Multiplicacao planta medicinal Brosimum gaudichaudii em meio de cultura - Maurizia Edson Sibov

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Revista Fitos. Rio de Janeiro. 2019; 13(1): 61-73 | e-ISSN: 2446-4775 | www.revistafitos.far.fiocruz.br | CC-BY 4.0 
Avaliação do potencial antioxidante e anti-Helicobacter pylori in vitro de 
extratos de plantas medicinais utilizadas popularmente na região amazônica 
 
ARTIGO DE PESQUISA 
ETNOBOTÂNICA 
Multiplicação da planta medicinal Brosimum 
gaudichaudii Trécul (Moraceae) em meio de cultura 
Brosimum gaudichaudii Trécul (Moraceae) medicinal plant multiplication in 
culture medium 
DOI 10.17648/2446-4775.2019.671 
Carneiro, Maurízia Fátima1 ; Duarte, Edson Ferreira2 ; Vargas, Laureano Magno1 ; Sibov, Sérgio Tadeu2 ; 
Conceição, Edemilson Cardoso da3 ; Nogueira, João Carlos Mohn4. 
1Agência Goiana de Assistência Técnica, Extensão Rural e Pesquisa Agropecuária/ Estação Experimental Nativas do Cerrado, Laboratório 
de Cultura de Tecidos Vegetal. Rua R2, 1328, Chácara Califórnia, CEP: 74690-815, Goiânia, GO, Brasil. 
2Universidade Federal de Goiás, Instituto de Ciências Biológicas, Campus Samambaia, Av. Esperança s/n. CEP: 74690-900, Goiânia, 
GO, Brasil. 
3Universidade Federal de Goiás, Faculdade de Farmácia, Av. Universitária com 5ª Avenida s/n, Setor Leste Universitário, CEP: 74605-
220, Goiânia, GO, Brasil. 
4Universidade Estadual de Goiás, Campus Palmeiras, Rua S-7, S/Nº, Setor Sul, CEP: 76190-000. Palmeiras de Goiás, GO. 
*Correspondência: maurizia@emater.go.gov.br 
Resumo 
Diante da importância da mama-cadela no tratamento do vitiligo, este estudo teve como objetivo aprimorar 
técnicas de micropropagação para a produção in vitro a partir de sementes e segmentos nodais. Plant 
Preservative Mixture (PPM) e Hipoclorito de Sódio, em diferentes concentrações, foram usados para 
desinfestação de segmentos nodais e sementes. As sementes com tegumento, sem tegumento e eixo 
epicótilo-radícula foram testadas em meio 1/2 Murashige e Skoog (MS) para determinar a germinação. Para 
a multiplicação e enraizamento foram usados segmentos nodais axênicos jovens e/ou lignificados, em meio 
1/2 MS contendo diferentes concentrações de citocininas e auxinas. Constatou-se que o PPM a 4,0 e 5,0 
mL.L-1 proporcionou os menores graus de contaminação, enquanto o hipoclorito não se mostrou efetivo. As 
sementes sem tegumento apresentaram 100% de germinação. Plântulas jovens cultivadas em meio 1/2 MS 
com 1,0 mg.L-1 BAP produziram maior número de brotos, mas estes não apresentaram um crescimento 
adequado. O melhor crescimento de brotos e raízes foi obtido quando se usaram segmentos nodais 
lignificados em meio 1/2 MS com BAP, 1,0 mg.L-1 e 2,0 mg.L-1 de AIA. O maior potencial de multiplicação 
ocorreu para sementes sem tegumento e com segmentos nodais lignificados. 
Palavras-chave: Mama-cadela. Fitoterápico. Biotecnologia. Cultura de tecidos. Fitoreguladores. 
 
https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
mailto:maurizia@emater.go.gov.br
 
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Multiplicação da planta medicinal Brosimum gaudichaudii Trécul (Moraceae) em 
meio de cultura 
Maurízia Fátima Carneiro, et al. 
Abstract 
Due mama-cadela importance to treatments against vitiligo, in this study the aim was to improve 
micropropagation techniques to in vitro propagation with seeds and nodal segments. Plant Preservative 
Mixtures (PPM) and Sodium hypochlorite in different concentrations were used to disinfestation of nodal 
segments and seeds. Seeds with and without tegument and epicotyl-radicule axis were tested in 1/2 
Murashige & Skoog (MS) medium to determine the germination. For multiplication and rooting, youths and 
lignifieds axenic nodal segments was used in 1/2 MS medium with different cytokinins and auxins 
concentrations. The PPM at 4.0 and 5.0 mL.L-1 proportioned lower contaminations levels, but the 
hypochlorite was not effective. The seeds without tegument showed 100% of germination. Young plants 
cultivated in 1/2 MS with BAP 1.0 mg.L-1 showed higher numbers of shoots, but it did not grow properly, 
however the better grow of shoots and roots was obtained when was used nodal segments lignifieds in 1/2 
MS with BAP and AIA at 1.0 mg.L-1 and 2.0 mg.L-1. The higher potential of multiplication occur to seeds 
without tegument and with nodal lignified segments. 
Keywords: Mama-cadela. Phytotherapic. Biotechnology. Tissue culture. Phytoregulators. 
