microbiol material laboratorial

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Universidade Estácio de Sá – Campus Petrópolis 
 
Disciplina: Microbiologia Básica 
Curso: Enfermagem/ Fisioterapia 
Professora: Luciana Silva da Costa 
Aula Prática Nº 2 
Tema: Material Laboratorial usual em p ráticas microbiológicas 
 
Lista de Materiais mais comuns em práticas microbiológicas Ilustração 
Material Permanente 
Autoclave - câmara de vapor com parede dupla, equipada com dispositivos 
que permitem o enchimento da câmara com vapor saturado e sua manutenção 
em determinadas temperatura e pressão por quaisquer períodos de tempo. 
Equipamento indispensável ao laboratório de microbiologia na esterilização 
de meios de cultura, água, suspensões etc. (ver modo de operação
1
) 
 
Estufas de Esterilização (Fornos de Pasteur) - esteriliza a seco toda 
vidraria convenientemente acondicionada, a temperatura de 170 a 200
o 
C por 
1-2 horas. 
 
 
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 Ver ESTERILIZAÇÃO EM AUTOCLAVE ao final do documento 
Refrigerador - utilizado na conservação de culturas de microrganimos sob 
baixa temperatura, diminuindo o tempo de geração 
 
Estufa bacteriológica - favorece o crescimento de microrganis mos pela 
incubação
2
 na temperatura adequada. 
 
Mesa agitadora incubadora (rumbeira) - favorece o crescimento de 
microrganismos aeróbios, pela dissolução do oxigênio no meio, através da 
agitação da mesa, em movimentos rotatórios. 
 
 
2
 Incubação = manutenção do meio semeado em determinadas condições para promover o desenvolvimento dos microrganismos. 
Cabine de fluxo laminar - câmara asséptica, dotada de exaustor e lâmpada 
fluorescente, sendo utilizada em repiques de microrganismos. 
 
Fermentador - equipamento onde ocorrem as fermentações, podendo ser 
dotado de sistemas de agitação, aeração, refrigeração. 
 
Vidraria 
Tubo de ensaio (tubo de cultura) - util izado no cultivo de microrganismos 
em pequeno volume de meio e na conservação de culturas puras de 
microrganismos. 
 
Estante de Tubo de Ensaio – suporte para os tubos de ensaio em uso ou 
acondicionados com inóculos . 
Placa de Petri - facilita o isolamento de microrganismos devido à grande 
superfície de crescimento que apresenta, possibilitando o aparecimento de 
colônias
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 separadas. 
 
Pipeta - para diluir preparações diversas e inocular
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 culturas l íquidas 
 
Pipeta Pasteur - é um tubo de vidro espichado em capilar, utilizada para 
transportar pequenos volumes de l íquido 
 
Alça de Drigalsky - obtida a partir de uma pipeta Pasteur longa, dobrada em 
ângulo reto e depois em 45C na chama. É utilizada para espalhar 
microrganismos em meio de cultura sólido. 
 
 
3
 Colônia = aglo merado de cé lulas em meio sól ido, gera lmente or iginadas de uma única cé lula p rogenitora. 
4
 Inocular (ou Semear) = inser ir , in troduzi r / Inóculo (ou semente) = concentração de células suf icientes para cul t iva r um meio com bom rendimento . 
Balão de fundo chato - utilizado geralmente para guardar meios de cultura. 
 
Erlenmeyer - utilizado para propagação celular de microrganismos em meio 
líquido sob agitação em mesa agitadora. 
 
Fernbach - idem 
 
Lâmina - para examinar microrganismos ao microscópio. 
 
Lâmina Escavada - possui uma ou duas depressões possibilitando observar a 
mobilidade de microrganismos suspensos numa gota de líquido (Ensaio em 
gota pendente) 
 
Lamínula - uti lizada para recobrir preparações microscópicas “in vivo . 
 
