redutores, nos quais se incluem glicose, galactose, lactose, maltose e manose. O Reagente de Benedict consiste, basicamente, de uma solução de sulfato cúprico em meio alcalino (com muitos ions OH-); e pode ser preparado através do carbonato de sódio, citrato de sódio e sulfato cúprico.
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”?
Um açúcar redutor é qualquer açúcar que, em solução básica, apresenta um grupo carbonilico livre aldeído (derivado de uma aldose). Sua capacidade de redução se dá pela presença de um grupo aldeído ou cetona livre. Todo monossacarídeo, alguns dissacarídeos e oligossacarídeos. As cetonas precisam
entrar em equilíbrio dinâmico e se tornarem aldeídos antes de poderem atuar como açúcares redutores. Os açúcares mais comuns que consumimos, galactose, glicose e frutose são açúcares redutores.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Tubo de glicose Mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus houve uma modificação, porém não é uma reação de uma cor vermelho tijolo, mas essa modificação para a cor esverdeada indica que houve de fato uma redução dos ions. Houve uma reação do cobre. E nesse caso não a formação do óxido cuproso, já foi reduzido ao máximo o cobre, mas conseguimos perceber uma diferença entre a sacarose e a glicose. Isso significa que a glicose geralmente a aldose é um agente redutor (monossacarídeo) e a frutose e a sacarose não é redutora. Mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus não houve redução e nem reação entre os ions. Significa que a sacarose não é um carboidrato redutor, ou seja, ele não tem hidroxila. A carbonila que faz a reação com os ions cúpricos.
Mesmo após o banho maria por 5 minutos em temperatura a 70 graus não houve reação. A cor que está no tubo é do reativo de Benedict (azul). Não houve mudança de cor
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica.
O reagente de Benedict é usado geralmente no lugar da solução de Fehling para detectar excesso de açúcar na urina e detectar uma possível diabete. O teste pode ser feito num tubo de ensaio, adicionando-se 10 ml do reagente de Benedict em 100 ml da primeira urina da manhã (mais concentrada) e depois, com a ajuda do bico de Bunsen levando a mistura à ebulição. Após afervura verifica-se uma alteração na cor original do reagente; uma cor esverdeada indica a presença de pouco açúcar e uma cor alaranjada indica altos índices de açúcar. O teste é essencialmente qualitativo
	REAÇÃO DE BIURETO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
As proteínas são biomoléculas muito importantes na configuração do nosso corpo, faz parte da atividade de diversas funções. As proteínas participam da formação da membrana plasmática, participa de funções enzimáticas . Para a identificação dessas proteínas temos uma reação chamada reação de Biureto. Ele é um composto derivado da uréia, ele reage com essa informação das proteínas dando uma coloração violeta. A mudança da colorimétrica visualizada na reação é que indica a presença de proteína.
Materiais utilizados:
Vidrarias: Pipeta de vidro e tubos de ensaio.
Reagentes: Reativo de Biureto, solução de ovoalbumina %, água destilada.
Equipamentos: Pera de borracha, estante para tubos de ensaio, balão volumétrico, pisseta.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto.
Esse reativo é utilizado na identificação de compostos proteicos, pois, as ligações existentes na molécula de Biureto são semelhantes às ligações peptídicas na formação de proteínas
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas?
Através da ligação peptídica, o Biureto reage com as proteínas formando complexos quadrados planares, sendo assim, os aminoácidos livres não possuem ligações peptídicas não podem ser identificadas.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
No tubo 1, houve mudança na coloração do Biureto (azul e lilás), que indica positivo para presença de proteínas.
No tubo 2, não houve nenhuma alteração, indicado reação negativa de proteínas.
	REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os polissacarídeos são sacarídeos que são compostos por macromoléculas, temos na classificação de carboidratos que são chamados açucares, os manômetros, os monossacarídeos, dissacarídeos e os polissacarídeos, dentro os polissacarídeos mais comuns que encontramos na natureza e principalmente de âmbito vegetal, temos o amido. O amido faz parte da nossa alimentação onde encontramos ele em diversos alimentos.
Materiais Utilizados:
Vidrarias: Pipetas de vidro e tubos de ensaio.
Reagentes: Solução de Lugol, solução de amido 1%, água destilada.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos.
Na presença de iodo pode sofrer reações de complexação, com a formação de compostos coloridos variando do azul intenso ao vermelho-violácea. Com isso, objetivou-se identificar a presença de amido em alimentos rotineiros, utilizando o lugol como reagente.
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
O Lugol permite a impregnação de ovos, cistos, larvas e vermes adultos facilitando a visualização das estruturas e sua consequente identificação. A formulação pode ser ajustada e/ou suplementada conforme necessário para cumprir os critérios de desempenho do produto.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
A primeira amostra houve alteração de cor, ficando azulada, esverdeada, indicando a presença de amido.