Introdução 
Brossimum gaudichaudii Trecul. (Moraceae) é encontrada nos domínios fitogeográficos da Amazônia, 
Caatinga, Cerrado e Mata Atlântica, conhecida vulgarmente como mama-cadela, mamica-de-cadela, 
conduru e inharé[1] entre outros nomes populares. Estudos fitoquímicos realizados[2] indicam a presença de 
psoralenos e bergaptenos, pertencentes a classe das furanocumarinas, em todas as partes do vegetal, com 
predominância no córtex da raiz. Essas substâncias são usadas para o tratamento do Vitiligo e outras 
enfermidades, através de aplicação tópica e ingestão do medicamento[3-6]. 
A demanda por estes fármacos é considerada grande, e a sua obtenção se dá pela retirada de parte ou até 
mesmo pela coleta da planta inteira pelas populações locais e também por laboratórios farmacêuticos. Esta 
prática extrativista vem, ao longo do tempo, diminuindo o número de plantas de mama-cadela na natureza[6-
10]. Outro fator é a sua inserção no cerrado, que está em constante mudança pela expansão da fronteira 
agrícola e por queimadas naturais, podendo levá-la à extinção nesse domínio fitogeográfico, assim como 
nos outros em que a espécie ocorre. Estudos sobre a conservação e propagação desta espécie ajudam a 
minimizar a perda da biodiversidade e a sua manutenção na natureza[8]. 
Os métodos usuais para obtenção de mudas de espécies nativas são por sementes, estaquia, borbulhia e 
micropropagação. A micropropagação é uma ferramenta bastante significativa para acelerar a multiplicação 
e produção de número considerável de novos indivíduos, bem como para propagar espécies de difícil 
multiplicação obtendo mudas selecionadas, sadias, livre de fungos, vírus, bactérias e com alta qualidade 
genética[11-13]. A dificuldade desta técnica está na taxa de multiplicação in vitro não apresentar resultados 
satisfatórios, principalmente quando as sementes são recalcitrantes, apresentarem baixa longevidade e alto 
índice de contaminação endógena[5,14]. 
Existem vários protocolos que foram estudados para diversas espécies vegetais, porém o sucesso do 
procedimento não depende só do protocolo, mas sim de alguns fatores importantes, como o tamanho de 
explante, meio de cultura, regulador de crescimento, estado fisiológico e fitossanitário da planta matriz, 
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explante no momento da coleta e a época da coleta[15,16,13]. Neste sentido, estudos de germinação de 
sementes e propagação por brotações in vitro, se tornam tão importantes[14]. 
Embora existam meios de cultura específicos para espécies arbóreas, o mais usual na multiplicação in vitro 
da mama-cadela é o MS (Murashige e Skoog)[16], que contém substâncias essenciais para o crescimento e 
o desenvolvimento dos explantes, que aliado ao balanço entre a citocinina BAP (6-Benzilaminopurina) e as 
auxinas ANA (ácido naftalenoacético), AIB (Ácido indolil-3-butírico) e AIA (ácido indol-3-acético), promove 
uma maior taxa de multiplicação e enraizamento[17]. No entanto, as pesquisas já realizadas, para 
multiplicação in vitro de mama-cadela não conseguiram estabelecer um protocolo eficiente, principalmente 
por suas sementes e propágulos apresentarem um alto índice de contaminantes e o desenvolvimento das 
plântulas muito lento. Estes dois fatores têm impedido a obtenção de umaboa taxa de multiplicação e 
dificultado o processo de enraizamento das plântulas em laboratório[18,19,5]. Considera-se que as sementes 
de B. gaudichaudii são recalcitrantes, perdendo a sua viabilidade após secagem[3]. O objetivo deste trabalho 
foi contribuir para estabelecimento de um protocolo para a germinação, multiplicação e enraizamento de 
mama-cadela utilizando diferentes meios de cultura com concentrações variáveis de citocinina e de auxina. 
Material e métodos 
Para a condução dos estudos sobre micropropagação de mama-cadela foram usados segmentos nodais 
de brotações jovens e sementes. As brotações foram obtidas de plantas de mama-cadela da área 
arborizada da Escola de Agronomia e Engenharia de Alimentos da Universidade Federal de Goiás, no 
município de Goiânia, Goiás, no mês de outubro de 2017. As sementes foram obtidas de frutos coletados 
no município de Mairipotaba, localizado na Mesorregião Sul Goiano do estado de Goiás, situado na latitude 
S17’12’’13º, longitude W49’33’’53,8º e altitude de 657 m. Os frutos foram colhidos no mês de setembro de 
2016. Para a multiplicação e enraizamento in vitro, foram usados segmentos nodais axicênicos de plântulas 
de laboratório em diferentes estágios de lignificação. 
O trabalho de micropropagação foi desenvolvido no laboratório de Cultura de Tecidos de Plantas da Emater, 
localizado na Estação Experimental Nativas do Cerrado, em Goiânia, Goiás. 