Materiais ut i l izados em t itulações, destilações, preparações de solução e de meios de cultura 
a. Bequer 
 
b. bastão de vidro 
 
c. bureta 
 
d. funil 
 
e. proveta 
 
f . balão volumétrico 
 
g. condensador 
 
Diversos 
Lápis dermatográfico - utilizado para escrever em superfície de vidro 
 
Algodão bruto (ou cardado) - serve para proteger o material esterilizado, do 
contato com o ar ambiente. 
 
Cabo de Kolle ou Alça Bacteriológica - feito com material isolante, 
adaptado em três formas (círculo, ele, agulha). Serve de suporte para um fio 
de platina ou uma liga níquel -cromo, sendo utilizado em inoculação de 
microrganismos . 
 
Desinfecção 
Desinfecção do ar: 
solução de hipoclorito de sódio a 1% (Vaporização) 
lâmpadas de luz ultravioleta. 
solução de formalina (formol a 40%) (Vaporização, em ambientes não ocupados ) 
Desinfecção da bancada: 
Solução detergente (Clorexidina) seguida de uma solução alcoólica a 70%. 
Desinfecção da vidraria: 
vidraria contaminada - deverá ser inicialmente esterilizada em autoclave para que toda fl ora presente seja destruída e, em seguida 
lavada com uma solução detergente ou sabão neutro; 
vidraria sem contaminação - idem ao anterior, porém sem necessidade de autoclavação. 
Acondicionamento adequado das vidrarias após sua ut il ização 
Placas de Petri - embrulhadas com papel, geralmente formando conjunto de 3 unidades. A quantidade depende da necessidade do 
trabalho. 
Pipetas - obtura-se as boquilhas com mecha de algodão (1cm) para filtrar o ar soprado e para proteger o operador durante a 
manipulação; em seguida são enroladas uma a uma com papel, anotando a capacidade de cada uma. 
Tubos de ensaio, balões de fundo chato, Erlenmeyers, fernbachs - são preparados introduzindo-se um tampão de algodão cardado 
na boca do recipiente. Esse tampão deve ser feito, enrolando o algodão no sentido da fibra em quantidade suficiente para facilitar o 
manuseio, isto é, não deve ser nem muito apertado, nem muito frouxo. 
Lâminas - mergulhadas em solução alcoólica, ficam aptas a serem uti lizadas a qualquer momento, evitando paralelamente que s ejam 
arranhadas. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
ATENÇÃO!! Toda vidraria utilizada no laboratório de microbiologia antes de ser preparada para esteri lização deverá estar limpa e 
seca. 
 
ESTERILIZAÇÃO EM AUTOCLAVE 
 
Operação: ligar o aparelho à rede elétrica. Após a colocação do material dentro do autoclave, a tampa é fechada e a torneira de 
remoção de ar ou vapor é deixada aberta para remover todo o ar. Quando todo o ar for removido, deixe que um fluxo de vapor 
fluente persista por cerca de 5 minutos, antes de fechar a torneira. A partir de então a pressão internamente irá aumentar e chegar à 
pressão de esterilização usada, que é de 15 lb/pol
2
, ou 1atm, ou 1 kgf/cm
2
, correspondendo a uma temperatura de 121
0
C. O tempo de 
exposição do material no interior deste equipamento irá depender do volume de líquido a ser esterilizado. Para pequenos volumes, 
até 3 litros, podem ser esterilizados dur ante 20 a 30 minutos a uma pressão de 15 lb/pol
2
. Com relação a maiores volumes, será 
necessário, uma exposição mais prolongada. Quando a temperatura reque rida para a esterilização é alcançada, deve -se começar a 
contar o tempo, usando um relógio de laboratório (com alarme). Decorrido o tempo desliga -se o aparelho da corrente elétrica e 
mantém-se a autoclave e a torneira de ar e vapor fechados, até o manômetr o voltar ao ponto zero, pois quando a pressão da autoclave 
é aliviada rapidamente, os líquidos dentro dos tubos e frascos fervem violentamente, fazendo com que os tampões sejam 
arremessados para fora dos mesmos. 
 Concluída a esterilização, abre-se a torneira de vapor; em seguida a tampa do autoclave é levantada.