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ATLAS DE HEMATOLOGIA VETERINATLAS DE HEMATOLOGIA VETERINÁRIAÁRIA
ANIMAIS SELVAGENS - ORDEM PRIMATESANIMAIS SELVAGENS - ORDEM PRIMATES
Autores
Victor Yunes Guimarães
Roberta Martins Basso
Silvia Eugenia Vargas Mora
Leandro Silva Reis
Mariana Fischer Borges
Bruna dos Santos
Ricardo Romera Cavallari
Gustavo Augusto Pereira Quirino
Amanda Nogueira Ferreira da Silva 
Juliana Mayumi Tonossu
Conselho Editorial
Regina Kiomi Takahira 
Ana Silvia Sartori Barraviera Seabra Ferreira
José Luiz Catão-Dias
Diagramação
Ana Silvia S B S Ferreira
Capa
Alouatta puruensis (bugio-vermelho-do-
-Purús), Diogo Lagroteria
3
Agradecemos a esta equipe de trabalho e nossa instituição de ori-
gem, Laboratório Clínico Veterinário (LCV), da Faculdade de Medi-
cina Veterinária e Zootecnia (FMVZ) - Unesp, Campus de Botucatu. 
Aqui estão concentrados os recursos humanos e materiais que permi-
tiram a concretização deste projeto.
Agradecemos também aos parceiros e amigos que gentilmente cederam 
imagens das espécies em ambiente natural, traduzindo de modo artístico o 
táxon e as células do sangue.
Agradecemos ainda às seguintes instituições:
Núcleo de Educação a Distância e Tecnologias da Informação em Saúde 
(NEAD.TIS), em especial à coordenadora do núcleo Ana Sílvia S.B.S. Ferrei-
ra pela irrestrita dedicação à produção gráfica deste Atlas.
Centro de Medicina e Pesquisa de Animais Selvagens (CEMPAS), FMVZ-Unesp, Bo-
tucatu e o Parque Zoológico Municipal “Quinzinho de Barros”, Sorocaba, SP. Aos seus
gestores, residentes e funcionários que abriram as portas e apoiaram nosso trabalho
desde sua concepção.
Centro Nacional de Pesquisa e Conservação de Primatas Brasileiros (CPB), do Instituto
Chico Mendes de Conservação da Biodiversidade (ICMBio) pela gentileza na concessão
de preciosas imagens do acervo, fundamentais para ilustrar este documento.
A todos, nossos sinceros agradecimentos,
Autores e colaboradores
Saguinus bicolor (sauim de coleira), Diogo Lagroteria.
 Agradecimentos
4
Apresentação
 Como consequência das atividades 
humanas recentes, populações de aproxi-
madamente 75% dos primatas não-huma-
nos (PNH) do mundo estão em declínio e 
mais de 60% das 512 espécies catalogadas 
atualmente estão “Ameaçadas” (Endan-
gered - EN), “Quase Ameaçadas” (Near 
Threatened – NT), “Vulneráveis” (Vulne-
rable – VU) ou “Criticamente Ameaçadas” 
(Critically Endangered – CR). As espécies 
listadas nas demais categorias da Interna-
tional Union for Conservation of Nature 
(IUCN) como “Pouco Preocupantes” (Le-
ast Concern - LC) ou “Dados Insuficien-
tes” (Data Deficient - DD) apresentam 
menor preocupação ou dados insuficien-
tes para classificar o status de suas popula-
ções. Entre as principais fontes de ameaça 
sobre as espécies estão a perda do habitat, 
causada pela expansão da agricultura in-
dustrial, a exploração da madeira, mine-
ração e extração de combustíveis fósseis¹.
 Os primatas ocorrem em 90 países, 
e em menor escala na região neotropical. 
Dentre todas as nações, o Brasil abriga a 
maior riqueza de espécies, totalizando 116 
táxons². De maneira desproporcional à ri-
queza de espécies, poucos são os estudos 
acerca das particularidades clínico-patoló-
gicas das espécies brasileiras que estabele-
çam parâmetros de higidez dos mesmos.
 Em face dessa diversidade de espé-
cies, cujo conhecimento se amplia pelo atu-
al ritmo de novas descobertas e, sobretudo 
diante das pressões que muitas populações 
de primatas vêm sofrendo, faz-se oportuna 
a materialização desta obra. Apresentamos 
pela primeira vez, um guia fotográfico co-
lorido das populações celulares do sangue 
periférico de 13 espé-
cies de primatas, pro-
venientes de cinco 
famílias, oito gêne-
ros e de três bio-
mas brasileiros.
 A concep-
ção do Atlas de 
Hematologia 
Veterinária 
– Animais 
Selvagens: Ordem 
Primates é produ-
to de um esfor-
ço não apenas 
dos autores desta edição, mas também 
de pesquisadores, veterinários e insti-
tuições parceiras que permitiram a ob-
tenção de amostras de sangue, disponi-
bilizaram os animais ou estiveram em 
colaboração constante desde o princípio.
 A composição intelectual, obtenção 
de imagens, redação e revisão deste ma-
terial didático esteve sob responsabilida-
de da equipe de trabalho do Laboratório 
Clínico Veterinário Profa. Dra. Aguemi 
Kohayagawa da Faculdade de Medicina 
Veterinária e Zootecnia (FMVZ), da Uni-
versidade Estadual Paulista “Júlio de Mes-
quita Filho” UNESP, Campus de Botucatu.
 Com o auxílio de um equipa-
mento de microscopia óptica (Olimpus 
CX41), acoplado a um software para 
captura de imagem (OPTIKAM PRO 
HDMI, Italy), foi possível registrar e 
descrever estruturas e células das séries 
vermelha e branca do sangue das espé-
cies. Desse modo, são discutidas as par-
ticularidades morfológicas e tintoriais de 
5
cada subtipo celular, obtidas de animais 
mantidos em cativeiro e em vida livre.
 A obra mais robusta dedicada à 
hematologia comparada de primatas, 
abordando índices hematimétricos, as 
populações celulares e as diferenças en-
tre espécies, data dos anos 70 e apresenta 
predomínio das espécies do Velho Mun-
do³. Até o momento, não há conheci-
mento de um atlas fotográfico colori-
do que ilustre e discuta a hematologia 
das espécies de primatas neotropicais.