A segunda amostra não houve alteração de cor o que indica a ausência de amido.
	REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Vimos o que o corre quando um Ester em solução aquosa de base inorgânica, produz um sal orgânico e álcool. É conhecido como hidrolise alcalina resultante do ácido graxos, o mesmo é usado na produção do sabão. 
Materiais utilizados.
- Ácido clorídrico 0.1 N
- Hidróxido de sódio 0.1 N
- Etanol
- Éter etílico
- Pipetas de vidro
- Tubos de ensaio
2. Responda as Perguntas:
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos.
Os triacilglicérois recebem esse nome porque são originados da reação entre uma molécula de glicerol (um triálcool) e três moléculas de ácidos graxos (AG). Essa associação dá-se através de uma reação de esterificação. Portanto, os triaciglicérois são ésteres de ácidos graxos.
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. 
A reação de saponificação ocorre quando um éster em solução aquosa de base orgânica origina um sal orgânico e álcool. A reação de saponificação também é conhecida como hidrólise alcalina, através dela é que se torna possível o feitio do sabão.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
No tubo 1, temos a formação de espuma que indica a presença de sais de ácidos graxos.
No tubo 2, temos a formação de precipitado, que indica a presença de sabões de cálcio que não formam espuma.
	SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Aprendemos em aula, sobre a solubilidade dos lipídios, que são moléculas orgânicas que entramos em alimento como a gema de ovo, óleos vegetais, carne vermelha. Vimos que suas moléculas são apolares, não dissolvem em água que contém moléculas polares. Porém são altamente solúveis em solventes orgânicos com moléculas apolares tipo: sulfato de carbono, gasolina e acetona. 
Materiais utilizados.
- Ácido clorídrico 0.1 N
- Hidróxido de sódio 0.1 N
- Etanol
- Éter etílico
- Pipetas de vidro
- Tubos de ensaio
2. Responda as Perguntas:
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de insolubilidade em soluções aquosas. 
Lipídios são substâncias caracterizadas pela baixa solubilidade em água solventes apolares,
São vulgarmente conhecidos como gorduras e suas propriedades físicas, estão relacionadas com a natureza, hidrófoba das suas estruturas. Na verdade, todas as relevâncias do metabolismo lipídico advêm dessa característica hidrófoba das moléculas que não é uma desvantagem biológica (mesmo o corpo possuindo cerca de 60% d’água).
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios. 
Este teste identifica a presença de ácido graxo insaturado. Ocorre uma reação de halogenação, em que o iodo reage com as duplas ligações do ácido graxo insaturado. Se houver dupla ligação, o iodo será consumido e a coloração característica da solução de iodo diminuirá de intensidade.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
Notamos que no tubo 1, onde colocamos água destilada, as substâncias não se misturam. No tubo 2, colocamos ácido clorídrico 0,1%, não se misturam também. No tubo 3 colocamos hidróxido de sódio 0,1% formou-se sabão. No tubo 4 colocamos etanol e as outras substâncias e houve mistura. No tubo 5, colocamos éter etílico com as outras substâncias e se dissolveu totalmente.
O óleo apresenta solubilidade no tubo 5, baixa solubilidade no tubo 4 e é insolúvel nos tubos 1,2 e 3.
Referência de pesquisa:
https://seara.ufc.br/pt/sugestoes-para-feira-de-ciencias/sugestoes-de-biologia/amilase-salivar/ Seara da ciência UFC
https://www.engquimicasantossp.com.br/2020/01/reagente-seliwanoff-teste-distinguir.html por Pedro Coelho em 03/01/2020.
https://pt.linkedin.com/pulse/precipita%C3%A7%C3%A3o-de-prote%C3%ADnas-por-adi%C3%A7%C3%A3o-sais-neutros-gomes-heleno por Mauricio Aurelio Gomes Publicado em 19/11/2018.
https://www.portalsaofrancisco.com.br/quimica/reagente-de-benedict por Portal de São Francisco
https://cesad.ufs.br/ORBI/public/uploadCa/talago/12221710072012Quimica_Biomoleculas_aula_5.pdf por André Luiz Bacelar em 01/08/2021
PETKOWICZ et. al. Bioquímica:Aulas Práticas. 7ª. Ed. Editora UFPR,
Curitiba – PR, 2007
https://www.manualdaquimica.com/quimica-organica/reacao-saponificacao.htm por Jenifer Rocha vargas Fogaça
https://www.todamateria.com.br/o-que-sao-lipidios-funcoes-e-tipos/ por Juliana Diana UFSC 2019
https://pt.wikipedia.org/wiki/Amidohttps://www.fciencias.com/2016/10/20/teste-seliwanoff-laboratorio-online/
https://www.portalsaofrancisco.com.br/quimica/reagente-de-benedict
https://www.todamateria.com.br
https://brainly.com.br
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