Utilizaram-se os meios de cultura MS - Murashige e Skoog e WPM - Wood Plant Medium em diferentes 
concentrações, de acordo com os objetivos desejados. O meio MS foi suplementado com 6,5 g de ágar, 30 
g de sacarose e o pH aferido para 5,7-5,8. No meio WPM, somente a sacarose foi alterada para 20 g. Os 
meios após serem distribuídos em recipientes de vidro de 250 mL e, ou tubos de ensaios de 16 cm x 2,5 
cm foram esterilizados em autoclave por 20 minutos a 121 ºC. Após o estabelecimento das sementes e/ou 
segmentos nodais, em câmara de fluxo laminar, os experimentos foram mantidos em sala de crescimento 
sob irradiância de 40 µmol.m-2.s-1, à temperatura de 25 ± 1 ºC e fotoperíodo de 16/8 h (claro/escuro). 
Experimentos de desinfestação química 
Os segmentos nodais contendo gemas foliares, coletados no campo, passaram por processos de 
desinfestação química, conforme recomendação do fabricante do PPM - Plant Preservative Mixture®[20] em 
relação a coleta e descanso em laboratório e, em seguida, foram estabelecidos em meio de cultura 1/2 MS 
contendo diferentes concentrações do PPM®. Os segmentos uniformizados para 2,0 cm foram 
estabelecidos em tubos de ensaio com 20 mL do meio 1/2 MS e em diferentes concentrações de PPM (1,0; 
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2,0; 3,0; 4,0 e 5,0 mL.L-1). Os seguimentos nodais foram inoculados de forma a estarem totalmente imersos 
no meio de cultura, sendo avaliados quanto ao desenvolvimento de contaminantes, por um período de 30 
dias, com relação a: cor do segmento, cor da gema e ocorrência de brotações. 
Sementes obtidas de frutos colhidos no ponto de maturação máxima, ou seja, com coloração alaranjada, 
foram lavadas em água corrente por 10 minutos e imersas em álcool 70% durante 1 minuto. Após a limpeza, 
estas foram usadas para teste de desinfestação, em concentrações diversas de hipoclorito (1,0; 2,0; 3,0 e 
4,0 % de cloro ativo) e tempo de imersão de 10, 20 e 60 minutos e de 12 e 24 horas. Após aplicação dos 
tratamentos e em câmara de fluxo laminar, as sementes foram lavadas três vezes em água destilada e 
autoclavada e, em seguida, retirado o seu tegumento e então, inoculadas em frascos de vidro de 250 mL, 
com 40 mL do meio 1/2 MS, sem uso de fitoregulador. A avaliação da germinação foi feita aos seis dias, o 
número de sementes contaminadas por um período de 20 dias e o desenvolvimento das plântulas aos 60 
dias conferindo o tamanho do broto, número de folhas e número de gemas. 
Experimentos de germinação in vitro 
Para estudos utilizando sementes, selecionou-se uma árvore que fosse representativa da espécie, e a 
coleta dos frutos foi realizada em uma sequência de três semanas consecutivas, sendo a primeira no dia 
17 de setembro de 2016. Na primeira coleta, os frutos se apresentavam na cor verde com pequenos pontos 
alaranjados (de vez); na segunda coleta os frutos apresentavam cor amarelo–alaranjado (início de 
amadurecimento) e na terceira coleta os frutos apresentavam de cor alaranjada intensa (ponto máximo de 
maturação). Para os estudos de germinação e multiplicação foram usadas sementes de frutos da primeira 
coleta, no ponto de vez. 
No laboratório, as sementes extraídas dos frutos, no ponto de vez, foram lavadas em água corrente por 10 
minutos e em câmara de fluxo laminar, desinfestadas quimicamente com álcool etílico a 70% por 1 minuto, 
imersas por 30 minutos em solução de hipoclorito com 2,0% de cloro ativo e lavadas três vezes em água 
destilada e autoclavada. 
Em outro experimento, frascos de vidro contendo 40 mL do meio 1/2 MS receberam sementes de mama-
cadela com o tegumento, sem o tegumento e somente o ápice germinativo, para avaliar as variáveis 
germinação (%), tempo médio de germinação (TMG) e índice de velocidade de germinação (IVG)[21], por um 
período de 30 dias. Aos 60 dias, as plântulas foram avaliadas quanto ao número e tamanho dos brotos, número 
de gemas e tamanho da raíz, quando se retiraram os segmentos nodais para multiplicação. Em seguida, a 
planta base, contendo uma gema foliar, foi transplantada para o mesmo meio e mantidas por mais 60 dias, 
para rebrota, quando se avaliou o número de brotos, número de gemas e o tamanho do maior broto. 
Para a germinação e crescimento in vitro da mama-cadela, sementes com tegumento foram desinfestadas 
quimicamente e estabelecidas em frascos de vidro com 40 mL de meios MS na concentração normal (MS); 
metade da concentração salina (1/2 MS) e um terço da concentração salina (1/3 MS), e do meio WPM em 
concentração normal (WPM) e metade da concentração salina (1/2 WPM). A germinação da semente foi 
considerada quando se observou o crescimento do eixo epicótilo-radícula, com observações aos 20, 30 e 
40 dias. Aos 140 dias aferiu-se o crescimento das plântulas através do número de brotos, número de gemas 
foliares e o tamanho do maior broto. 