 Esta obra não tem o objetivo de 
esgotar, tampouco discutir índices he-
matimétricos da Ordem Primates, nem 
mesmo cada circunstância de manejo. 
Ainda que saibamos que as variáveis he-
matológicas podem ser influenciadas 
pelo clima, faixa etária, guilda alimen-
tar e que cada indivíduo está submetido 
a diferentes fontes de estresse, os espéci-
mes aqui avaliados apresentavam-se apa-
rentemente saudáveis ao exame clínico.
 Dentre o rol de animais aparente-
mente saudáveis de cada espécie, foram 
selecionados para documentação foto-
gráfica aqueles esfregaços sanguíneos co-
rados com corantes de base Romanowski 
que apresentaram os melhores contraste 
e visualização das estruturas em mono-
camadas foram selecionados para esta 
amostragem. Espera-se que este mate-
rial possa ser utilizado como guia para 
patologistas clínicos veterinários e de-
mais pesquisadores que utilizam a he-
matologia como ferramenta de trabalho.
 A identificação correta das célu-
las de um animal aparentemente sau-
dável pode ser uma ferramenta valiosa 
para o reconhecimento das anormalida-
des e do estabelecimento de processos 
mórbidos, sobremaneira para as apli-
cações na conservação dos primatas.
 
6
Ateles marginatus (coatá-da-testa-branca), Rogério Custódio.
7
Alouatta belzebul 
(Linnaeus, 1766)
Nome popular (português/inglês): Guariba-de-mãos-ruivas, guari-
ba, górgo/ Red-handed Howler Monkey, Red-handed Howling Monkey.
Ameaças e Status de Conservação: De acordo com as avalia-
ções em escala global e nacional, a espécie encontra-se na cate-
goria “Vulnerável” (VU). A escala se justifica pela redução de suas 
populações em pelo menos 30%, devido à perda e fragmentação do ha-
bitat, caça, expansão urbana e aumento da matriz energética do país⁴.
Distribuição Geográfica: Alouatta belzebul é endêmico do Brasil, apre-
sentando distribuição disjunta⁵, com um conjunto de populações na 
porção oriental da Floresta Amazônica (Pará, Maranhão e provavel-
mente ao norte do Mato Grosso)⁶ e outro na Mata Atlântica nordesti-
na nos estados de Alagoas, Rio Grande de Norte, Paraíba e Pernambuco⁷.
Alouatta belzebul (guariba-de-mãos-ruivas), Raony Alencar.
8
Figura	1-	Eritrócitos	maduros	em	esfregaço	sanguíneo,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	 2.	 Neutrófilo	 pouco	 segmentado	 apresentando	 granulação	 basofílica	
citoplasmática,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 1. Eritrócitos maduros em esfregaço sanguíneo. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 2. Neutrófilo hiposegmentado apresentando granulação basofílica citoplasmática. 
Wright-Giemsa, 1000x.
9
Figura	 3.	 Neutrófilo	 maduro	 apresentando	 hipossegmentação	 nuclear,	 citoplasma	
basofílico	(acima)	e	monócito	(abaixo),	Wright-Giemsa,	1000x.
	 A	
B	
A	
Figura4.	Neutrófilos	segmentados	(A)	com	granulação	basofílica	fina	citoplasmática	
e	linfócito	típico	(B),	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 3. Neutrófilo maduro apresentando hiposegmentação nuclear, citoplasma basofílico 
(acima) e monócito (abaixo). Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 4. Neutrófilos segmentados (A) com granulação basofílica fina citoplasmática e linfócito 
típico (B). Wright-Giemsa, 1000x.
10
Figura	 5.	 Eosinófilo	 (à	 esquerda)	 apresentando	 grânulos	 eosinofílicos	 arredondados,	
ocupando	 quase	 totalmente	 o	 citoplasma	 e	 linfócito	 grande	 (à	 direita),	 Wright-
Giemsa,	1000x.
Figura	 6.	 Neutrófilo	 segmentado	 (à	 esquerda)	 e	 pequeno	 agregado	 de	 plaquetas	
em	monocamada,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 5. Eosinófilo (à esquerda) apresentando grânulos eosinofílicos arredondados, ocupando 
quase totalmente o citplasma e linfócito grande (à direita). Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 6. Neutrófilo segmentado (à esquerda) e pequeno agregado de plaquetas em monocamada. 
Wright-Giemsa, 1000x.
11
Figura	 7.	 Monócito	 apresentando	 núcleo	 ameboide,	 citoplasma	 azul-acinzentado	 e	
vacúolos,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	 8.	 Eosinófilo	 (à	 esquerda),	 neutrófilo	 segmentado	 (à	 direita)	 em	 meio	 a	
eritrócitos	maduros,	Wright-Giemsa,	400x.
Figura 7. Monócito apresentando núcleo ameboide, citoplasma azul-acinzentado e vacúolos. 
Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 8. Eosinófilo (à esquerda), neutrófilo segmentado (à direita) em meio a eritrócitos maduros. 
Wright-Giemsa, 400x.
12
Figura	9.	Linfócito	pequeno	e	típico	com	núcleo	arredondado,	citoplasma	escasso	e	de	
coloração	basofílica,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 9. Linfócito pequeno e típico com núcleo arredondado, citoplasma escasso e de coloração 
basofílica. Wright-Giemsa, 1000x.
13
Ateles marginatus (coatá-da-testa-branca), Francielly Reis.
14
Alouatta caraya 
(Humboldt, 1812)
Nome popular (português/inglês): Bugio-preto, guariba-
-preto, barbado / Black-and-gold Howler Monkey, Sou-
thern Black Howler Monkey, Black Howling Monkey.
Ameaças e Status de Conservação: É uma espécie classificada como “Quase 
ameaçada” (Near Threatened - NT) em território nacional e “Menos Preocu-
pante” (Least Concern – LC) em escala global. Apesar da ocorrência abran-
gente no território brasileiro, o declínio populacional ocorre pela perda e 
fragmentação do habitat devido à expansão da agricultura, pecuária, ma-
triz rodoviária e energética, incêndios, caça e vulnerabilidade a epidemias15.
