Resumo area I parasitologia (2)

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Resumo área I – parasitologia 
Fases dos exames laboratoriais: 
• Pré-analítica: Orientação ao paciente, coleta, transporte, conservação, registro da 
amostra; 
• Analítica: Exames macroscópicos, processamento da amostra e exames 
microscópicos; 
• Pós analítica: Emissão do laudo. 
Sistematização do EPF é feita através da: fase pré-analítica (orientações ao paciente, coleta 
da amostra, transporte, conservação da amostra, controle de qualidade) - Fase analítica 
(escolha da metodologia, registro, controle de qualidade, exame macroscópico, 
processamento e exame microscópico), fase pós-analítica (resultado laboratorial e controle 
de qualidade). 
Para melhorar a qualidade num exame parasitológico de fezes (EPF) é necessário 
padronização das formas de solicitação e procedimentos de coleta, orientação do cliente 
verbal e por escrito, coleta de até 3 amostras num período de 10 dias, recusa de amostras 
com justificativa consistente. Para amostras liquidas é necessário examinar em até 30 
minutos após a evacuação e as pastosas no máximo 60 minutos. 
Amostras: 
1. Número de amostra varia de 6 a 3 amostras, em dias alternados num período de 14 a 
10 dias; 
2. Amostra fecal formada: em até 24hras; 
3. Amostra fecal pastosa: examinar uma hora após da evacuação; 
4. Amostra fecal liquida: examinar em até 30 minutos após a evacuação. 
Tipos de amostras: FEZES 
DIARREICAS: 
• Análise pelo método direto (lâmina com amostra fresca), para visualização do 
movimento de trofozoítos; 
• Concentração da amostra para visualização de parasitos; 
• Coloração permanente; 
• Analise não pode ultrapassar 60 minutos de coleta, caso contrário, necessário usar, 
métodos de conservação. 
ESTEATORREICAS 
• Análise pela técnica de Ritchie. 
FORMADAS 
• Análises diversas. 
PASTOSAS 
• Análise não pode ultrapassar 1 hora da coleta. 
Conservação: 
• Temporária - Refrigeração (3° a 5°C) em recipientes fechados (para evitar 
dessecamento). Ovos viáveis por alguns dias, já larvas de S. Stercoralis e 
Ancilostomídeos tornam-se inviáveis para a pesquisa; 
• Permanente: Soluções de formaldeído, álcool polinílico (PVA). 
Coloração: 
• Temporária: Solução de lodo (iodo de lugol). Coloração de ovos, cistos, larvas e 
trofozoítos; 
• Permanente: Método de tricrômio (mas simples), hematoxilina. Identificação de 
trofozoítos, ocasionalmente cistos e confirmação de espécie. 
Outras amostras 
• Urina; 
• Escarro - Larvas de Ascaris Lumbricoides, S. stercoralis e de Ancilostomideo; 
protozoários como Entamoeba histolytica. Examinado a fresco com solução de lugol; 
• Swab anal; 
• Secreção vaginal – T. vaginalis; 
• Conteúdo duodenal – larvas de S. stercoralis. 
Técnicas (incluem, condutas, reagentes, instrumentos) 
Flutuação: Baseia-se na diferença de densidade entre os ovos de helmintos, cistos de 
protozoários e a solução (ZnSO4 ou sacarose) de elevada densidade. Divide-se em simples ou 
por centrifuga. 
✓ Vantagens: Formação na superfície do tubo de uma membrana clara com poucos 
detritos fecais e a remoção seletiva de ovos e cistos, mesmo quando em pequeno 
número no bolo fecal; 
✓ Desvantagens: baixa especificidade para ovos “pesados”, a densidade dos regentes 
pode alterar a parede dos ovos e dos cistos; 
✓ Tecnica de flutuação mais usada é a de FAUST ET. AL. 
Faust et.al. - Centrifugo-flutuação em sulfato de zinco (ZnSO4): Estruturas leves, alta carga 
parasitária. NÃO É POSSÍVEL USAR EM FEZES ESTEATORREICAS!!!!!!!!!! 