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Avaliou-se também, a germinação de mama-cadela em diferentes índices de pH. As sementes sem 
tegumento provenientes da segunda coleta e que apresentavam cor amarelo–alaranjado, ou seja, no início 
do amadurecimento, foram desinfestadas quimicamente e inoculadas em recipientes de vidro contendo 40 
mL de meio 1/2 MS com o pH ajustado para 3,5; 4,5; 5,5; 6,5 e 7,0. Em cada tratamento utilizaram-se 
sementes com e sem o tegumento e a germinação (em %) foi considerada quando houve a formação de 
hipocótilo com radícula, observadas por um período de 30 dias. 
Experimentos de multiplicação com reguladores de crescimento e origem dos explantes 
Na multiplicação e crescimento de mama-cadela foram utilizados segmentos nodais de 2,0 cm, contendo 
uma gema foliar. Os explantes foram retirados de plântulas de B. gaudichaudii axênicas com 60 dias no 
laboratório, onde foi feito um corte em bisel na sua base e, em seguida, estabelecidos em tubos de ensaio 
contendo 20 mL de meio 1/2 MS acrescido de ANA 0,3 mg.L-1 e BAP (1,0; 2,0 e 3,0 mg.L-1). As avaliações 
do número de brotos gerados foram feitas aos 5, 10, 15, 20,25, 30 e 60 dias. 
Os estudos de crescimento e enraizamento de mama-cadela deram-se com segmentos nodais de brotações 
mantidas em laboratório por 240 dias, que passaram por duas podas apicais que apresentavam lignificação. 
As brotações foram divididas em: parte basal, mediana e ápice caulinar contendo uma gema lateral. A parte 
basal foi caracterizada por apresentar as folhas totalmente expandidas; a parte mediana as folhas estando 
em processo de crescimento e o ápice caulinar (1º entrenó) com as folhas em início de desenvolvimento. 
Estes explantes foram estabelecidos em tubos de ensaio contendo 20 mL do meio 1/2 MS acrescido de 1,0 
mg.L-1 de BAP e 2,0 mg.L-1 de ácido indolacético (AIA). Após 45 dias avaliou-se o número de brotos, 
tamanho do maior broto, número de folhas, número de gemas, número de raíz e tamanho da maior raíz. 
Análises estatísticas 
O delineamento experimental, para todos os experimentos, foi o inteiramente casualizado com 10 
repetições, sendo cada vidro e, ou tubo de ensaio, com um explante, uma repetição. Todos os dados obtidos 
para os diferentes ensaios foram submetidos à análise não paramétrica, com as médias comparadas pelo 
teste de Kruskal-Wallis em nível de 5% de significância[22]. 
Resultados 
Desinfestação química 
O uso de PPM, em diferentes concentrações, para impedir o desenvolvimento de contaminantes no 
processo inicial do estabelecimento de segmentos nodais, colhidos no campo, não foi eficiente, com 100% 
de contaminação na concentração de 1,0 mL.L-1 e, nas concentrações mais elevadas, o índice ficou em 
30%. Ao final de 30 dias nenhum explante apresentou brotação e apresentavam cor preta indicando morte, 
provavelmente pela ação fitotóxica do produto sobre os segmentos nodais e as gemas da mama-cadela 
(TABELA 1). 
 
 
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TABELA 1: Efeito do Plant Preservative Mixture® (PPM) em diferentes concentrações, na porcentagem de 
descontaminação, brotação e aspecto dos segmentos nodais e gemas de (Brosimum gaudichaudii Trécul - Moraceae), 
aos 30 dias. 
Tratamento Contaminantes (%) Brotação (%) Segmentos de cor preta (%) 
Gema de cor 
preta (%) 
1/2 MS 100 0 0 0 
1/2 MS + PPM 1,0 mL/L-1 100 0 0 0 
1/2 MS + PPM 2,0mL/L-1 60 0 40 40 
1/2 MS + PPM 3,0mL/L-1 70 0 30 30 
1/2 MS + PPM 4,0mL/L-1 30 0 70 70 
1/2 MS + PPM 5,0mL/L-1 30 0 70 70 
 
A ação do hipoclorito de sódio como agente descontaminante de sementes de mama-cadela apresentou 
diferença significativa entre as várias concentrações de cloro ativo. A contaminação das sementes iniciou 
com 2 dias após o estabelecimento in vitro e com 20 dias a grande maioria apresentou 100% de 
contaminação (TABELA 2) e, portanto, não apresentaram crescimento de plântulas. As sementes que 
germinaram e não contaminaram somente os tratamentos, com 1,0% de cloro ativo com 20 minutos e 12 
horas de imersão e 2% de cloro ativo e 1 hora de imersão, tiveram crescimento das plântulas, mas de forma 
não satisfatória, indicando o alto grau de contaminantes das sementes retiradas de frutos quando colhidos 
no ponto máximo de maturação. 
TABELA 2: Germinação (Ger), Contaminação (%) e desempenho médio de plântulas de mama-cadela (Brosimum 
gaudichaudii Tréc. - Moraceae) de frutos colhidos no ponto máximo de maturação, quando submetidas ao tratamento 
com Hipoclorito de sódio em diferentes concentrações de cloro ativo (Cl) e tempo de imersão das sementes. 