Distribuição Geográfica: Exemplares de Alouatta caraya já foram avis-
tados na Bahia, Distrito Federal, Goiás, Maranhão, Mato Gros-
so, Mato Grosso do Sul, Minas Gerais, Pará, Paraná, Piauí, Rio Gran-
de do Sul, Rondônia, Santa Catarina, São Paulo e Tocantins, bem 
como na Argentina, Paraguai, Bolívia e a confirmar no Uruguai16,17,18.
Fonte:	Acervo	CPB	(2011)
Alouatta caraya, “Val Campos - Banco de Imagens ICMBio/CPB”.
15
Figura	1.	Eritrócitos	maduros,	plaquetas	e	neutrófilo	segmentado	ao	centro,	em	esfregaço	
sanguíneo,	Panótico,	400x.
Figura	2.	Eritrócitos	maduros	apresentando	coloração	rósea-avermelhada	e	plaquetas	em	maior	
aumento,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 1. Eritrócitos maduros, plaquetas e neutrófilo segmentado ao centro. Panótico, 400x.
Figura 2. Eritrócitos maduros apresentando coloração rósea-avermelhada e plaquetas em monoca-
mada. Wright-Giemsa, 1000x.
16
Figura	 3.	 Eosinófilo	 ao	 centro	 apresentando	 segmentações	 nucleares,	 citoplasma	 quase	 em	
sua	totalidade	repleto	de	grânulos	eosinofílicos	com	aspecto	arredondado,	Panótico,	1000x.
Figura	 4.	 Linfócito	 apresentando	 citoplasma	 escasso	 e	 de	 coloração	 acinzentada,	 núcleo	
arredondado	excêntrico	de	cor	azul	púrpura,	Panótico,	1000x.
Figura 3. Eosinófilo ao centro apresentando segmentações nucleares, citoplasma quase em sua 
totalidade repleto de grânulos eosinofílicos com aspecto arredondado. Panótico, 1000x.
Figura 4. Plaquetas em monocamada e linfócito típico apresentando citoplasma escasso, 
coloração acinzentada, núcleo arredondado excêntrico. Panótico, 1000x.
17
Figura	 5.	Monócito	 apresentando	 núcleo	 em	 forma	 de	 “ferradura”	 na	 periferia	 da	 célula,	
cromatina	 pouco	 condensada,	 citoplasma	 discretamente	 basofílico	 e	 abundante,	 Panótico	
1000x.
Figura	 6.	 Neutrófilo	 maduro	 pouco	 segmentado	 apresentando	 granulação	 fina	 de	 coloração	
basofílica,	Panótico,	1000x.
Figura 5. Monócito apresentando núcleo em forma de “ferradura” na periferia da célula, 
cromatina pouco condensada, citoplasma discretamente basofílico e abundante. Panótico, 
1000x.
Figura 6. Neutrófilo maduro hiposegmentado apresentando granulação fina de coloração 
basofílica. Panótico, 1000x.
18
Figura	 7.	 Linfócito	 ao	 centro	 apresentando	 citoplasma	 escasso,	 de	 coloração	 intensamente	
basofílica	e	núcleo	arredondado	ocupando	mais	de	90%	da	superfície	celular,	Wright-Giemsa,	
1000x.
Figura	8.	Linfócito	em	meio	a	eritrócitos	e	agregado	de	plaquetas	em	esfregaço	sanguíneo,	
Panótico,	1000x.
Figura 7. Linfócito ao centro apresentando citoplasma escasso, de coloração intensamente 
basofílica e núcleo arredondado ocupando mais de 90% da superfície celular. Wright-Giemsa, 
1000x.
Figura 8. Linfócitos em meio a eritrócitos e agregado de plaquetas em esfregaço sanguíneo. 
Panótico, 1000x.
19
Figura	 9.	 Linfócito	 apresentando	 uma	 endentação	 nuclear,	 cromatina	 intensamente	
condensada	e	presença	de	fragmento	nuclear	livre,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	10.	Leucócitos	em	esfregaço	sanguíneo,	Wright-Giemsa,	1000x.	(A).	Grande	monócito	
apresentando	 núcleo	 irregular,	 cromatina	 frouxa	 e	 basofilia	 citoplasmática	 periférica.	 (B).	
Neutrófilo	 apresentando	 divisão	 nuclear	 quase	 completa,	 granulação	 de	 coloração	
metacromática	na	região	periférica	do	citoplasma.	(C).	Neutrófilo	segmentado	de	citoplasma	
transparente	e	repleto	de	grânulos	basofílicos.
Figura 9. Linfócito apresentando uma endentação nuclear, cromatina intensamente condensa-
da e fragmento nuclear livre. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 10. Leucócitos em esfregaço sanguíneo (A). Grande monócito apresentando núcleo 
irregular, cromatina frouxa e basofilia citoplasmática periférica. (B). Neutrófilo apresentando 
segmentação nuclear quase completa, granulação de coloração metacromática na região perifé-
rica do citoplasma. (C). Neutrófilo segmentado de citoplasma transparente e repleto de grânu-
los basofílicos. Wright-Giemsa, 1000x.
A B C
20
Leontopithecus chrysopygus (mico-leão-preto), Olivier Kaisin.
21
Alouatta guariba clamitans
 (Cabrera, 1940)
Nome popular (português/inglês): Bugio-ruivo, bugio, barbado, guari-
ba/ Southern Brown Howler Monkey, Southern Brown Howling Monkey.
Ameaças e Status de Conservação: Espécie categorizada como “Vulnerável” 
(VU) em escala nacional e “Quase ameaçada” (Near Threatened - NT) em 
escala global. A redução populacional principalmente no estado do Rio Gran-
de do Sul após o surto de Febre Amarela ocorrido em 2017-2019 somados 
à extensa fragmentação florestal e expansão urbana, levam à estimativa de 
declínio populacional de 30% nas próximas três gerações após o surto13,3⁵. 
Distribuição Geográfica: A espécie ocorre na Argentina e no Brasil, ha-
bitando a Mata Atlântica nos estados do Espírito Santo, Minas Gerais, Pa-
raná, Rio de Janeiro, Rio Grande do Sul, Santa Catarina e São Paulo14.
Alouatta guariba clamitans (bugio-ruivo), Aline Naíssa.