A técnica de Faust et.al., também chamada de centrifugo-flutuação em solução de sulfato de 
zinco, tem como principal vantagem a produção de esfregaços microscópicos relativamente 
livres de detritos fecais. 
Sedimentação: Baseia-se na sedimentação pela gravidade ou por centrifugação. 
✓ Desvantagens: grande quantidade de detritos fecais no sedimento; 
✓ Técnicas de sedimentação mais usadas: Lutz (Hoffman, Pons & Janer – HPJ), Ritchie 
Lutz ou HPJ - sedimentação espontânea em água. 
Descrição de um procedimento analítico: Colocar 3 a 10g de fezes num recipiente e 
dissolver com aproximadamente 50mL de água utilizando um bastão de vidro ou palito de 
madeira. Em um cálice de vidro próprio para esse método, coloca-se uma peneira com gaze 
dobrada em quatro e a suspenção de fezes já dissolvidas é coada. Deixar o cálice em 
repouso por no mínimo 1hra e máximo de 24hras e colher o sedimento da parte afunilada do 
cálice. Preparar dois esfregaços, um corado pela solução de iodo (Lugol) e outro não 
corado. Cobrir com lamínulas e observar ao microscópio. - O procedimento refere-se à 
técnica de Hoffman, Pons e Janer (HPJ). 
Métodos para o isolamento de larvas de nematoides: Pesquisa de estágios de evolução de 
larvas de S. stercoralis e de Ancilostomídeo. 
✓ Material biológico analisado: fezes e escarro; 
✓ Material fecal NÃO preservado (fezes/escarro frescos); 
✓ BAERMANN e MORAES – Termotropismo e hidro tropismo positivo de larvas - 
Utiliza água aquecida. 
Para o diagnostico por EPF é usado a técnica de concentração - Tecnica da sedimentação 
espontânea em água -, sendo encontrado ovos. 
A técnica de Kato-Katz é a mais indicada para quantificar ovos de helmintos. 
Boas práticas laboratoriais relacionadas ao diagnostico parasitológico: Emprego de 
amostras múltiplas aumenta a sensibilidade do exame parasitológico de fezes (EPF), os 
cistos de protozoários e as larvas de helmintos são corretamente identificados através da 
coloração pela solução de iodo (Lugol). 
Observações: 
• As preservações temporárias (refrigeração a 4°C) ou permanente (ex. formaldeído a 
10%) não são indicadas para o método de Bermann-Moraes; 
• O preservador formaldeído (5 a 10%) é amplamente utilizado em amostras fecais, 
possibilitando a pesquisa de estágios morfológicos de protozoários e helmintos. 
Método de Graham (ou fita adesiva ou anal swab) 
• Especialmente para Enterobius vermicularis; 
• Visualização de ovos até vermes adultos; 
• Coleta ideal: pela manhã, antes da higiene da área, sem ter “ido aos pés”. 
Métodos quantitativos: Os únicos parasitas humanos para os quais é possível correlacionar a 
produção de ovos com a carga parasitária são Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, 
ancilostomídeos (Ancylostoma duondenale e Necator americanus) e Schistosoma mansoni. 
KATO-KATZ – quantificação de ovos de helmintos em amostras fecais. 
✓ Usado para determinar a intensidade da infecção; 
✓ NÃO há como usar fezes diarreicas; 
✓ SEM emprego de concentração de amostras (DIRETO), com baixa quantidade de 
fezes (50/60mg); 
✓ Lamínulas de celofane mergulhadas em solução de verde de malaquita e glicerina 
(24h antes); Verde de malaquita: confere proteção aos olhos durante o exame 
microscópico Glicerina: conserva as fezes e CLARIFICA as formas parasitárias. 
✓ Laudo: nº de ovos encontrados x 24 (fatos) = ovos de ....../g fezes (OPG); 
✓ Ovos por grama (OPG) é o número de ovos por grama de fezes e pode ser definido 
como um índice de densidade dos ovos nas fezes. 