Tratamento 
Germinação 
(%) 
Contaminação 
(%) Desenvolvimento 
6 dias 2 dias 10 dias 20 dias TB (cm) NF NG 
1,0% Cl por 10 min 40,0 d 30,0 f 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
1,0% Cl por 20 min 10,0 f 40,0 e 80,0 c 80,0 c 0,6 c 0,8 a 0,6 b 
1,0% Cl por 01 hora 10,0 f 50,0 d 90,0 bc 90,0 bc 0,0 d 0,0d 0,0 c 
1,0% Cl por 12 horas 50,0 c 60,0 c 80,0 c 80,0 c 1,9 b 0,3c 0,5 b 
1,0% Cl por 24 horas 0,0 g 60,0 c 60,0 e 100,0 a 0,0 d 0,0d 0,0 c 
2,0% Cl por 10 min 10,0 f 50,0 d 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
2,0% Cl por 20 min 20,0 e 40,0 e 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
2,0% Cl por 01 hora 50,0 c 0,0 h 40,0 f 40,0 e 4,9 a 0,7b 1,5 a 
2,0% Cl por 12 horas 10,0 f 50,0 d 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
2,0% Cl por 24 horas 10,0 f 60,0 c 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
3,0% Cl por 10 min 0,0 g 90,0 b 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
3,0% Cl por 20 min 0,0 g 60,0 c 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
3,0% Cl por 01 hora 10,0 f 90,0 b 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
3,0% Cl por 12 horas 10,0 f 30,0 f 90,0 b 90,0 b 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
3,0% Cl por 24 horas 10,0 f 40,0 e 90,0 b 90,0 b 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
4,0% Cl por 10 min 60,0 b 100,0 a 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
4,0% Cl por 20 min 0,0 g 30,0 f 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
4,0% Cl por 01 hora 10,0 f 50,0 d 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
4,0% Cl por 12 horas 100,0 a 20,0 g 70,0 d 70,0 d 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
4,0% Cl por 24 horas 50,0 c 0,0 h 100,0 a 100,0 a 0,0 d 0,0 d 0,0 c 
* Médias seguidas por letras distintas nas colunas, diferem entre si a 5% de probabilidade pelo teste de Kruskal-Wallis. 
∗TB=Tamanho do Broto; NF=Número de Folhas; NG=Número de Gemas. 
 
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Germinação de sementes in vitro 
No experimento para verificação do efeito do tegumento na germinação da semente e no crescimento in 
vitro da mama-cadela foi possível observar o efeito positivo da remoção do tegumento (TABELA 3). As 
sementes sem o tegumento germinaram 100% até o 5º dia após o estabelecimento, e apresentaram um 
tempo médio de germinação (TMG) de 5 dias e índice de velocidade de germinação (IVG) igual a 2, ao 
passo que, as sementes com tegumento iniciaram o processo de germinação no décimo dia, e TMG de 12 
dias e IVG de 0,46. Verifica-se, também, que a germinação das sementes com tegumento se deu ao longo 
do tempo atingindo 70% aos 30 dias, indicando que o tegumento se torna uma barreira, dificultando a 
uniformidade no processo germinativo. 
TABELA 3: – Germinação média de sementes de mama-cadela (Brosimum gaudichaudii Trécul - Moraceae) com 
tegumento (SCT), sem tegumento (SST) e, somente, o ápice germinativo (AG) e o vigor representado pelo tempo médio 
de germinação (TMG) e pelo índice de velocidade de germinação (IVG), ao longo do tempo. 
Tratamento 
Germinação (%) Vigor 
5 dias 10 dias 15 dias 20 dias 25 dias 30 dias TMG IVG 
SCT 0,0 b 20,0 b 40,0 a 50,0 b 70,0 a 70,0 a 12a 0,46b 
SST 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 5b 2a 
AG 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 5b 2a 
* Médias seguidas por letras distintas nas colunas, diferem entre si a 5% de probabilidade pelo teste de Kruskal-Wallis. 
 
O crescimento das plântulas (TABELA 4), considerando sementes com tegumento e sementes sem 
tegumento, diferiu estatisticamente entre si em relação ao número de brotos, tamanho do maior broto, 
número de gemas e número de raízes, destacando os melhores resultados quando usadas sementes sem 
tegumento. Enquanto os eixos embriários sem os cotilédones, apesar de germinarem tanto quanto aqueles 
que tiveram apenas a remoção do tegumento, mas apresentaram menor crescimento em razão da redução 
das reservas presentes nos cotilédones. Também verificou-se que as plantas, após a repicagem e mantidas 
por mais 60 dias em laboratório, apresentaram diferenças significativas entre os tratamentos e novamente 
as brotações advindas de sementes sem tegumento apresentaram os melhores resultados. 
TABELA 4: Desempenho das plântulas de mama-cadela (Brosimum gaudichaudiiTrécul - Moraceae) com tegumento 
(CT), sem tegumento (ST) e somente o ápice germinativo (AG), ao longo do tempo, em relação ao número de brotos 
(NB), tamanho do maior broto (TMB), número de gemas (NG) e número de raízes (NR). 
Tratamentos 
NB TMB(cm) NG NR NB NG TMB(cm) 
60 dias após germinação Rebrota com 140 dias 
Semente com tegumento 0,7 c 4,4 c 4,6 b 0,6 c 1,0 c 0,9 b 3,3 b 
Semente sem tegumento 3,3 a 14,2 a 7,5 a 1,0 b 3,1 a 2,1 a 7,0 a 
Ápice germinativo 1,6 b 6,0 b 4,6 b 2,7 a 1,5 b 0,1 c 3,2 c 
 * Médias seguidas por letras distintas nas colunas, diferem entre si a 5% de probabilidade pelo teste de Kruskal-Wallis. 