22
Figura	1.	Eritrócitos	maduros	e	plaquetas	em	monocamada,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	2.	Linfócito	típico	ao	centro,	com	núcleo	arredondado,	cromatina	apresentando	intensa	
condensação	e	escasso	citoplasma	de	cor	basofílica.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 1. Eritrócitos maduros e plaquetas em monocamada. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 2. Linfócito típico ao centro, com núcleo arredondado, cromatina apresentando intensa 
condensação e escasso citoplasma de cor basofílica. Wright-Giemsa, 1000x.
23
Figura	 3.	 Linfócito	 apresentando	 núcleo	 de	 formato	 irregulare	 presença	 de	 fragmento	
nuclear	livre	no	citoplasma,	Panótico,	1000x.
Figura	 4.	 Monócito	 apresentando	 núcleo	 em	 formato	 ameboide,	 cromatina	 nuclear	
frouxa	 e	 citoplasma	 de	 coloração	 azul-acinzentada,	 contendo	 ainda	 vacúolos,	
Panótico,	1000x.
Figura 3. Linfócito grande apresentando núcleo de formato irregular e fragmento nuclear livre no 
citoplasma. Panótico, 1000x.
Figura 4. Monócito apresentando núcleo em formato ameboide, cromatina nuclear frouxa e cro-
matina nuclear frouxa e citoplasma vacuolizado de coloração azul-acinzentada. Panótico, 1000x.
24
Figura	5.	Neutrófilo	segmentado	apresentando	granulação	citoplasmática	fina	de	coloração	
basofílica,	Panótico,	1000x.	
Figura 5. Neutrófilo segmentado apresentando granulação citoplasmática fina de coloração basofí-
lica. Panótico, 1000x.
25
Plecturocebus moloch (sauá), Diogo Lagroteria.
26
Alouatta puruensis
 (Lonnberg, 1941)
Nome popular (português/inglês): Guariba, bugio, barbado, bugio-vermelho-
-do-Purús/ Purús Red Howler Monkey, Red Howler, Red Howling Monkey.
Ameaças e Status de Conservação: Mesmo com ampla distribuição ama-
zônica, essa espécie sofre ameaças como a baixa densidade popula-
cional em algumas regiões, também a caça e a fragmentação de habi-
tat devido ao desmatamento e construção de estradas. Dessa forma 
encontra-se na categoria “Quase ameaçada” (NT) em âmbito nacional e 
“Menos Preocupante” (Least Concern – LC) em esfera internacional25.
Distribuição Geográfica: Ocorrem no Peru e no Brasil, e habi-
tam os estados do Acre, Amazonas, Mato Grosso e Rondônia26.
Alouatta puruensis (bugio-vermelho-do-Purús), Diogo Lagroteria.
27
Figura	1.	Neutrofilo	típico	com	citoplasma	acinzentado.	Eritrócitos	maduros	e	codócitos.	Wright-
Giemsa,	1000x.
Figura	2.	Monócito	com	núcleo	segmentado	e	citoplasma	basofílico	com	presença	de	único	vacúolo,	
Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 1. Neutrófilo típico com citoplasma acinzentado. Eritrócitos maduros e codócitos 
(hemácias em alvo). Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 2. Monócito com núcleo segmentado e citoplasma basofílico com presença de único 
vacúolo. Wright-Giemsa, 1000x.
28
Figura	 3	 Linfócito	 típico	 com	 núcleo	 arredondado	 central	 e	 citoplasma	 basofílico	 escasso,	
Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura	 4.	 Eosinófilo	 com	 vacuolização	 citoplasmática	 e	 granulação	 eosinofílica	 cobrindo	 a	
maior	parte	do	citoplasma.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 3. Linfócito típico com núcleo arredondado central e citoplasma basofílico escasso. 
Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 4. Eosinófilo com vacuolização citoplasmática e granulação eosinofílica cobrindo a 
maior parte do citoplasma. Wright-Giemsa, 1000x.
29
Saguinus imperator (bigodeiro), Diogo Lagroteria.
30
Ateles chamek 
(Humboldt, 1812)
Nome popular (português/inglês): Macaco-aranha, coatá, macaco-aranha-da-
-cara-preta, coatá-preto/ Black-faced Spider Monkey, Chamek Spider Monkey, 
Peruvian Spider Monkey.
Ameaças e Status de Conservação: Apesar de possuir uma ampla distribuição, 
está classificada em escala nacional como “Vulnerável” (VU) e em nível inter-
nacional como “Em Perigo” (Endangered - EN). Esses status condizem com 
a baixa densidade e declínio populacional causado pela maturidade sexual 
tardia e longo intervalo entre nascimentos, bem como pelos desmatamentos, 
construção de estradas e caça33.
Distribuição Geográfica: No Brasil é observado nos estados do Acre, Amazo-
nas, Mato Grosso e Rondônia, mas também na Bolívia e no Peru34.
Fonte:	Diogo	Lagroteria	(2014)
Ateles chamek (macaco-aranha-da-cara-preta), Diogo Lagroteria.
31
Figura	4.	Eritrócitos	maduros	e	plaquetas	em	esfregaço	sanguíneo.	Wright-Giemsa,	1000x.Figura 1. Eritrócitos maduros e plaquetas em esfregaço sanguíneo. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura	 5.	 Linfócito	 apresentando	 endentação	 nuclear	 e	 citoplasma	 escasso	 de	 coloração	
basofílica.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 2. Linfócitos apresentando endentação nuclear e citoplasma basofílico escasso. Wright-
-Giemsa, 1000x.
32
Figura	 6.	 Eosinófilo	 apresentando	 núcleo	 segmentado	 e	 citoplasma	 repleto	 de	
grânulos	eosinofílicos.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 3. Eosinófilo apresentando núcleo segmentado e citoplasma repleto de grânulos 
eosinofílicos. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 7. Monócito (A) típico apresentando núcleo em formato reniforme, citoplasma 
abundante e de coloração azul acinzentada. Neutrófilo maduro (B), segmentação 
nuclear e grânulos citoplasmáticos de coloração eosinofílica. e linfócito (C) com 
núcleo típico e citoplasma com bordos pouco definidos. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 4. Monócito (A) típico apresentando núcleo com cromatina frouxa, citoplasma abundante 
e de coloração azul acinzentada. Neutrófilo maduro (B) com segmentação nuclear e grânulos ci-
toplasmáticos de coloração eosinofílica e linfócito (C) com núcleo típico e citoplasma com bordos 
pouco definidos. Wright-Giemsa, 1000x.
