RELATÓRIO SOLUÇÃO TAMPÃO

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4. MÉTODO
4.1. SOLUÇÃO TAMPÃO
4.2. PREPARO DE SOLUÇÃO TAMPÃO
4.2.1. Preparo de 100mL de solução 0,1 mol/L de ácido acético 
Utilizando a pipeta automática recolhemos 600µL de CH3COOH (ácido acético) e transferimos para o balão volumétrico de 100mL. No balão volumétrico adicionamos H2O (água deionizada) ao CH3COOH até obtermos a quantidade total de 100mL desta solução, homogeneizamos e reservamos.
4.2.2. Preparo de 50ml de solução tampão de ácido acético/acetato de sódio de pH 5,0
Com a ajuda de um béquer de 50mL pesamos 0,74g de CH₃COONa (acetato de sódio), com um pouco da solução de CH3COOH, ainda no béquer, diluímos o CH₃COONa transferindo essa solução em seguida para outro balão volumétrico (50ml), em sequência utilizamos a solução reservada de CH3COOH para lavar o béquer afim de utilizar a quantidade total medida de CH₃COONa, utilizando uma pipeta de Pasteur, completamos o volume da solução no balão volumétrico até a medida de 50ml (Solução Tampão), fechamos, homogeneizamos e medimos o pH com a ajuda de um pHmetro.
4.3. TESTE DO EFEITO TAMPONANTE DA SOLUÇÃO PREPARADA
Separamos 8 tubos de ensaio, sendo que em 4 deles adicionamos 5ml de H2O cada, e nos outros 4 adicionamos 5ml de solução tampão cada e organizamos alternadamente de 2 em 2 tubos com cada solução.
Nos 4 primeiros tubos de ensaio (sendo 1 e 2 com 5ml de solução tampão e 3 e 4 com 5ml de H2O cada) adicionamos 2 gotas de verde de bromocresol em cada.
Nos 4 tubos de ensaio seguintes (sendo 5 e 6 com 5ml de solução tampão e 7 e 8 com 5ml de H2O cada) adicionamos 2 gotas de vermelho de metila em cada.
Ficando organizado da seguinte forma:
	Tubo 1
	Solução Tampão + verde de bromocresol
	Tubo 2
	Solução Tampão + verde de bromocresol
	Tubo 3
	H2O + verde de bromocresol
	Tubo 4
	H2O + verde de bromocresol
	Tubo 5
	Solução Tampão + vermelho de metila
	Tubo 6
	Solução Tampão + vermelho de metila
	Tubo 7
	H2O + vermelho de metila
	Tubo 8
	H2O + vermelho de metila
4.3.1. Utilizando o indicador verde de bromocresol
Adicionamos 1 gota de HCl 6,0 mol/L nos tubos de ensaio 1 e 3 cada, e 1 gota de NaOH 6,0 mol/L nos tubos de ensaio 2 e 4 cada.
Observamos as cores inicial e final de cada solução, medimos o pH de cada solução final com ajuda da fita de indicadora universal e anotamos os resultados.
4.3.2. Utilizando o indicador vermelho de metila
Adicionamos 1 gota de HCl 6,0 mol/L nos tubos de ensaio 5 e 7 cada e 1 gota de NaOH 6,0 mol/L nos tubos de ensaio 6 e 8 cada.
Observamos as cores inicial e final de cada solução, medimos o pH de cada solução final com ajuda da fita de indicadora universal e anotamos os resultados.
5. RESULTADOS
A medição do pH das amostras de água e da solução tampão nos tubos de ensaio obteve resultado:
Água - pH 6
Tampão - pH 5
A medição do pH após adição dos indicadores nos tubos de ensaio, conforme tabela abaixo, indicou que, tanto o verde de bromocresol quanto o vermelho de metila não afetaram o pH da água e tão pouco o pH da solução tampão, mas afetaram a coloração.
	Tubo 1
	Solução Tampão + verde de bromocresol
	Tubo 2
	Solução Tampão + verde de bromocresol
	Tubo 3
	H2O + verde de bromocresol
	Tubo 4
	H2O + verde de bromocresol
	Tubo 5
	Solução Tampão + vermelho de metila
	Tubo 6
	Solução Tampão + vermelho de metila
	Tubo 7
	H2O + vermelho de metila
	Tubo 8
	H2O + vermelho de metila
Após a adição do ácido (HCl 6,0 mol/L) e da base (NaOH 6,0 mol/L), nos tubos de ensaio, conforme descrição nos itens 4.3.1 e 4.3.2, notou-se mudança na cor das substâncias. 