 
A germinação média das sementes com tegumento apresentou uma variação significativa entre os meios 
MS e WPM nas várias concentrações, por um período de 40 dias, sendo que a germinação mais efetiva foi 
para o meio WPM (100%). Apesar de a germinação apresentar-se acima de 70%, em todos os tratamentos, 
observou-se que a germinação das sementes e o crescimento das plântulas foram lentos, demonstrados 
pelos valores muito pequenos (<2,0) dos números de brotos e de gemas e pelo crescimento dos brotos 
(TABELA 5). 
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TABELA 5: Número total de brotos de mama-cadela (Brosimum gaudichaudii Trécul - Moraceae) ao longo do tempo, em 
diferentes concentrações de BAP, obtidos a partir de plântulas de 60 dias. 
Tratamentos 
Número de brotos 
5 dias 10 dias 15 dias 20 dias 25 dias 30 dias 60 dias 
1/2 MS 0 d 1 d 2 c 4 c 4 d 4 d 7 d 
1/2/MS + ANA 0,3 mg/L 1 c 2 c 5 b 8 b 8 b 8 b 13 b 
1/2 MS + ANA 0,3 mg/L + BAP 
1,0 mg/L 4 a 5 b 8 a 10 a 10 a 10 a 20 a 
1/2 MS + ANA 0,3 mg/L + BAP 
2,0 mg/L 0 d 0 d 1 d 4 c 6 c 6 c 11 c 
1/2 MS + ANA 0,3 mg/L + BAP 
3,0 mg/L 2 b 6 a 8 a 8 b 8 b 8 b 14 b 
 * Médias seguidas por letras distintas nas colunas, diferem entre si a 5% de probabilidade pelo teste de Kruskal-Wallis. 
 
Os resultados em relação ao efeito do pH na germinação e crescimento in vitro de mama-cadela, 
evidenciaram diferenças significativas na germinação para as sementes com tegumento e sem tegumento. 
A germinação das sementes sem tegumento foi 100% em todos os pH testados, enquanto as sementes 
com tegumento tiveram os melhores resultados para o pH 4,5 e 5,5 com 90% germinação (TABELA 6). 
Também foi observado que a germinação das sementes com tegumento só iniciou a partir de 20 dias após 
o estabelecimento. O crescimento e o desenvolvimento das plântulas não ocorreram de forma uniforme, 
principalmente pela ação do pH e pelo desenvolvimento de microrganismos contaminantes, em todos os 
tratamentos, não sendo possível obter dados sobre as características dos brotos. 
TABELA 6: Germinação média acumulada de sementes de mama-cadela (Brosimum gaudichaudii Trécul - Moraceae), 
com tegumento (CT) e sem tegumento (ST), em diferentes pH, ao longo do tempo. 
Tratamentos 
Germinação (%) 
5 dias 10 dias 15 dias 20 dias 25 dias 30 dias 
pH 3,5 CT 0,0 b 0,0 b 0,0 b 40,0 c 60,0 c 80,0 c 
pH 3,5 ST 0,0 b 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 
pH 4,5 CT 0,0 b 0,0 b 0,0 b 70,0 b 90,0 b 90,0 b 
pH 4,5 ST 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 
pH 5,5 CT 0,0 b 0,0 b 0,0 b 30,0 d 60,0 c 90,0 b 
pH 5,5 ST 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 
pH 6,5 CT 0,0 b 0,0 b 0,0 b 0,0 e 30,0 d 50,0 d 
pH 6,5 ST 100, 0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 
pH 7,0 CT 0,0 b 0,0 b 0,0 b 0,0 e 0,0 e 50,0 d 
pH 7,0 ST 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 
* Médias seguidas por letras distintas nas colunas, diferem entre si a 5% de probabilidade pelo teste de Kruskal-Wallis. 
 
Multiplicação com reguladores de crescimento e origem dos explantes 
Os resultados da multiplicação e crescimento de mama-cadela por segmentos nodais podem ser conferidos 
na TABELA 7. Para a variável, quanto ao número de brotos, houve diferença significativa em função da 
concentração de BAP. Os melhores resultados foram para 1,0 mg.L-1 de BAP que atingiu até 20 brotos por 
segmento nodal, aos 60 dias em laboratório. Também, verifica-se que a taxa mais alta de BAP (3,0 mg.L-1) 
equiparou-se aos resultados do tratamento com ausência deste regulador de crescimento. 
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TABELA 7: Número total de brotos de mama-cadela (Brosimum gaudichaudii Trécul - Moraceae) ao longo do tempo, 
sob diferentes concentrações de BAP, obtidos a partir de plântulas de 60 dias. 