A
B
C
33
Cebuella pygmaea (sagui-leãozinho), Victor Yunes.
34
Ateles marginatus 
(É. Geoffroy Saint-Hilaire, 1809)
Nome popular (português/inglês): Macaco-aranha, coatá-da-testa-
-branca, cuamba (Pará), guatá (Mato Grosso) / White-cheeked Spider 
Monkey, White-whiskered Spider Monkey, White-fronted Spider Monkey.
Ameaças e Status de Conservação: Encontra-se na categoria “Em Perigo” (En-
dangered - EN) tanto em escala global, como nacional, em consequência de 
um declínio populacional de aproximadamente 50% em 45 anos, cujas cau-
sas identificadas são o aumento dos desmatamentos principalmente para a 
criação de estradas, hidrelétricas, lavouras, assentamentos rurais e a caça 19.
Distribuição Geográfica: Ateles marginatus é uma espécie endêmi-
ca do Brasil, sendo encontrada nos estados do Mato Grosso e Pará20.
Ateles marginatus (coatá-da-testa-branca), Lorena Castilho.
35
Figura	1.	Hemácias	em	sangue	periférico	de	espécime	saudável.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	2.	Neutrófilo	maduro	apresentando	cinco	segmentações	nucleares	e	citoplasma	incolor.	
Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 1. Hemácias maduras em sangue periférico. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 2. Neutrófilo maduro apresentando quatro segmentações nucleares evidentes e citoplasma 
discretamente basofílico. Wright-Giemsa, 1000x.
36
Figura	 3.	 Neutrófilo	 pouco	 segmentado,	 linfócito	 pequeno	 com	 citoplasma	 escasso	 e	 de	
coloração	basofílica.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	 4.	 Linfócitos	 pequenos	 com	 citoplasma	 basofílico	 e	 plaquetas	 em	 monocamada	
(seta).	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 3. Neutrófilo hiposegmentado, linfócito pequeno com citoplasma escasso e de coloração 
basofílica. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 4. Linfócitos pequenos com citoplasma basofílico e plaquetas em monocamada (seta). 
Wright-Giemsa, 1000x.
37
Figura	 5.	 Monócito	 com	 núcleo	 em	 forma	 de	 ferradura	 e	 abundante	 citoplasma	 azul-
acinzentado	com	presença	de	vacúolos.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	6.	Monócito	 apresentando	núcleo	 ameboide	e	 abundante	 citoplasma	azul-acinzentado	
(A).	Eosinófilo	com	grânulos	eosinofílicos	no	citoplasma	(B).	Wright-Giemsa,	1000x.
A
B
Figura 5. Monócito com edentação nuclear e abundante citoplasma azul-acinzentado com presen-
ça de vacúolos. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 6. Monócito apresentando núcleo ameboide e abundante citoplasma azul-acinzentado (A). 
Eosinófilo com grânulos no citoplasma (B). Wright-Giemsa, 1000x.
38
Figura	 7.	 Eosinófilo	 com	 núcleo	 segmentado	 e	 grânulos	 arredondados	 de	 coloração	
eosinofílica	no	citoplasma.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 7. Eosinófilo com núcleo segmentado e grânulos citoplasmáticos arredondados eosinofíli-
cos. Wright-Giemsa, 1000x.
39
Saimiri sp. (mico-de-cheiro), Diogo Lagroteria.
40
Aotus trivirgatus 
(Humboldt, 1812)
Nome popular (português/inglês): Macaco-da-noi-
te, macaco-da-noite-de-pescoço-cinza / Night Monkey, Nor-
thern Night Monkey, Northern Owl Monkey, Owl Monkey.
Ameaças e Status de Conservação: De acordo com a avaliação global e na-
cional, a espécie Aotus trivirgatusfoi categorizada como “Menos Preo-
cupante” (Least Concern – LC), considerando sua ampla distribuição 
na região amazônica e a ausência de ameaças populacionais definidas 23.
Distribuição Geográfica: Presente na Venezue-
la e no Brasil nos estados de Amazonas, Pará e Roraima24.
Aotus trivirgatus (macaco-da-noite), Rogério Custódio.
41
Figura	1.	Eritrócitos	maduros	e	eritrócitos	jovens	apresentando	discreta	anisocitose	e	
policromatofilia	(setas).	Wright-Giemsa,	400x.
Figura	2.	Neutrófilo	segmentado	apresentando	granulação	rósea	difusa	no	citoplasma.	Wright-
Giemsa,	1000x.	
Figura 1. Eritrócitos maduros e eritrócitos jovens apresentando discreta anisocitose e policroma-
tofilia (setas). Wright-Giemsa, 400x.
Figura 2. Netrófilo segmentado apresentando granulação rósea difusa no citoplasma. Wright-
Giemsa, 400x.
42
Figura	 3.	 Monócito	 com	 citoplasma	 basofílico	 e	 núcleo	 com	 cromatina	 frouxamente	
aglomerada.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	 4.	 Metarrubrícito	 com	 núcleo	 intensamente	 basofílico	 e	 citoplasma	 parcialmente	
hemoglobinizado	 (A).	 Linfócito	 típico	 com	núcleo	 arredondado	 e	 citoplasma	 de	 coloração	
azul-acinzentada	(B).	Wright-Giemsa,	1000x.
A
B
Figura 3. Monócito com citoplasma basofílico e núcleo ameboide com cromatina frouxamente 
condensada. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 4. Metarrubrícito com núcleo intensamente basofílico e citoplasma parcialmente hemo-
globizado (A). Linfócito pequeno e típico com núcleo arredondado e citoplasma de coloração 
azul-acizentada (B). Wright-Giemsa, 1000x.
43
Figura	5.	(A)	Eosinófilo	com	núcleo	segmentado	e	granulação	intensamente	eosinofílica	no	
citoplasma.	 (B)	 Linfócito	 pequeno	 com	 núcleo	 central	 e	 escassez	 citoplasmática.	 Wright-
Giemsa,	1000x.	
