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CENTRO UNIVERSITÁRIO DE BRASÍLIA - UniCEUB Faculdade de Ciências da Educação e Saúde – FACES Curso de Medicina Veterinária FERNANDO LEAL LUZA (TAYANE) JOSE MATEUS TEIXEIRA RIBEIRO PRISCILA DE CARVALHO BRITO SARA ALVES DAMASCENO REAÇÃO EM CADEIA DE POLIMERASE (PCR) Brasília - DF 2022 FERNANDO LEAL LUZA (TAYANE) JOSE MATEUS TEIXEIRA RIBEIRO PRISCILA DE CARVALHO BRITO SARA ALVES DAMASCENO REAÇÃO EM CADEIA POLIMERASE (PCR) Trabalho apresentado ao Centro Universitário de Brasília – UniCEUB, como requisito parcial de avaliação na disciplina de Genética e Melhoramento Animal do Curso de Medicina Veterinária, ministrada pelo Professor Dr. Andrei Antonioni Guedes Fidelis. Brasília - DF 2022 Sumário 1. Introdução .............................................................................................................. 3 2. Revisão de Literatura ............................................................................................ 3 2.1. Mecanismo de Funcionamento do PCR ........................................................... 3 2.2. Uso e aplicação do PCR na Rotina Veterinária ................................................ 4 2.3. Vantagens e desvantagens do PCR ................................................................. 5 3. Considerações Finais ........................................................................................... 6 4. Referências ............................................................................................................ 6 3 1. Introdução Com o advento e aprimoração das técnicas de diagnóstico, foi possibilitado aos pesquisadores e profissionais a chegada em resultados mais efetivos ou a aplicação de tratamentos de maneira mais rápida e direcionada. O PCR é uma técnica amplamente utilizada e se tornou mais conhecida durante a pandemia de SARS- COV2 como uma das melhores técnicas para detecção da infecção por COVID-19. O aprimoramento e a rápida inserção pela utilização de primers e DNA polymerase que codificam e formam novas moléculas de DNA, tornam o processo infinitamente mais ágil, sendo necessário apenas uma pequena amostra de material genético para o mesmo. Tornando viáveis inúmeras aplicações. Antigamente era necessário esquentar a altas temperaturas para que o DNA desnaturasse, após isso adicionava-se primers, aquecia novamente e então colocava- se a DNA polymerase, esse ciclo era repetido algumas vezes (CORDEIRO, 2003) pelos termocicladores e após isso somente seria possível visualizar os resultados após uma eletroforese em gel, podendo muitas vezes gerar resultados contrários, como falsos-negativos (NASCIMENTO; SUAREZ; PINHAL, 2015). Em contraste com o PCR, o surgimento de novas aplicações, como o RT-PCR (real time PCR) prometem realizar todo o processo de maneira mais rápida, acessível e com menos chances de contaminação, permitindo seu uso em diversos diagnósticos e rápidos resultados na medicina veterinária. 2. Revisão de Literatura 2.1. Mecanismo de Funcionamento do PCR O processo de replicação de DNA foi alcançado nos anos 80, século passado, pelo químico Kary Millus, que conseguiu fazer a duplicação de partes selecionadas do DNA in vitro. (MILLUS,2001) Uma das chaves para este feito foi a utilização de primers e marcadores que possibilitassem dar início ao processo de abertura das fitas duplas de DNA e que selecionam a fração a ser replicada. Em 1988 foi descoberta o que tornou possível a automação deste processo (SAIKI, 1988) a enzima DNA polimerase Isto conseguiu abrir as portas para milhares de possibilidades, foi esta a chave que Kary Millus visualizou naquele final de tarde dirigindo pelas estradas da Califórnia. “The Big Key” 4 indicava o futuro domínio de como replicar o DNA de forma controlada, barata e em grandes quantidades (MILLUS, 2001). A chave do processo consiste em elevar a temperatura de forma controlada, introdução de primers para dar início ao processo de replicação acionando a enzima DNA polimerase e a duplicação aconteceria repetidas vezes. Alguns marcadores são introduzidos para identificar a área a ser duplicada, resultando assim em cópias de partes do DNA de acordo com a aplicabilidade desejada (LEUTENEGGER,2001). Mesmo assim ainda teríamos uma barreira para a popularização e ampla utilização deste processo, o custo. A simplicidade de realização do processo e a possibilidade de ser realizado de maneira sequencial automatizada, implicou em custos cada vez mais acessíveis, popularizando a utilização do PCR para múltiplos propósitos (RESENDE,2002). 2.2. Uso e aplicação do PCR na Rotina Veterinária Os exames moleculares, como o PCR, têm sido muito utilizados para diagnosticar doenças infecciosas em animais, pois possuem um alto índice de especificidade e sensibilidade, sendo assim um tipo de exame bastante confiável tanto para diagnosticar como para monitorar doenças em animais (HASS & TORRES, 2016). A PCR tem facilitado a identificação de patógenos com alto potencial zoonótico, como por exemplo Brucella abortus e Mycobacterium bovis, entregando resultados em poucas horas e de forma segura, dessa forma também contribuindo para pesquisas do meio veterinário (HASS & TORRES, 2016). Algumas bactérias que podem ser identificadas pela PCR incluem a Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Ureaplasma diversum, Leptospira interrogans e Campylobacter fetus (MELO et al, 2012). A Leptospira ssp., agente causador da Leptospirose, é um patógeno difícil de ser isolado e, através da PCR é possível detectar o DNA da bactéria diretamente da urina do paciente, o que aumenta a probabilidade de diagnosticar corretamente (HASS & TORRES, 2016). Ainda, é possível identificar alguns protozoários como por exemplo o Tritrichomonas foetus agente causador da tricomaníase e o Toxoplasma gondii, agente causador da toxoplasmose (MELO et al, 2012). 