Tratamentos 
Número de brotos 
5 dias 10 dias 15 dias 20 dias 25 dias 30 dias 60 dias 
1/2 MS 0 d 1 d 2 c 4 c 4 d 4 d 7 d 
1/2/MS + ANA 0,3 mg/L 1 c 2 c 5 b 8 b 8 b 8 b 13 b 
1/2 MS + ANA 0,3 mg/L + BAP 
1,0 mg/L 4 a 5 b 8 a 10 a 10 a 10 a 20 a 
1/2 MS + ANA 0,3 mg/L + BAP 
2,0 mg/L 0 d 0 d 1 d 4 c 6 c 6 c 11 c 
1/2 MS + ANA 0,3 mg/L + BAP 
3,0 mg/L 2 b 6 a 8 a 8 b 8 b 8 b 14 b 
 * Médias seguidas por letras distintas nas colunas, diferem entre si a 5% de probabilidade pelo teste de Kruskal-Wallis. 
 
Para as variáveis, de crescimento e enraizamento, foram observadas diferenças significativas entre a 
posição de retirada dos segmentos nodais da brotação (TABELA 8). O melhor crescimento ocorreu para 
os explantes retirados da parte basal da brotação, onde se verificou maior número de brotações, mais bem 
estruturadas e um maior tamanho de raízes. A parte apical da brotação destacou-se em relação ao número 
de folhas e número de raízes, fato que pode ser justificado por ser esta a parte de crescimento do broto, 
onde as folhas estão no início de desenvolvimento. 
TABELA 8: Crescimento e enraizamento médio de explantes de mama-cadela (Brosimum gaudichaudii Trécul - 
Moraceae) aos 45 dias, em relação ao número de brotos (NB), tamanho do maior broto (TMB), número de folhas (NF), 
número de gemas (NG), número de raízes (NR) e tamanho da maior raiz (TMR) de segmentos nodais retirados da parte 
basal, mediana e apical da brotação de plântulas de laboratório. 
Tratamentos 
45 dias 
NB TMB (cm) NF NG NR TMR (cm) 
Parte basal da brotação 1,7 a 3,4 a 2,2 b 2,2 a 3,6 a 2,6 a 
Parte mediana da brotação 0,9 c 1,6 c 1,8 b 0,6 c 2,1 b 0,8 c 
Parte apical da brotação 1,4 b 2,4 b 2,9 a 1,9 b 4,5 a 1,9 b 
 * Médias seguidas por letras distintas nas colunas, diferem entre si a 5% de probabilidade pelo teste de Kruskal-Wallis. 
 
A idade do explante nodal se mostrou importante para o estabelecimento, multiplicação e enraizamento da 
nova plântula. Quando se usaram segmentos nodais de plântulas que estavam lignificadas, mantidas em 
laboratório por um período mais longo, em torno de 240 dias, foi possível verificar a emissão de brotos, 
folhas e raízes em menor espaço de tempo e a parte aérea da muda vigorosa. Em relação às raízes, 
observou-se que são formadas pelas raízes principal e secundária, no entanto, estas eram duras e 
quebradiças, soltando-se facilmente quando da retirada da muda do meio de cultura. Esta característica 
das raízes acabou inviabilizando o processo de aclimatização, pois a muda não tinha capacidade de 
absorção dos nutrientes necessários para o desenvolvimento. 
Discussão 
O primeiro aspecto analisado nesse estudo foi a eficácia do PPM sobre a contaminação dos explantes, em 
que concentrações maiores que 4,0 mL.L-1 evitaram a contaminação em mais de 70% dos explantes, contudo, 
os efeitos fitotóxicos do produto ficaram evidentes pela presença de segmentos nodais e gemas enegrecidos 
e pela ausência de brotação em todos os tratamentos. Estudoscom PPM em segmentos de erva-mate 
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meio de cultura 
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apresentaram sobrevivência[12], no entanto, não foi possível a sua manutenção in vitro. Segundo o fabricante, 
o produto PPM apresenta um pH extremamente ácido (3,8) e que se decompõe em CO e CO2[20], o que em 
meio líquido pode acidificar mais pela formação de HCO3-. Assim, as condições em que os segmentos nodais 
estavam podem ter se tornado ácidas, o que deve ter gerado efeitos nocivos sobre a capacidade de absorção 
de água e nutrientes, uma vez que sob pH ácidos as aquaporinas presentes nas membranas plamáticas das 
células vegetais tem sua atividade interrompida, bem como a absorção de nutrientes é limitada. O que pode 
somar à menor diponibilidade de O2 para a atividade respiratória nos segmentos nodais, pois o CO2 apresenta 
maior difusividade em meio aquoso, sendo esses aspectos amplamente conhecidos em vegetais[23]. 
Adicionalmente sabe-se que, de modo geral, a capacidade de tamponamento de meios de cultura é baixa e 
pode variar ao longo do cultivo, conforme foi demonstrado no cultivo de Pfaffia glomerata (Spreng.) Pedersen 
em que houve acidificação ao longo do tempo[24]. A causa da fitotoxidez observada nos segmentos nodais de 
mama-cadela pode estar relacionada aos aspectos descritos anteriormente, uma vez que os segmentos 
nodais ficaram totalmente imersos no meio de cultura. Mas, também revelam certa sensibilidade da espécie 
às variações no pH durante a micropropagação. 
As variações no pH também puderam ser observadas na germinação das sementes, sendo verificado que sob 
pH mais baixos (3,5) ou mais altos (6,5 e 7,0) houve retardo e/ou redução na germinação das sementes com 
tegumento, o que também pode ser associado à absorção de água e/ou nutrientes na membrana plasmática 
de raízes geradas a partir de de sementes intactas. 