Figura	 6.	 Eosinófilo	 com	 segmentação	 nuclear	 e	 abundantes	 grânulos	 eosinofílicos	
arredondados.	Eritrócitos	maduros	com	presença	de	rouleax.	Wright-Giemsa,	1000x.
A
B
Figura 5. (A) Eosinófilo com núcleo segmentado e granulação intensamente eosinofílica no ci-
toplasma. (B) Linfócito pequeno e típico com núcleo central e escassez citoplasmática. Wright-
-Giemsa, 1000x.
Figura 6. Eosinófilo com abundantes grânulos eosinofílicos arredondados. Eritrócitos maduros 
com presença de rouleax. Wright-Giemsa, 1000x.
44
Saguinus bicolor (sauim-de coleira), Diogo Lagroteria.
45
Callithrix penicillata 
(É. Geoffroy, 1812)
Nome popular (português/inglês): Sagui-de-tufos-pretos, mico-
-estrela/ Black-pencilled Marmoset, Black-tufted-ear Marmoset.
Ameaças e Status de Conservação: Devido à sua ampla distribuição no 
cerrado brasileiro, essa espécie ocupa a categoria “Menos Preocupan-
te” (Least Concern – LC) em escala global e nacional. Mesmo com a frag-
mentação e perda do habitat identificados como fatores que interfiram 
nessa população, ainda não configuram ameaça de extinção da espécie11.
Distribuição Geográfica: Callithrix penicillata é endêmico do Brasil, sendo con-
siderado nativo nos estados da Bahia, Distrito Federal, Goiás, Maranhão, Mato 
Grosso do Sul, Minas Gerais, Piauí, São Paulo e Tocantins, e, como residente e in-
troduzido nos estados do Espírito Santo, Paraná, Rio de Janeiro e Santa Catarina12.
Fonte:	Diogo	Lagroteria	(2015)Callithrix penicillata (sagui-estrela), Diogo Lagroteria.
46
Figura	1.	 Eritrócitos	maduros	e	 imaturos	 (setas)	 apresentando	maior	 tamanho	e	 	 discreta	
basofilia	e	presença	de	plaquetas	em	monocamada,	Wright-Giemsa	1000x.
Figura	 2.	Metarrubrícito	 (seta)	 apresentando	núcleo	de	 coloração	 intensamente	basofílica	
homogênea	e	citoplasma	policromatofílico.
Figura 1. Eritrócitos maduros e imaturos (setas) apresentando maior tamanho e discreta basofilia e 
presença de plaquetas em monocamada. Wright-Giemsa 1000x.
Figura 2. Metarrubrícito (seta) apresentando núcleo de coloração intensamente basofílica 
homogênea e citoplasma policromatofílico. Wright-Giemsa 1000x.
47
Figura	 3.	 Linfócito	 pequeno	 com	 núcleo	 redondo,	 central	 e	 ligeiramente	 excêntrico,	
apresentando	cromatina	nuclear	firmemente	condensada,	Panótico,	1000x.
Figura	 4.	 Linfócito	 grande	 contendo	 núcleo	 de	 cor	 clara	 e	 citoplasma	 abundante	
levemente	basofílico	(azul-claro),	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 3. Linfócito pequeno com núcleo redondo, central, apresentando cromatina nuclear firme-
mente condensada. Panótico, 1000x.
Figura 4. Linfócito grande contendo núcleo de basofilia discreta e citoplasma abundante levemente 
basofílico (azul-claro). Wright-Giemsa, 1000x.
48
Figura	 5.	 Neutrófilo	 maduro	 apresentando	 núcleo	 segmentado,	 citoplasma	 incolor,	
contendo	 grânulos	 acidofílicos	 finos	 adquirindo	 aparência	 rósea	 difusa,	 Wright-
Giemsa,	1000x.
Figura	 6.	 Leucócitos	 em	 esfregaço	 sanguíneo.	 (A).	 Basófilo	 apresentando	
segmentação	 nuclear	 e	 granulação	 citoplasmática	 de	 coloração	 basofílica.	 (B).	
Neutrófilo	segmentado	contendo	granulação	citoplasmática	eosinofílica	fina	difusa	
e	presença	de	vacúolos.	(C).	Monócito	típico	com	formato	ameboide,	apresentando	
endentação	 nuclear,	 cromatina	 frouxamente	 condensada	 e	 citoplasma	 azul-
acinzentado	abundante	com	presença	de	vacúolos,	Panótico,	1000x.
Figura 5. Neutrófilo maduro apresentando núcleo segmentado, citoplasma incolor, contendo grâ-
nulos acidofílicos. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 6. Leucócitos em esfregaço sanguíneo. (A). Basófilo apresentando segmentação nuclear e 
granulação citoplasmática de coloração basofílica. (B). Neutrófilo segmentado contendo granula-
ção citoplasmática eosinofílica fina difusa e presença de vacúolos. (C). Monócito típico com forma-
to ameboide, apresentando endentação nuclear, cromatina frouxamente condensada e citoplasma 
azul-acinzentado abundante com presença de vacúolos. Panótico, 1000x.
A B C
49
Sapajus robustus (macaco-prego-de-crista), Diogo Lagroteria.
50
Mico rondoni 
(Ferrari, Sena, Schneider & Silva jr., 2010)
Nome popular (português/inglês): Mico-de-Rondônia, sagui-bran-
co, macaquinho-branco / Rondon’s Marmoset, Rondônia Marmoset.
Ameaças e Status de Conservação: Categorizado em esca-
la global e nacional como “Vulnerável” (Vulnerable - VU) por se tra-
tar de uma espécie rara, endêmica do estado de Rondônia e com 
baixa densidade populacional. Em três gerações houve um declínio popula-
cional de 30% por efeito da invasão territorial pela espécie Saguinus wed-
deli weddeli e também pela perda de habitat relacionada às atividades antró-
picas como agricultura, pecuária, desmatamentos e crescimento urbano21.
Distribuição Geográfica: Restrita ao estado de Rondônia, Brasil22.
Mico rondoni, “Danilo Mota- Banco de Imagens ICMBio/CPB”.
51
Figura	1.	Eritrócitos	maduros	e	presença	de	plaquetas	(seta)	em	animal	saudável.	Wright-Giemsa,	
1000x.