Quando as amostras não podem ser examinadas no mesmo dia, devem ser guardadas em 
refrigerador e, se for necessário transportá-las para laboratórios distantes, deve-se 
adicionar formol 5-10%, de forma que cessem as fermentações, evitando-se a produção de 
gases que causaria a abertura do recipiente. A fixação com formol torna as amostras de 
fezes inadequadas para o exame de análise quantitativa de parasitos. 
Período de incubação: Decorre entre o tempo de infecção e o aparecimento dos primeiros 
sintomas clínicos. Período pré-patente: é o que decorre desde a infecção até o aparecimento 
das primeiras formas detectáveis do agente infeccioso. 
Zoonose: Doenças e infecções que são naturalmente transmitidas entre animais vertebrados e 
os humanos. Anfixenose: Doença que circula indiferentemente entre humanos e animais, isto 
é, ambos são hospedeiros. Antroponose: Doença exclusivamente humana. 
AÇÃO DOS PARASITOS SOBRE O HOSPEDEIRO: 
▪ESPOLIADORA: Quando o parasito absorve nutrientes ou mesmo sangue do 
hospedeiro. Ex.: Ancilostomídeos ingerem sangue da mucosa intestinal. 
▪ TÓXICA: Algumas espécies produzem enzimas ou metabólitos que podem lesar o 
hospedeiro. Ex.: as reações teciduais (intestino, fígado, pulmões) produzidas pelas 
secreções no miracídio dentro do ovo do Schistosoma mansoni. 
▪ MECÂNICA: Algumas espécies podem impedir o fluxo de alimento, bile ou 
absorção alimentar. Assim, o enovelamento de A. lumbricoides dentro de uma alça 
intestinal, obstruindo-a. 
▪ TRAUMÁTICA: É provocada, principalmente, por formas larvárias de helmintos, 
embora vermes adultos e protozoários também sejam capazes. Ex.: ação das ventosas 
dos Cestoda na mucosa intestinal. 
▪ ENZIMÁTICA: É o que ocorre na penetração da pele por cercarias de S. mansoni 
NEMATÓIDES INTESTINAIS: Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, Enterobius 
vermicularis, Ancilostomídeos, Strongyloides stercoralis. 
PRÁTICA: TÉCNICA DA SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA EM ÁGUA (HPJ) 
A ascaridiose é uma das helmintoses mais comuns no Brasil, sendo prevalente em outros 
países, principalmente em regiões subtropicais do planeta. Nas sociedades de baixo nível 
socioeconômico, sua prevalência ultrapassa 80% da população. O quadro clínico pode 
caracterizar-se por dor abdominal em cólica, náuseas, febre, dispneia, roncos e sibilos à 
auscult. Considerando a ascardiose e seu agente etiológico, durante o ciclo de vida do 
Ascaris lumbricoides, ocorre a passagem do parasita pelo intestino, pelo sangue e pelos 
pulmões. Ascaris lumbricoides é um parasito diagnosticado no EPF. 
Observações: 
• Para a coleta de Enterobius vermiculares se usa a técnica da fita gomada sobre a 
região perianal, sendo a fita estendida na lâmina do microscópio com lado adesivo 
para baixo; 
• Os exames de fezes visam revelar a presença de protozoários (trofozoítos e cistos) ou 
helmintos (ovos e larvas) habitualmente encontrados parasitando o sistema digestivo 
do homem. 
Morfologia: as larvas de Strongyloides stercoralis apresentam o vestíbulo bucal curto e 
primórdio genital nítido e as larvas de Ancilostomídeo apresentam vestíbulo bucal amplo e 
primórdio genital não identificável. 
Sobre a pesquisa de larvas de helmintos: Os métodos de pesquisa de ovos são inadequados 
ou deficientes para o diagnóstico de estrongiloides que deve ser preferencialmente feito pela 
busca de larvas ou nas fezes. A técnica de baermann-morares, para a pesquisa de larvas de 
helmintos, podem ser utilizadas apenas com fezes frescas. 