Outros aspectos tem sido observados em experimentos de micropropagação de mama-cadela, como a 
ocorrência de contaminações que inviabilizaram a avaliação do crescimento[18,5,19]. Apesar o meio WPM ter 
proporcionado a maior germinação em mama-cadela, em outro trabalho[19] os autores verificaram que o meio 
1/2 MS promoveu um melhor desenvolvimento para as mesmas variáveis avaliadas no presente trabalho, o 
que sinaliza o efeito positivo desse meio no crescimento dos brotos de outras espécies e de mama-cadela. 
Quando avaliados os efeitos da presença/ausência do tegumento, além dos efeitos na germinação e as 
diferenças no crescimento de brotos, as sementes foram estabelecidas sem o tegumento e foram observadas, 
também, em relação ao seu aspecto e vigor, indicando que para a multiplicação in vitro deve-se retirar o 
tegumento da semente de mama-cadela. Este fato também foi relatado em outro estudo[19], em que a obtenção 
de melhores resultados foram obtidos quando usadas as sementes sem tegumento para a multiplicação in 
vitro da mama-cadela. As diferenças encontradas no crescimento das plântulas advindas de sementes sem 
tegumento, e somente com o eixo embrionário, são devidas às limitações oferecidas pelo tegumento e à 
quantidade de reserva de nutrientes encontrados nos cotilédones da semente. Esta reserva é composta de 
amido, proteína e lipídeo, que ajuda na manutenção da plântula até a completa formação de suas raízes[3]. 
O uso de reguladores de crescimento em experimentos com mama-cadela tem demonstrado efeitos distintos. 
No presente estudo os melhores ressultados de multiplicação foram obtidos com 0,3 mg.L-1 ANA + 1,0 mg.L-1 
de BAP e, também, foram obtidos[11] resultados melhores em menores concentrações de reguladores de 
crescimento, indicando uma tendência na diminuição destes, em meio de cultura[11]. Apesar de a mama-cadela 
apresentar uma boa taxa de multiplicação, isto não significa uma boa produção de mudas viáveis em 
laboratório, pois os explantes multiplicaram, mas não tiveram um crescimento adequado, não alongaram e 
não enraizaram por um período de 120 dias. Os resultados das pesquisas de multiplicação de mama-cadela 
em cultura de tecidos são conflitivos e não conclusivos, em relação à possibilidade de produção de mudas 
viáveis[18,5,19]. 
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Quanto ao fato das brotações basais de mama-cadela apresentarem melhor desempenho que as medianas 
e apicais no cultivo in vitro, isso posssivelmente deve-se à maior acumulação de auxinas naturais nessa região 
dos explantes, uma vez que são produzidas nos ápices e são transportadas basipetalmente. E como elas 
apresentam efeitos positivos sobre o enraizamento nas regiões proximais(24), a absorção de água, nutrientes 
e o crescimento global dos segmentos nodais dessa região devem ter sido afetados positivamente. 
Conclusão 
O PPM e o hipoclorito em diversas concentrações e tempo de imersão, não se mostraram eficientes por 
promoverem fitotoxidez ou possibilitar o desenvolvimento de contaminações. O tegumento afeta o vigor, o 
grau de multiplicação e de crescimento das brotações em explantes obtidos de sementes de mama-cadela, 
comprovando que este é um limitador a germinação uniforme in vitro. 
O pH afeta a geminação in vitro de sementes de mama-cadela, sendo recomendado que esteja entre 4,5 e 
6,5 para sementes sem tegumento. 
O meio 1/2 MS é mais eficiente na multiplicação da mama-cadela, sendo que o meio de cultura 1/2 MS com 
1,0 mg/L-1 de BAP mostrou-se eficiente para a multiplicação in vitro. Os segmentos axênicos e lignificados 
promovem melhor crescimento das brotações e enraizamento. 
Com os resultados obtidos com este estudo, sugere-se que os trabalhos devem continuar, pois a produção 
de mudas de mama-cadela em cultura de tecidos mostrou-se viável, desde que se façam alguns ajustes na 
metodologia em relação à concentração dos fitorreguladores para a produção de maior número de raízes e 
formação de mudas viáveis. 
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http://www.scielo.br/scielo.php?pid=S0102-33062007000300006&script=sci_abstract&tlng=pt
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Histórico do artigo | Submissão: 17/09/2018 | Aceite: 11/03/2019 | Publicação: 05/04/2019. 
Conflito de interesses: O presente artigo não apresenta conflitos de interesse. 
Como citar este artigo: Carneiro MF, Duarte EF, Vargas LM, Sibov ST, Conceição EC, Nogueira JCM. Multiplicação da planta medicinal 
Brosimum gaudichaudii Trécul (Moraceae) em meio de cultura. Revista Fitos. Rio de Janeiro. 2019; 13(1): 61-73. e-ISSN 2446.4775. 
Disponível em: <http://revistafitos.far.fiocruz.br/index.php/revista-fitos/article/view/671>. Acesso em: dd/mm/aaaa. 
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https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
https://www.plantcelltechnology.com/content/PPMSDS.pdf
http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782008000700043
https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/