Figura	2.	Monócito	com	núcleo	em	forma	de	ferradura	e	citoplasma	azul-acinzentado	contendo	
vacúolos.	Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura 1. Eritrócitos maduros e presença de plaquetas (seta). Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 2. Monócito com núcleo em forma de ferradura e citoplasma azul-acinzentado contendo 
vacúolos. Wright-Giemsa, 1000x.
52
Figura	 3.	 Neutrófilo	 maduro	 com	 núcleo	 apresentando	 segmentação	 marcada	 e	 citoplasma	
com	granulação	discretamente	eosinofílica.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	4.	Linfócito	maduro	com	núcleo	excêntrico	e	citoplasma	abundante	e	discretamente	
basofílico.		Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 3. Neutrófilo maduro com núcleo apresentando marcada segmentação e citoplasma 
acinzentado. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 4. Linfócito maduro com núcleo excêntrico e citoplasma abundante e discretamente baso-
fílico. Wright-Giemsa, 1000x.
53
Figura	 5.	 Linfócito	 com	núcleo	 arredondado	 e	 citoplasma	 escasso	 de	 coloração	 basofílica,	
Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura	 6.	 Eosinófilo	 com	 núcleo	 segmentado	 e	 granulação	 eosinofílica	 cobrindo	 quase	 a	
totalidade	do	citoplasma.	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 5. Linfócito pequeno e maduro com núcleo arredondadoe citoplasma basofílico escasso. 
Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 6. Eosinófilo com núcleo segmentado e granulação eosinofílica cobrindo quase a totalida-
de do citoplasma. Wright-Giemsa, 1000x.
54
Pithecia pithecia chrysocephala (parauacu-da-cara-branca), Diogo Lagroteria.
55
Sapajus apella 
(Linnaeus, 1766)
Nome popular (português/inglês): Macaco – prego / Black-capped Ca-
puchin, Guianan Brown Capuchin, Brown Capuchin, Tufted Capuchin.
Ameaças e Status de Conservação: Tanto em escala global como nacional, a espécie 
encontra-se na categoria “Menos Preocupante” (Least Concern – LC). Embora 
a perda e fragmentação do habitat interfiram em suas populações, a redução po-
pulacional não implica em risco de extinção, de acordo com a última avaliação8.
Distribuição Geográfica: A espécie está amplamente distribuída pela região 
da Amazônia centro-oriental10, ocorrendo naturalmente nos estados de 
Amapá, Amazonas, Maranhão, Mato Grosso, Pará, Rondônia e Roraima9.
Sapajus apella (macaco-prego), Diogo Lagroteria.
56
Figura	 1.	 Eosinófilo	 apresentando	 segmentação	 nuclear,	 vacuolização	 citoplasmática	 e	
granulação	intensamente	eosinofílica	(à	esquerda)	e	agregado	plaquetário	(seta),	Panótico,	
1000x.
Figura	 2.	 Linfócito	 grande	 ao	 centro,	 apresentando	 basofilia	 nuclear	 intensa,	 núcleo	
arredondado,	 citoplasma	 abundante	 de	 coloração	 azul-acinzentada	 e	 plaquetas	 em	
monocamada	(seta),	Panótico,	1000x.
Figura 1. Eosinófilo apresentado segmentação nuclear, vacuolização citoplasmática e granulação 
intensamente eosinofílica (à esquerda) e agregado plaquetário (seta). Panótico, 1000x.
Figura 2. Linfócito grande ao centro, apresentando núcleo arredondado e citoplasma abundante de 
coloração azul-acinzentada e plaquetas em monocamada (seta). Panótico, 1000x.
57
Figura	 3.	 Neutrófilo	 maduro	 em	 animal	 saudável,	 citoplasma	 incolor,	 contendo	
granulação	basofílica	fina	e	discreta	e	visualização	de	Corpúsculo	de	Barr	(cromatina	
sexual),	Panótico,	1000x.
Figura	 4.	 Monócito	 (à	 esquerda)	 apresentando	 endentações	 nucleares,	 cromatina	
frouxa	e	 citoplasma	abundante	de	 coloração	azul-acinzentada.	 Linfócito	maduro	 (à	
direita)	com	basofilia	nuclear	e	escassez	citoplasmática.
Figura 3. Neutrófilo maduro em animal saudável, citoplasma incolor, contendo granulação basofí-
lica fina e discreta e visualização de Corpúsculo de Barr (cromatina sexual). Panótico, 1000x.
Figura 4. Monócito (à esquerda) apresentando endentações nucleares, cromatina frouxa e citoplas-
ma abundante de coloração azul-acinzentada. Linfócito maduro (à direita) com basofilia nuclear e 
escassez citoplasmática. Panótico, 1000x.
58
Cacajao calvus rubicundus (uacari-vermelho), Diogo Lagroteria.
59
Sapajus nigritus 
(Goldfuss, 1809)
Nome popular (português/inglês): Macaco-prego, mico / Black-
-horned Capuchin, Black Capuchin, Crested Black Capuchin.
Ameaças e Status de Conservação: Em nível global e nacional, 
essa espécie foi classificada como “Quase ameaçada” (Near Thre-
atened - NT), principalmente por ser endêmica de Mata Atlânti-
ca, estar sofrendo com a hibridação e pelas ameaças relacionadas às 
ações antrópicas que culminam em perda e fragmentação de habitat27.
Distribuição Geográfica: Táxon registrado na Mata Atlânti-
ca de Minas Gerais, Espírito Santo, Rio de Janeiro e São Paulo27. 
Fonte:	Acervo	CPB	(2011)Sapajus nigritus nigritus, “Eloísa Neves - Banco de Imagens ICMBio/CPB”.
60
Figura	1	-	Eritrócitos	maduros	em	esfregaço	sanguíneo	e	presença	de	plaquetas	em	monocamada,	
Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura	2	-	Neutrófilo	segmentado	em	cauda	de	esfregaço	sanguíneo,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 1. Eritrócitos maduros em esfregaço sanguíneo e presença de plaquetas em monocamada. 
Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 2. Neutrófilo hipersegmentado em cauda de esfregaço sanguíneo. Wright-Giemsa, 1000x.
