Relatório da prática - Parasito Clínica - Exames Parasitológicos de Fezes

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Universidade Federal do Rio de Janeiro
Parasitologia e Micologia Clínica
Aluna: Marcela Avellar
Relatório
Exames Parasitológicos de Fezes
O exame parasitológico de fezes (EPF) é a análise laboratorial a partir de uma amostra
das fezes, buscando detectar a elementos indicativos de verminoses, bem como determinar o
seu tipo. Para que seu resultado seja corretamente avaliado é necessário que sejam seguidas
as recomendações quanto à coleta, armazenamento e transporte das fezes.
Alguns dos exames parasitológicos mais utilizados são:
Método de Faust - Baseia-se na centrífugo-flutuação em solução saturada de sulfato de zinco
à 33%, de densidade 1,182. A partir de 1 grama de material fecal, desprezar em um tubo,
sobre funil com gaze e completar volume do tubo com água. Após, centrifugar e ressuspender
o pellet de material fecal em água, e repetir esse processo 3 vezes. Em seguida, adicionar a
solução saturada de sulfato de zinco 33% e centrifugar. Após 3 minutos na bancada, observar
a flutuação e montar uma lâmina. Indicado para visualização de ovos e larvas de helmintos e
também cistos de protozoários.
Método de Hoffman - Baseia-se na sedimentação espontânea em água, pela ação da
gravidade. Após homogeneização e diluição do material fecal, desprezar sobre gaze ou tela
em um cálice, para diminuir os dendritos e, completar o volume do cálice com água. Após
sedimentação por 1-2 horas, pipetar o fundo do cálice e montar uma lâmina com lugol.
Indicado para visualização de ovos e larvas de helmintos e cisto e trofozoítas de protozoários.
Método de Willis - Baseia-se na flutuação em solução saturada de cloreto de sódio em água,
de densidade 1,2. A partir de 1 grama de material fecal, homogeneizar com a solução
saturada de cloreto de sódio e completar o volume do tubo com a solução. Posicionar uma
lamínula sobre o tubo e após 3 minutos, rapidamente, inverter a lamínula que será usada para
montar um lâmina. Indicado para ovos de helmintos, principalmente, ancilostomídeos e
Trichiurus trichiura.
Método de Kato-Katz - Baseia-se no esfregaço, em lâmina, para contagem de ovos com
solução aquosa glicerinada de verde de malaquita. A partir de 1 grama de amostra fecal,
comprimir com tela de nylon ou PVC e transferir as fezes que passarem pela malha para um
cartão com um orifício de tamanho determinado. Após, cobrir o material com lamínula com
verde de malaquita e esperar secar para em seguida realizar a contagem de ovos por grama de
fezes. Indicado para ovos de helmintos, principalmente, Schistosoma.
Método de Baerman e Moraes - Fundamenta-se no termo hidrotropismo positivos das larvas
de nematóides, em água quente. Adicionar o material fecal sobre gaze disposta sobre um funil
com água quente e deixar as fezes submersas. Deixar uma pequena passagem de água do
funil sobre um vidro de relógio. Após um tempo, as larvas começaram a migrar para o centro
do vidro de relógio. Pode-se coletar o líquido e centrifugar para examinar o concentrado em
lâmina. Indicado para visualização de larvas de ancilostomídeos e Strongyloides stercoralis.
Método de Ritchie - Baseia-se na centrífugo-sedimentação em formol-éter. Homogeneizar 1
grama de fezes e filtrar em gaze sobre funil para centrifugar. Após descartar o líquido,
adicionar formol e agitar e em seguida fazer o mesmo ao adicionar o éter. Posteriormente,
centrifugar e pipetar sedimento do fundo do tubo para montar lâmina com lugol. Indicado
para visualização de cistos de protozoários e evidenciar ovos e larvas de helmintos.
Método da fita gomada (adesiva) - Baseia-se na adesão direta de ovos da região anal na parte
adesiva da fita. Recomenda-se coletar através da parte adesiva (durex) os ovos que ficam na
região anal, perianal e perineal. Indicado para visualização de ovos, principalmente
Enterobius vermicularis.