Ciclo de vida dos parasitos: Os parasitos causadores de teníase e da esquistossomose no ser 
humano possuem ciclo de vida heteróxeno, Ascaris lumbricoides apresenta ciclo de vida 
monoxenico. 
Enterobius vermicularis pode ser pesquisado pelo método de Graham. Ovo de 
ancilostomideo identificado pela metodologia de sedimentação espontânea, podendo ser 
isolada pelo método de Baermann-Moraes. 
TREMATÓDEOS DO FÍGADO, PULMÕES E SANGUE: Fascíola hepática e 
Schistosoma mansonia 
PRÁTICA: SEDIMENTO FECAL DE HELMINTOS - Método de KATO-KATZ 
Observações esquistossomose: 
• O homem é o principal hospedeiro definitivo e nele o parasita apresenta a forma 
adulta, reproduz-se sexuadamente e possibilita a eliminação dos ovos de S. mansoni 
no ambiente, pelas fezes. 
• O homem adquire a esquistossomose por meio da penetração ativa das cercarias na 
pele. 
• Quando o homem se infecta tem inicialmente uma fase inicial, pré-postural até 30 dias 
após a infecção depois de uma fase de migração do trematódeo, depois a fase aguda 
com início da oviposição, seguida pela fase crônica que pode durar vários anos 
• O contato com águas contaminadas por cercarias utilizadas para atividades 
profissionais ou de lazer, como banhos, pescas, lavagem de roupa e louça ou plantio 
de culturas irrigadas, com presença de caramujos infectados pelo S. mansoni, constitui 
risco para se adquirir a esquistossomose. 
• Schistosoma mansoni apresenta dois tipos de hospedeiro, um intermediário 
invertebrado (caramujo) e um definitivo vertebrado, o diagnóstico de eleição em seres 
humanos é parasitológico 
Fasciolose tem estágio de transmissão em metacercária e estágio de diagnostico 
laboratorial em pesquisa de ovos pelo diagnostico parasitológico. 
CESTOIDES INTESTINAIS: Taenia solium, Taenia saginata, H. nana e H. diminuta 
PRÁTICA: SEDIMENTO FECAL DE HELMINTOS 
Se você estiver realizando um exame parasitológico de fezes e visualizar ovos: um deles é 
oval ou redondo, 80um, membrana dupla, presença de oncosfera (embrião hexacanto) e 
outro esférico com 30-35um, casca protetora radiada (embrióforo) e dentro possui oncosfera 
(embrião hexacanto), o laudo do exame será com presença de ovos de Hymenolepis 
diminuta e de ovos de Taenia spp. 
− Ovos de Taenia spp. são constituídos por uma casca protetora, embrióforo, que é 
formado por blocos piramidais de quitina unidos entre si por uma substância 
(provavelmente proteica) cementante que lhe confere resistência no ambiente. 
− Taenia spp. ovos - são indistinguíveis, medem 30-35 micrômetros de diâmetro e são 
estriados radialmente. A oncosfera interna contém seis ganchos. 
− Hymenolepis diminuta: Ovos de formato oval, 80 µm, membrana dupla, presença de 
oncosfera. 
A cisticercose é adquirida por humanos através da ingestão acidental de ovos viáveis de 
Taenia solium através de infecção externa, autoinfecção interna e heteroinfecção. 
• Cisticercose é um quadro grave devido ao difícil diagnostico, causado pela ingestão 
do ovo da Taenia solium. Ovo libera oncosfera e libera o cisticerco, este causa 
tropismo cerebral – neurocisticercose. Ocorre também a autoinfecção externa 
através da ingestão de ovos que foram eliminados nas fezes, autoinfecção interna 
e a heteroinfecção, que seria a infeção sem ter teníase, somente cisticercose. 
• Teníase é causada pela ingestão de cisticercos de Taenia solium, nas fezes podem 
conter ovos e proglotes. 
• Taenia sagitata não causa cisticercose, somente Teníase, provém da carne bovina. 