61
Figura	 3	 -	 Neutrófilo	 hipersegmentado	 em	 cauda	 de	 esfregaço	 sanguíneo,	 Wright-Giemsa,	
1000x.
Figura	4	-	Linfócito	típico,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 4. Linfócito típico. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 3. Neutrófilo hipersegmentado em cauda de esfregaço sanguíneo. Wright-Giemsa, 1000x.
62
Figura	5	-	Linfócito	típico,	Wright-Giemsa,	1000x
Figura	 6	 -	 Neutrófilos	 maduros	 (A),	 neutrófilo	 degenerado	 (B)	 e	 basófilo	 (C)	 em	
cauda	de	esfregaço	sanguíneo,	Wright-Giemsa,	1000x.
A
B
A
C
Figura 5. Linfócito típico. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 6. Neutrófilos maduros (A), neutrófilo degenerado (B) e basófilo (C) em cauda de esfregaço 
sanguíneo. Wright-Giemsa, 1000x.
63
Figura	 7	 -	 Monócito	 apresentando	 núcleo	 com	 cromatina	 frouxa,	 citoplasma	
azulado	e	pequenos	vacúolos,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 8. Neutrófilos em diferentes graus de degeneração (A, B e C) e linfócito (D) em cauda de 
esfregaço sanguíneo. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 7. Monócito apresentando núcleo com cromatina frouxa, citoplasma azulado e pequenos 
vacúolos. Wright-Giemsa, 1000x.
D
A
C
B
B
64
Saguinus midas (sagui-da-mão-dourada), Diogo Lagroteria.
65
Plecturocebus vieirai 
(Gualda-Barros, Nacimento & Amaral, 2012)
Nome popular (português/inglês): Guigó, sauá, zogue-zogue / Titi Monkey, 
Vieira’s Titi.
Ameaças e Status de Conservação: Encontra-se na categoria de “Dados In-
suficientes” (Data Deficient - DD) em escala nacional por ter sido recente-
mente descrita e ainda não foi avaliada pela IUCN29, 30. Desse modo, ca-
recem informações para a definição do seu status de conservação, mas 
acredita-se que o táxon já sofra ameaças relacionadas à perda de habitat29. 
Distribuição Geográfica: Espécie endêmica do Brasil, avistada nos estados
 de Mato Grosso e Pará30.
Fonte:	Franciele	Reis	(2019) Plecturocebus vieirai (sauá), Francielly Reis.
66
Figura	1.	Eritrócitos	maduros,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura	2.	Neutrófilos	segmentados,	Wright-Giemsa,	1000x.
Figura 1. Eritrócitos maduros. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 2. Neutrófilos segmentados. Wright-Giemsa, 1000x.
67
Figura	 3.	 Neutrófilo	 hipersegmentado	 e	 presença	 de	 hemácias	 policromatofílicas	 (seta)	 em	
cauda	de	esfregaço	sanguíneo,	Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura	4.	Linfócitos	típicos	e	codócitos	(hemácias	em	alvo)	Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura 3. Neutrófilo hipersegmentado e presença de hemácias policromatofílicas (seta) em cauda 
de esfregaço sanguíneo. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura 4. Linfócitos típicos e codócitos (hemácias em alvo). Wright-Giemsa, 1000x.
68
Figura	 6.	 Linfócito	 típico	 (A)	 e	 monócito	 (B)	 apresentando	 cromatina	 frouxa,	
citoplasma	azulado	e	vacúolos,	Wright-Giemsa,	1000x.
A
B
Figura 6. Linfócito típico (A) e monócito (B) apresentando cromatina frouxa, citoplasma azulado e 
vacúolos. Wright-Giemsa, 1000x.
69
Ateles chamek (macaco-aranha-da-cara-preta), Francielly Reis.
70
Chiropotes utahickae 
(Hershkovitz, 1985)
Nome popular (português/inglês): Cuxiú/ Uta Hick’s Bearded Saki, Uta Hick’s 
Bearded Saki.
Ameaças e Status de Conservação: Espécie categorizada em escala nacional 
como “Vulnerável” (VU) e em escala global como “Em Perigo” (Endangered 
- EN). É observada em apenas duas Unidades de Conservação de Proteção 
Integral e possui como ameaças a caça, a fragmentação de habitat, o desmata-
mento e a construção de estradas e hidrelétricas31.
Distribuição Geográfica: Chiropotes utahickae é espécie endêmica do Brasil, 
habitando a Floresta Amazônica nos estados de Mato Grosso e Pará32.
Chiropotes utahickae (cuxiú), Francielly Reis.
71
Figura	6.	Hemácias	maduras	em	monocamada	e	presença	de	agregado	plaquetário.	
Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura 1. Hemácias maduras em monocamada e presença de agregado plaquetário. 
Wright-Giemsa, 1000x.
Figura	1.	Monócito	apresentando	vacuolizações	citoplasmáticas.	Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura 2. Monócito apresentando vacuolizações citoplasmáticas. Wright-Giemsa, 1000x.
72
Figura	3.	Linfócito	típico	apresentando	fragmento	nuclear.	Wright-Giemsa,	1000x.	
Figura 4. Linfócitotípico apresentando fragmento nuclear. Wright-Giemsa, 1000x.
Figura	2.	Linfócito	típico.	Wright-Giemsa,	1000x.	Figura 3. Linfócito típico. Wright-Giemsa, 1000x.
73
Figura	5.	Neutrófilo	hiperssegmentado.	Panótico,	1000x.	
Figura 6. Neutrófilo hipersegmentado apresentando basofilia a granulações finas 
citoplasmáticas. Panótico, 1000x.
Figura	4.	Eosinófilo	apresentando	bilobação	e	granulação	típica.	Wright-Giemsa,	1000x.	Figura 5. Eosinófilo apresentando bilobação e granulação típica. Agregário plaquetário (seta). Wri-ght-Giemsa, 1000x.
74
Figura 7. Linfócito apresentando basofilia e vacuolizações citoplasmáticas (linfócito 
reativo). Panótico, 1000x. 
Figura 7. Linfócito apresentando basofilia e vacuolizações citoplasmáticas (linfócito reativo). 
Panótico, 1000x.
75
Lagotrhix lagothricha (macaco barrigudo), Diogo Lagroteria.
76
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