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Relatório aula prática I Análises Clínicas II NOME: Helena Haydée Rezek de Sá Pereira Cossiello RA: 2646913 NOME: Larissa Lisum Cavasini Fernandes RA: 2161499 NOME: Janeslay Suellen Silva RA: 2507630 NOME: Simone Grazziotin Foss RA: 1848648 NOME: Karina Silva RA: 1792087 1) Materiais e equipamentos: · Luvas de procedimento; · Jaleco; · Álcool 70%; · Álcool éter; · Papel toalha; · Algodão; · Luvas de Procedimento; · Material biológico (Urina e bactérias já semeadas); · Bico de Bunsen; · Fósforo; · Alça microbiológica calibrada 1µL; · Agulha de inoculação; · Ágar MacConkey (meio de cultura); · Ágar Cled (meio de cultura); · Solução salina; · Estante; · Estufa Microbiológica; · Lâminas; · Suporte coloração de gram; · Garra de madeira; · Corantes da coloração de gram; · Macroscópio; · Óleo de imersão; · Cloreto férrico 10%; · Pipeta Pasteur; · Peróxido de hidrogênio 3%; · Tubos de ensaio para provas bioquímicas; · Caneta permanente para vidro; 2) Materiais e equipamentos: 2.A) Urocultura: Coleta da urina (jato médio) após higienização adequada. Transporte: temperatura ambiente (20-25°C) processadas até 2horas. Após esse tempo: Refrigeração 2-8 °C até 24h. Volume mínimo: 2mL. Escrever nome, data e horário da coleta no pote estéril. Neste método utilizamos uma amostra de urina fresca, coletado em pote estéril, com a higienização adequada e devidamente nomeada. Para iniciarmos a análise foi realizada a desinfecção da bancada com álcool 70% de forma circular para limpar e no método varredura para eliminar possíveis endosporos. Após a desinfecção, acender com o auxílio do fosforo, o bico de Bunsen em chama oxidativa. Semear primeiramente no meio de cultura enriquecedor, ágar Cled (semeadura quantitativa), que deve ser devidamente identificado com nome, data e horário. Homogeneizar a amostra de urina. Em seguida, com uma alça de semeadura calibrada de 1µL flambada e fria, coletar a amostra biológica em silêncio, sempre respeitando o halo do perímetro do bico de Bunsen para que não haja contaminação. Fazer um risco central para descarregar a amostra no centro da placa de petri e complementar com movimentos em estrias, virar a placa e repetir o movimento no sentido contrário em toda a placa. Depois utilizamos o ágar MacConkey (semeadura seletiva) repetindo o mesmo processo. Na sequência, os meios de cultura devem ser levados para uma estufa microbiológica a 37°C, por 24 a 48 horas. 2.B) Esfregaço bacteriano: Fazer a desinfecção da bancada e acender novamente o bico de Bunsen. Identificar a lâmina e colocá-la na garra de madeira. Pegar a solução salina a 0,9%, flambar o bico e com o auxílio da alça de semeadura também flambada, colocar uma gota na lâmina. Flambar e fechar o tubo com a solução salina. Flambar novamente a alça, esperar esfriar para não matar as colônias de bactéria e na sequência coletar um pequeno inóculo já crescidas no meio de cultura. Com a alça, colocamos as bactérias na lâmina, homogeneizando com a solução salina. Passamos a lâmina na chama por 3 vezes do bico de Bunsen para fixar o esfregaço. Aguardar a lamina secar no suporte de coloração de gram. 2.C) Coloração de Gram: · Cristal violeta (1 min.) · Lavar com água corrente · Lugol (1 min.) · Lavar com água corrente · Descorar com Álcool-acetona · Lavar com água corrente · Safranina ou Fucsina diluída 1/10 (30 segs.) · Lavar com água corrente · Secar e examinar ao microscópio em objetiva de imersão (1000X). Com o esfregaço concluído, utilizamos a lâmina para fazer a identificação da bactéria através da coloração gram. No suporte de coloração, corar a lâmina com cristal violeta, por 1 minuto. Lavar em água corrente, na sequência, utiliza-se o Lugol por mais 1 minuto. Novamente, lavar em água corrente. Usar o descorante com álcool-acetona por 15 segundos. Lavar a lâmina em água corrente. Por último, adicionar o corante Fucsina por 30 segundos. Lavar novamente e esperar a lâmina secar. Caso core de rosa, sabemos que são bactérias bacilos gram-negativos. Para concluir esse processo, pingar uma gota de óleo de imersão e observar a bactéria no macroscópio, num aumento de 1000x. Após visualizar, limpar a lente com álcool éter e algodão e descartar a lâmina. 2.D) Semeadura em série bioquímica: Repetir o mesmo critério de desinfecção da bancada e com auxílio da alça microbiológica em agulha, sempre flambada e fria para não matar as colônias ao longo dos procedimentos, coletar de 3 a 4 amostras de bactéria e colocá-la nos 6 tubos de ensaios pré-preparados para as provas biológicas. Iniciar pelo citrato (tubo verde), inserir a alça microbiológica agulha até o final e retirar em movimentos de estrias, na sequência colocar a amostra no tubo de TSI (vermelho) repetindo o processo. No tubo de fenilalanina (transparente) a alça deve ser inserida ao centro e retirada em movimentos de estria. No caldo lisina (roxo) a alça deve ser inserida de forma reta, homogeneizando no tubo, na motilidade+indol (transparente semi-sólido) a alça deve ser inserida no centro e retirada rapidamente e por último, no tubo de uréia (laranja claro), adicionar a alça e retirar em movimentos de estrias. Nunca esquecendo de flambar a alça entre as séries bioquímicas, flambar a boca dos tubos para a desinfecção, e deixando-as levemente abertas por serem anaeróbias facultativas. 3) Resultados: 3.A) Leitura Urocultura (alça de 10µl): 1 colônia = 102 UFC/mL 1 a 9 colônias = 102 UFC/mL 10 a 99 colônias = 103 UFC/ml 100 a 999 colônias = 104 UFC/mL a partir de 1000 colônias = 105 UFC/ml (ITU) 3.B) Desenhe a bacterioscopia: 3.C) Leitura da série bioquímica: Foi utilizado os resultados das provas bioquímicas em teste realizado em laboratório durante a aula pratica. Resultado: Esherichia coli CITRATO – CALDO LISINA + UREIA – FENILALANINA – INDOL + MOTILIDADE + TSI = GLICOSE + SACAROSE + LACTOSE + GÁS GLICOSE + H2S – 4) Discussão: O paciente analisado possui infeção de urina? Justifique. Apesar de apresentar o crescimento de colônias nas amostras da paciente H., o índice de leitura foi de 103 UFC/ml bactérias, considerando os dois meios de Cultura, Cled e MacConkey. Portanto o valor não sugere infecção.
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