5 A PCR também é aplicada com o objetivo detectar o provírus do Vírus da Imunodeficiência Felina (FIV). Um estudo realizado no Estado do Rio Grande do Sul, Brasil, no ano de 2000, mostrou que a técnica PCR é sensível e específica para detectar animais portadores de FIV, pois mesmo nos animais soronegativos é possível detectar o DNA proviral (CALDAS et al, 2000). No ramo da reprodução animal existem diversas doenças que podem ter como consequências alto impacto nas taxas de natalidade, natimortos, prenhez, entre outros. A PCR é capaz de diagnosticar doenças genéticas, além das infecciosas supracitadas, e realizar a sexagem embrionária (MELO et al, 2012). 2.3. Vantagens e desvantagens do PCR Dentre as vantagens do PCR como ferramenta de diagnóstico de doenças podemos citar a sua rapidez para obter o resultado, o baixo custo, a necessidade de apenas um par de primer e a sua facilidade para desenvolver o ensaio (NONAKA, 2012). Com a amplificação simultânea de vários lócus em uma mesma reação faz se necessário uma menor quantidade de ácido nucleico para o diagnóstico (ROSSETI; SILVA; RODRIGUES, 2006). Essa amplificação traz inúmeras vantagens como ferramenta de diagnóstico e pesquisa pois reduz o risco de contaminação cruzada e apresenta uma simples execução além de estar ligada a uma boa especificidade e sensibilidade (HASS & TORRES, 2016). O PCR que usa a detecção com base na fluorescência oferece uma maior sensibilidade e discrimina números de genes em faixas dinâmicas mais amplas (Diviacco et al., 1992). Além disso, o uso do PCR em Tempo Real é um ótimo método para se caracterizar SNPs, podendo ser útil na resolução de casos forenses e teste de paternidade. Mesmo com tantas vantagens alguns PCRs possuem desvantagens como a necessidade da síntese de váriassondas para determinar sequências distintas e devido a isso tem um alto custo e existem dificuldades quanto a estabilidade das ideais condições de amplificação havendo também uma inespecificidade da reação (NONAKA, 2012). 6 3. Considerações Finais A técnica desenvolvida no PCR trouxe para o mundo científico um novo caminho de infinitas possibilidades. O PCR conseguiu revolucionar a medicina, a medicina veterinária, a medicina forense, o controle de produtos de origem animal e, dentre milhares de outras aplicações, consegue proporcionar uma segurança real em inúmeras identificações de patógenos. Logo após a consagração da técnica PCR teve início uma série de pesquisas com o intuito de visualizar as reais possibilidades de emprego e com isto a operacionalização a custos comerciais transformou o PCR em um nome comum, mas que torna verídico a solução de mistérios que antes não seriam desvendados. 4. Referências CALDAS, Ana Paula Ferrary, et al. Detecção do Provírus da Imundeficiência Felina em Gatos Domésticos pela Técnica de Reação em Cadeia de Polimerase. Pesq. Vet. Bras. 20(1):20-25, jan./mar. 2000 CORDEIRO, Maria Cristina Rocha. Engenharia Genética: Conceitos Básicos, ferramentas e aplicações. 1ª Edição, Planatina – DF, 2003. CRUZ, A.S, et al. Sensibilidade da PCR na amplificação do DNA bovino em diluição seriada e HAAS, Dionei Joaquim; TORRES, Ana Caroline Doyle. Aplicações das técnicas de PCR no diagnóstico de doenças infecciosas dos animais. Revista Científica de Medicina Veterinária, Ano XIV, n. 26, jan. 2016. LEUTENEGGER, Christian M. The Real-Time TaqMan PCR and Applications in Veterinary Medicine Veterinary Sciences Tomorrow – Issue 1 - Jan. 2001. Disponível em: <https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2430684/>. Acesso em: 02 Jul. 2022. MELO, A. N. et al. Aplicações da técnica de PCR na reprodução animal. Revista Brasileira de Reprodução Animal, Belo Horizonte, v.36, n.2, p.105-112, abr./jun.2012. MILLIS, Kary B. Dancing naked in the mind field, 1.ed. New York: Pantheon Books, 1998. mistura de amostra macho e fêmea. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec., v.63, n.4, p.1012-1015, 2011. NASCIMENTO, Sabrina. PINHAL, Maria. A SUAREZ, Eloah R. Tecnologia de PCR e RT-PCR em tempo real e suas aplicações na área médica. SÃO PAULO: UNESP, 2015. Disponível em: <https://www.researchgate.net/profile/Eloah-Rabello- Suarez/publication/284719832_Tecnologia_de_PCR_e_RT- PCR_em_tempo_real_e_suas_aplicacoes_na_area_medica/links/5657100d08aefe619b1ed434/Tecn ologia-de-PCR-e-RT-PCR-em-tempo-real-e-suas-aplicacoes-na-area-medica.pdf>. Acesso em: 02 Jul. 2022. NONAKA, Carolina Kymie Vasques. Validação de uma PCR em tempo real para o diagnóstico da Doença de Aujeszky. 2012. 52 f. Dissertação (Mestrado) - Curso de Medicina Veterinária, Medicina Veterinária Preventiva, UFMG, Belo Horizonte, 2012. 7 RESENDE, Rodrigo R (Org.). SOCCOL, Carlos R. Biotecnologia aplicada à saúde: fundamentos e aplicações. Belo Horizonte,MG v. 2: Ed. Edgard Blücher Ltda, 2015, cap.15, p. 427-475. SAIKI, Randall K. et al. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science, v. 239, n. 4839, p. 487-491, 1988.
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