Utilizando a fita de indicação universal foi confirmada a alteração de pH conforme o resultado:
Água + Base (NaOH) - pH 12
Tampão + Base (NaOH) - pH 5
Gráfico demonstrativo do resultado:
TUBO PH
	Tampão 
	0
	5
	Água 
	6
	0
	Tampão + base
	0
	5
	Água + base
	12
	0
	Tampão + ácido
	0
	4
	Água + ácido
	1
	0
6. DISCUSSÃO
Durante a prática feita no laboratório, observamos que, ao adicionar os ácidos e bases na solução com água, o pH varia de forma imediata se equilibrando de acordo com a quantidade de cada substância adicionada, como já esperado. Porém, quando adicionamos os ácidos e bases na solução tampão, observamos que a mesma estabiliza o pH não permitindo uma variação muito notável, mostrando de forma clara a propriedade da solução.
As soluções tampões são soluções que resistem a mudanças de pH quando a elas são adicionados ácidos ou bases ou quando uma diluição ocorre. Um tampão é constituído de uma mistura de um ácido fraco e sua base conjugada ou de uma base fraca e seu ácido conjugado (MARCONATO et al., 2004), assim como foi feito durante a aula no laboratório, na qual foi preparado uma solução de mesma forma.
Em nosso organismo, o efeito tamponante pode ser encontrado em diversos lugares, contribuindo para a homeostase de nosso corpo. No sangue humano, por exemplo, o sistema tampão é essencial para manter o pH do sangue dentro de uma faixa muito estreita, geralmente em torno de 7,4. Os principais sistemas de tampão no sangue são o sistema bicarbonato (HCO3- / H2CO3) e o sistema de fosfato (HPO4^2-/H2PO4^-). Esses sistemas de tampão funcionam para neutralizar o excesso de prótons (íons H+) ou hidroxila (íons OH-) no sangue, mantendo o pH relativamente constante (GOERSCH, SILVA, 2022).
Fazendo um paralelo mais próximo da área da odontologia, temos o efeito tampão da saliva. A saliva é importante na prevenção da cárie, uma vez que um baixo pH bucal contribui para a proliferação da microbiota cariogênica e para a desmineralização do esmalte dentário. Entre suas funções, destaca-se a capacidade tampão. Os tampões salivares de maior importância são o sistema ácido carbônico/bicarbonato e o sistema fosfato. As proteínas salivares possuem alguma capacidade de tamponar, mas somente em pH muito baixo (GARBIN et al., 1999). 
7. CONCLUSÃO
REFERÊNCIAS
FRAGA, I. C. S. et al. Confiabilidade metrológica de algumas soluções tampão utilizadas para a medição de pH. Divisão de Metrologia Química do Instituto Nacional de Metrologia, Normalização e Qualidade Industrial (Inmetro), 2002. Disponível em: http://www.repositorio.bom.org.br:8080/jspui/bitstream/123456789/1457/1/2002_FragaCoutoRibeiro%20ENQUALAB%202002.pdf
GARBIN, C. A. S. et al. Capacidade tampão da saliva frente a diversos estímulos gustativos. Faculdade de Odontologia de Lins – FOL .Vol. 14, nº1, 2002. Disponível em: capacidade tampão da saliva frente a diversos estímulos ... - Unimep (yumpu.com)
GOERSCH, M. C. da S. Ph e tampão. Centro Universitário Apparecido do Santos – UNICEPLAC. Gama / DF, 2022. Disponível em: REVISTAS CIENTÍFICAS – Uniceplac
MARCONATO, J. C.; FRANCHETTI, S. M. M.; PEDRO, R. J. Solução Tampão: Uma proposta experimental usando materiais de baixo custo. Química na Nova Escola. Nº 20, 2004. Disponível em: http://qnesc.sbq.org.br/online/qnesc20/v20a11.pdf
MOREIRA, O. B. de O.; CASTRO, L. dos A.; OLIVEIRA, M. A. L. Cálculo e preparo de soluções tampão: guia completo usando o software Peakmaster®. Química Nova, v. 44, p. 783-791, 2021. Disponível em: https://www.semanticscholar.org/paper/C%C3%81LCULO-E-PREPARO-DE-SOLU%C3%87%C3%95ES-TAMP%C3%83O%3A-GUIA-COMPLETO-Moreira-Castro/90fe6b96facd2f485bee64d9c3e161619164e1de
SUMÁRIO
1. INTRODUÇÃO ...................................................................................................... 3
2. OBJETIVO ............................................................................................................ 4
3. MATERIAIS ........................................................................................................... 5
4. MÉTODO ............................................................................................................... 6
4.1. PREPARO DE SOLUÇÃO TAMPÃO .................................................................. 6
4.1.1. Preparo de 100ml de solução 0,1 mol/L de ácido acético .......................... 6
4.1.2. Preparo de 50ml de solução tampão de ácido acético/acetato de sódiode pH 5,0. ....................................................................................................................... 6
4.2. TESTE DO EFEITO TAMPONANTE DA SOLUÇÃO PREPARADA ................... 7
4.2.1. Utilização do indicador verde de bromocresol ........................................... 7
4.2.2. Utilizando o indicador vermelho de metila .................................................. 8
5. RESULTADOS ....................................................................................................... 9
6. DISCUSSÃO ......................................................................................................... 15
7. CONCLUSÃO ....................................................................................................... 16
 REFERÊNCIAS .................................................................................................... 17