Somente a Taenia solium causa cisticercose, esta é da carne suína. 
• Cisticerco – Verme adulto – Teníase 
• Ovo – Cisticerco – Cisticercose 
Observações gerais 
• Para identificação da motilidade dos trofozoítos intestinais é usada a técnica do 
método direto 
• Os trofozoítos predominam em fezes liquidas e o exame deve ser realizado em 
30minutos 
• Os cistos de protozoários e as larvas de helmintos são corretamente identificados 
através da coloração pela solução de iodo (Lugol) 
• O método direto apresenta baixa sensibilidade, porém é indicado para a pesquisa de 
trofozoítos em fezes diarreicas 
• Colorações temporárias, como solução de iodo, são obrigatoriamente utilizadas para 
evidenciar ovos de helmintos ( ps: falso, pois ovos não precisam ser corados) 
• Os métodos da fita de celofane adesiva e transparente ou do swab anal são indicados 
para o diagnóstico de Enterobius vermicularis 
• O preservador/fixados formaldeído (5 a 10%) é muito utilizado em amostras fecais, 
possibilitando a pesquisa de estágios morfológicos de protozoários e helmintos. 
• A principal vantagem da técnica de Faust é a produção de esfregaços macroscópicos 
relativamente livres de detritos fecais 
• O método de Baermann-Moraes fundamenta-se no termo hidro tropismo positivo das 
larvas, nesse método não é necessário preservar as amostras fecais. Podem ser usadas 
fezes diarreicas e o exame microscópico deve ser realizado com coloração pela 
solução de iodo para diferenciação de larvas de Ancilostomídeos 
• Em relação a carga parasitária, o método de Kato-Katz fundamenta-se na 
quantificação dos ovos dos helmintos Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, 
Schistosoma mansoni e Ancilostomídeos. Recomenda-se a utilização de amostras 
fecais frescas, o resultado final pode ser expresso em OPG (ovos por grama de fezes) 
desde que o n° de ovos visualizados no esfregaçoseja multiplicado pelo fator 24. O 
exame microscópico deve ser realizado com alta intensidade de luz 
• Ascaridose é o parasitismo desenvolvido no ser humano por um grande nematoide - 
Ascaris lumbricoides. Normalmente a única forma de infectante do parasito é o ovo 
embrionado, contendo uma larva de segundo estado e o diagnóstico é o encontro de 
ovos e vermes adultos nas fezes. A via migratória da larva pelo organismo humano 
deve obrigatoriamente passar pelos pulmões e o diagnóstico é encontro de larvas no 
escarro. O desenvolvimento dos ovos se dá no meio exterior (fora do hospedeiro0 e 
requer oxigênio e o diagnóstico é encontro de ovos nas fezes. O desenvolvimento 
sexual completa-se em cerca de dois meses, e após esse período as fêmeas começam a 
pôr ovos e o diagnóstico é encontro de larvas no escarro. 
• Ciclo de vida direto ou monóxeno: parasitos que utilizam apenas um hospedeiro. 
Ciclo de vida indireto ou heteróxeno: parasitos que necessitam de um ou mais 
hospedeiros intermediários. 
• Doenças parasitárias cujo ciclo de vida é monóxeno são ascaridíase e ancilostomose, 
identificadas em materiais biológicos como fezes e escarro 
• Strongyloides stercoralis, helminto intestinal que se beneficia da baixa condição 
imunológica do ser humano, determinando o alto parasitismo que pode levar o 
indivíduo à morte. Para pesquisa deste verme deve ser realizada através do método de 
Baermann-Moraes, a fim de encontrar larvas. 
