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PARASITOLOGIA CLÍNICA
COLHEITA E PRESERVAÇÃO DA AMOSTRA FECAL
● A maioria dos parasitos intestinais é diagnosticados pelo exame das fezes,
embora outros materiais , como urina, escarro, secreções , urogenitais,
aspirados, tecidos, conteúdo duodenal e espécimes obtidos por biópsia,
possam ser utilizados para a identificaçãode certas espécies
● COMPOSIÇÃO DAS FEZES
- ÁGUA - 75 %
- BACTÉRIAS MORTAS - 30 %
- GORDURA - 10 - 20 %
- MATÉRIA INORGÂNICA - 10 - 20 %
- MATÉRIA SÓLIDA - 25 %
- PROTEÍNAS 2 – 3 %
- RESTOS NÃO DIGERIDOS 30 %
➤ COLHEITA DE MATERIAL:
● Qualquer evacuação do dia.
● Colher: diretamente no frasco ou urinol, jornal ou papel limpo e transferi-lo
para coletor
● FEZES EMITIDAS ESPONTANEAMENTE:
- Tipo de recipiente: limpo e seco, boca larga, 100ml, vedação hermética
(impede o derrame e preserva a umidade).
- Volume: exames macro e microscópico satisfatórios – enviar ao laboratório
todo o bolo fecal – ou 20 a 30g – diferentes técnicas.
➤ CUIDADOS
● Drogas e compostos químicos:
- Antibóticos Tetraciclinas: flora intestinal normal - diminuição ou ausência
temporária de organismos nas fezes - parasitas alimentam-se de bactérias
intestinais - intervalo de 2 a 3 semanas após a administração.
- Bário ou bismuto (contraste radiológico sulfato de bário): ação abrasiva
- destruição de trofozoítos. Somente após 7 a 10 dias
➤ FEZES EMITIDAS ATRAVÉS DE LAXANTES
● Objetivo: Fezes liquefeitas (administração de laxantes) – estabelecer e
confirmar diagnóstico de amebíase, giardíase e estrongiloidíase.
● Indicação: (solicitação médica) – série de exames negativos – pesquisa-se
ovos, larvas, cistos e trofozoítas. Laxantes indicados: laxantes salinos: fosfato
de sódio e sulfato de sódio – menos danos morfológicos aos parasitas.
● Procedimento: Fezes induzidas por laxantes – coletar todo o bolo fecal –
envio imediato ao laboratório; caso contrário – uma fração da amostra em APV
(álcool polivinílico).
● Prática do uso de laxantes: Indicada para clínicas e hospitais onde as
amostras fecais são recebidas pelo laboratório imediatamente após a coleta
➤ INFORMAÇÕES NECESSÁRIAS
● Nome do paciente.
● Número de identificação.
● Nome do médico.
● Data e horário da coleta.
● Requisição médica – sintomas clínicos e procedimento laboratorial.
*OBS: Amostras fecais de pacientes imunodeprimidos (AIDS) - protegidos
por um invólucro de plástico e identificados com etiqueta vermelha ou
HIV positivo.
➤ FICHA DE IDENTIFICAÇÃO
➤ ESTABILIDADE DAS AMOSTRAS:
● Amostras líquidas: 60 minutos após a evacuação.
● Amostras pastosas: examinar duas hora após a evacuação. Não sendo
possível observar a orientação: o material deverá ser preservado.
● Amostras pastosas: 24 h após evacuação.
➤MÉTODOS DE PRESERVAÇÃO
● Objetivo: Preservar a morfologia dos protozoários e prevenir um contínuo
desenvolvimento de alguns ovos e larvas de helmintos.
● Tipos de Preservação:
- Temporária: refrigeração (3–5°C) em recipientes hermeticamente fechados -
evita o dessecamento - ovos , larvas e cistos viáveis vários dias.
- Exceção: larvas de S. stercoralis e dos ancilostomídeos poderão sofrer
alterações morfológicas.
- Permanentes: (trofozoitas , cistos, ovos e larvas).
- Fixadores: solução de formaldeído 5 ou 10% (formalina), MIF
(mertiolato-iodo-formaldeído), SAF (acetato de sódio-ácido
acéticoformaldeído), álcool polivinílico (APV).
➤MÉTODOS DE PRESERVAÇÃO MAIS COMUNS
1. FRIO:: as fezes são mantidas em geladeira ou em caixas contendo gelo e
serragem. Enquanto a temperatura permanecer baixa (5 a 10ºC) não haverá
putrefação. As fezes podem vir a ser examinadas em até 2 ou 3 dias após a
sua emissão.
2. FORMOL A 10%, MIF, SAF: Homogeneizar as fezes em solução de formol a
10%, MIF ou SAF (colocar as fezes num vidro de boca larga e adicionar o
dobro do volume em formol, homogeneizando). Os cistos, ovos ou larvas
permanecem conservados por mais de um mês.
OBS: Qualquer conservador é usado na proporção de 2 a 3 partes para
uma parte de fezes.
➤ PREPARAÇÃO E EXAME DE AMOSTRAS FECAIS:
● EXAME MACROSCÓPICO: Amostras não preservadas
● Determinar: consistência, odor, cor, presença ou ausência de sangue, muco,
proglotes e vermes adultos.
● Material fecal varia quanto a sua consistência e é classificada em: Fezes
formadas. Pastosas. Líquidas (diarréia).
● Estágios morfológicos x consistência das fezes:
● Trofozoítas de protozoários: fezes líquidas, pastosas ou nas
mucossanguinoletas.
● Cistos de protozoários: fezes formadas.
● Ovos e larvas de helmintos: todos os tipos de amostras fecais.
➤ REALIZAÇÃO DO EXAME MACROSCÓPICO
● Simples observação: Examinar e revolver com bastão de vidro todo o material
fecal evacuado – anotar as características, coletar vermes adultos ou proglotes
de tênias desejadas .
● Tamisação: Emulsionar as fezes com água. Coar a emulsão através de
peneira metálica - pia - com jato fraco de água corrente.
● Vantagens: demonstração e coleta de vermes adultos (pequenos helmintos),
proglotes e escólices.
➤ EXAME MICROSCÓPICO:
● Método Direto: esfregaços a fresco – mais fácil e usado na rotina do
laboratório- permite visualizar: protozoários (trofozoítos e cistos) e helmintos
(ovos, larvas e pequenos adultos).
● Técnicas de Concentração: melhores resultados.
- Aumenta o número de cistos, oocistos , ovos e larvas;
- Elimina a maioria de detritos fecais;
- Ffacilita a identificação (organismos inalterados)
➤ EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES