ROTEIRO DE AULA PRÁTICA - INTRODUÇÃO À BIOLOGIA CELULAR E DO DESENVOLVIMENTO - (032 99194 - 8972)

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(032 99194 - 8972)
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Roteiro de Aula Prática
Introdução à Biologia Celular e do Desenvolvimento
Disciplina: Introdução à Biologia Celular e do Desenvolvimento
ROTEIRO DE AULA PRÁTICA 1
Unidade: 3
Aula (White Label)/Seção (KLS): 3.1
	SOFTWARE
	· Software / ☒ Acesso on-line
· Pago / ☒ Não Pago
	Infraestrutura:
	O LABORATÓRIO VIRTUAL DEVE SER ACESSADO POR COMPUTADOR. ELE NÃO DEVE SER ACESSADO POR CELULAR OU TABLET.
O REQUISITO MÍNIMO PARA O SEU COMPUTADOR É UMA MEMÓRIA RAM DE 4 GB. SEU PRIMEIRO ACESSO SERÁ UM POUCO MAIS LENTO, POIS ALGUNS PLUGINS SÃO
BUSCADOS NO SEU NAVEGADOR. A PARTIR DO SEGUNDO ACESSO, A VELOCIDADE DE ABERTURA DOS EXPERIMENTOS SERÁ MAIS RÁPIDA.
1. Caso utilize o Windows 10, dê preferência ao navegador Google Chrome;
2. Caso utilize o Windows 7, dê preferência ao navegador Mozilla Firefox;
3. Feche outros programas que podem sobrecarregar o seu computador;
4. Verifique se o seu navegador está atualizado;
5. Realize teste de velocidade da internet.
	Descrição do software:
	Laboratório Algetec
	ATIVIDADE PRÁTICA 1
	Atividade proposta:
	Extração e purificação de DNA e RNA
	Objetivos:
	Analisar as funções e as finalidades de cada reagente e/ou material descritos no protocolo de extração e purificação de DNA ou RNA;
Definir cada etapa descrita no protocolo de extração e purificação de DNA ou RNA.
	Procedimentos para a realização da atividade:
	Materiais necessários:
Jaleco;
Luvas;
Máscara;
Óculos;
Centrífuga de Eppendorf; Vórtex;
	Incubadora;
Tubo de coleta com amostra de sangue; Tubo Eppendorf;
Tubo spin;
Hipoclorito de sódio;
Ponteira para micropipeta; Micropipeta;
Nanodrop (espectrofotômetro); Água Mili-Q;
Notebook;
Álcool 96%;
Kit de extração DNA – Tampão de lise S;
Kit de extração DNA – Tampão de lavagem SI; Kit de extração DNA – Tampão de lavagem SII; Kit de extração DNA – Tampão de eluição SI; Kit de extração DNA – Proteinase K tipo L;
Kit de extração DNA – Tampão de proteinase.
PROCEDIMENTO
1. Segurança do experimento
Coloque os equipamentos de proteção individual localizados no “Armário de EPIs”.
	
Visualize a pia clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Pia” localizada dentro do painel de visualização no canto superior esquerdo da tela. Se preferir, também pode ser utilizado o atalho do teclado “Alt+1”.
Abra a torneira clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a pia.
	
Abra o armário de EPI clicando com o botão esquerdo do mouse sobre as portas.
Selecione os EPIs necessários para a realização do ensaio clicando com o botão esquerdo do mouse sobre eles. Nesse experimento, é obrigatório o uso de jaleco, luvas máscaras e óculos.
	
Feche as portas do armário de EPIs clicando com o botão esquerdo do mouse sobre elas.
2. Etapa da Lise
Nesta etapa, você deverá pipetar 25 μl da Proteinase K no tubo Eppendorf. Em seguida, pipetar 200 μl da amostra de sangue no mesmo tubo, e por último, pipetar 200 μl do tampão lise S no tubo. Tampe o Eppendorf e homogeneíze no Vórtex por 20 segundos. Após esse tempo, incube o Eppendorf por 15 min.
	Para isto, siga as etapas ilustradas a seguir:
Visualize a bancada clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Bancada” ou através do atalho do teclado “Alt+3”.
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume”.
	Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto inferior esquerdo digite o volume e, em seguida, clique em “OK”.
Posicione a pipeta no tubo de Proteinase K clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Proteinase K”.
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”.
	
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume”.
	
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”.
Posicione a pipeta no tubo com a amostra de sangue clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Amostra de sangue”.
	
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”.
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
	
Posicione a pipeta no tampão de lise S clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão de lise S”.
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”.
	
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
Tampe o tubo Eppendorf clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
	
Homogeneíze o eppendoff no vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo.
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Pular tempo”.
	
Retire o tubo do vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo.
Coloque o tubo na incubadora clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo.
	
Feche a tampa da incubadora clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ela.
Ligue a incubadora clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de ligar.
	
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Pular tempo”.
Abra a tampa da incubadora clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ela.
	
Retire o tubo da incubadora cliquando com o botão direito do mouse sobre a mesma.
3. Etapa da Ligação
Nesta etapa, você deverá pipetar 210 μl de álcool 96% no Eppendorf e homogeneízar de novo no Vórtex. Em seguida, pipete 640 μl do Eppendorf para o tubo spin e centrifugue a
11.000 rpm por 1 minuto.
	Para isto, siga as etapas ilustradas:
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume”.
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”.
	
Posicione a pipeta no recipiente de álcool 96% pura clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Álcool 96%”.
Posicione a pipeta no tubo Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”.
	Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
Tampe o tubo Eppendorf clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
Homogeneíze o eppendoff no vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo.
	
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”.
Retire o tubo do vortex clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo.
	
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume”.
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no cantoinferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”.
	