• Na esquistossomose em área focal, o estágio de transmissão aos humanos são as 
cercarias, o estágio para o diagnostico são os ovos, a metodologia laboratorial 
utilizada é Kato-Katz (2) + Lutz (1) em até 6 amostras 
• Ancilostoma duodenale e Necator americanus são ancilostomideos, a infecção por N. 
americanus se dá por penetração cutânea das larvas filarioides e encontro de ovos ou 
larvas nas fezes 
• Um parasito da classe Cestoda é caracterizado pela ausência completa de aparelho 
digestivo, segmentação do corpo em proglotes, dotadas cada qual de um sistema 
reprodutor hermafrodita e presença de quatro ventosas do escolex. Esse parasita, na 
sua fase adulta, tem o ser humano como único hospedeiro e fase larvária deve 
parasitar obrigatoriamente os bovídeos, para completar seu ciclo de vida - Taenia 
saginata, encontro de ovos nas fezes 
• Parasitas cujo ciclo de vida é heteróxeno e os materiais biológicos a serem 
identificadas as estruturas parasitárias são: Teníase e esquistossomose - fezes e sangue 
• Trichuris trichiura tem estágio de transmissão com a ingestão de ovos e diagnóstico 
como a identificação dos ovos 
• Um parasito da classe cestoda é caracterizado pela ausência completa de aparelho 
digestivo, segmentação do corpo em proglotes, dotadas cada qual de um sistema 
reprodutor hermafrodita e presença de quatro ventosas no escolex. Esse parasita, na 
sua fase adulta, tem o ser humano como único hospedeiro e na fase larvária infecta 
animais e pode acidentalmente infectar seres humanos. - Taenia solium, encontro de 
proglotes e ovos nas fezes 
• Eosinofilia é uma das alterações hematológicas encontradas com maior frequência 
num paciente portador de estrongiloidose 
• Doenças parasitárias cujo ciclo é monoxenico e os materiais biológicos/ metodologia 
a serem identificadas as estruturas são: estrongoidose e enterobiose- líquido duodenal 
e anal swab. 
• Os procedimentos realizados durante a coleta e o transporte de amostras garantem a 
qualidade do material que será analisado. É necessário manter material acondicionado 
e, quando for recomendado, manter com refrigeração até o momento da realização do 
exame. Para isolamento de larvas não utilizar conservante químicos. O processamento 
e microscopia de amostras líquidas é até em 60 minutos de sua coleta 
• Exame parasitológico de fezes (EPF) - Padronização das formas de solicitação e 
orientação e entendimento, padronização dos procedimentos de coleta e registro das 
ocorrências fora o esperado, coleta de mais amostras com espaçamento entre elas, 
recusa de amostras inadequadas identificando as justificativas consistentes. 
• Zoonose: Doenças e infecções que são naturalmente transmitidas entre animais 
vertebrados e os humanos. Anfixenose: doença que circula indiferentemente entre 
humanos e animais, isto é, ambos são hospedeiros. Antroponose: Doença 
exclusivamente humana. Antropozoonose: doença primaria de animais que pode ser 
transmitida em humanos. 
• A transmissão das formas infectantes do parasita (ovos e larvas) acontece da seguinte 
forma: Pelas fezes, como parasitoses intestinais e em algumas parasitoses no fígado. 
• Para a coleta de exames de fezes pode ter até 6 amostra, usa-se laxante salino e não 
oleoso, pois pode parecer amebas por conta das gotículas. Não é necessário encher o 
pote, vasilhame deve estar limpo e seco. Na pesquisa de larvas não se deve refrigerar, 
pois perder o tropismo, necessitam de “calor”. 
• Nas fezes formadas contêm cistos e ovos, já nas liquidas trofozoítos 
• Os conservantes mantem a morfologia das estruturas parasitárias 
• Coloração temporária é a mais usada, serve para observação de estrutura parasitária 
Procedimento analítico: misturar bem uma parte de fezes com dez partes de água de 
torneira. Coar através de gaze dobrada quatro vezes em um tubo de centrifuga, centrifugar a 
2500rpm por 1min. Descartar o sobrenadante. Ressuspender o sedimento com água de 
torneira. Completar o volume, centrifugar e decantar como anteriormente. Repetir a 
centrifugação e a lavagem até que o sobrenadante se apresente claro. Método da fita 
adesiva e transparente, vermes adultos fêmeas e ovos.