Posicione a pipeta no Eppendorf clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Eppendorf”.
Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”.
	
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
	
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
Ajuste a velocidade de rotação clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a seta para cima.
	
Ajuste o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a seta para cima.
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a tampa.
	
Ligue a centrífuga clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de ligar.
Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”.
	
4. Etapa da Lavagem
Nesta etapa, você irá retirar o Eppendorf da centrífuga, descartar o tubo de coleta e colocar o tubo spin em um novo tubo de coleta. Em seguida, pipete 500 μl do tampão de lavagem SI no tubo spin e centrifugue novamente. Repita o mesmo processo de troca de tubo de coleta, porém a lavagem irá utilizar 600 μl o tampão de lavagem SII, e centrifugue novamente. Por fim, repita o mesmo processo da troca do tubo de coleta e centrifugue novamente.
Siga as ilustrações abaixo:
Abra a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a tampa.
	
Retire o conjunto de tubos clicando com o botão direito do mouse sobre a centrífuga.
Retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin”.
	
Descarte o tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Descartar”.
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume”.
	
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”.
Posicione a pipeta no tampão lavagem SI clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão lavagem SI”.
	
Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”.
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
	
Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
	
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a tampa.
Na sequência, repita os passos de centrífuga descritos acima. Ao finalizar a centrifugação, retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin” e descarte o tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Descartar”. Lembre-se
estas orientações já estão descritas no roteiro.
	
Em seguida, ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume”.
Posicione a pipeta no tampão lavagem SII clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão lavagem SII”.
	Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”.
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
	
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a tampa.
	
Na sequência, repita os passos de centrífuga descritos acima. Ao finalizar a centrifugação, retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin” e descarte o tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Descartar”. Lembre-se estas orientações já estão descritas no roteiro.
Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
	
Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a tampa.
	
Na sequência, repita os passos de centrífuga descritos acima.
5. Etapa da Eluição
Nesta etapa, retire o Eppendorf da centrífuga, descarte o tubo de coleta e coloque o tubo spin em um novo tubo de coleta. Em seguida, pipete 200 μl do tampão de eluição S no tubo spin, espere 1 minuto e centrifugue a amostra.
Observe as orientações e lembre-se que estas etapas já foram ilustradas acima.
· Ao finalizar a centrifugação, retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin” e descarte o tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Descartar”.
· Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume” para 200 μl (conforme já demonstrado) e posicione a pipeta no tampão eluição S clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tampão eluição S”.
· Posicione a pipeta no tubo spin clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tubo spin”.
· Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
· Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”.
	· Coloque o tubo spin dentro do tubo de coleta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
· Coloque na centrífuga o conjunto de tubos clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
· Feche a tampa clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de abrir e fechar a tampa. Ligue a centrífuga clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de ligar.
· Pule o tempo clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box “Avançar”.
6. Realizando a mensuração da amostra
Nesta etapa, retire o Eppendorf da centrífuga, e retire o tubo spin de dentro do tubo de coleta. Em seguida, abra o espectrômetro e limpe-o, depois pipete 10 μl de água mili-q no mesmo e feche o espectrômetro. Ligue o notebook, clique na opção “Nucleic acid” e depois na opção “blank”. Por último, limpe o novamente o espectrômetro e pipete 10 μl da amostra, feche o espectrômetro e selecione a opção “Measure”.
Retire o conjunto de tubos clicando com o botão direito do mouse sobre a centrífuga.
Retire o tubo spin do tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre o tubo de coleta e selecionado o box “Retirar tubo spin”.
	
Visualize o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Espectrofotômetro” ou através do atalho do teclado “Alt+7”.
Abra o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre o mesmo.
	
Limpe o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o mesmo.
Visualize a bancada clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Bancada” ou através do atalho do teclado “Alt+3”.
	
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e,em seguida, selecione “Reajustar volume”.
Mude o volume da pipeta clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o box no canto inferior esquerdo, em seguida, clique em “OK”.
	
Posicione a pipeta na água ultra pura clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Água Ultra Pura”.
Posicione a pipeta no espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Espectrofotômetro”.
	
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
Feche o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre ele.
	
Visualize o notebook clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Notebook” ou através do atalho do teclado “Alt+8”.
Ligue o notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre o botão de ligar.
	
Selecione “Nucleic Acid” no notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a tela.
Selecione “Blank” no notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a tela.
	
Visualize o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Espectrofotômetro” ou através do atalho do teclado “Alt+7”.
Abra o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre ele.
	
Limpe o espectrofotômetro clicando com o botão esquerdo do mouse sobre ele.
Visualize a bancada clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Bancada” ou através do atalho do teclado “Alt+3”.
	
Ajuste o volume da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Reajustar volume”.
Posicione a pipeta no tubo de coleta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Tubo de Coleta”.
	
Posicione a pipeta no espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Colocar em Espectrofotômetro”.
Troque a ponteira da pipeta clicando com o botão direito do mouse sobre a mesma e, em seguida, selecione “Trocar ponteira”.
	
Feche o espectrofotômetro clicando com o botão direito do mouse sobre ele.
Visualize o notebook clicando com o botão esquerdo do mouse na câmera com o nome “Notebook” ou através do atalho do teclado “Alt+8”.
	
Selecione “Measure” no notebook clicando com o botão esquerdo do mouse sobre a tela.
	Checklist:
	Observar e analisar as etapas realizadas nos procedimentos focando na compreensão da técnica
e reagentes.
	Resultado: Aluno, você deverá entregar:
	Um arquivo contendo as respostas para os questionamentos a seguir:
1. No que consiste a etapa de eluição da purificação?
2. Qual a diferença entre os tampões de lavagem SI e SII?
3. Na etapa de ligação, porque se utiliza o álcool 96%?
	Referências:
	WATSON, J. D. Biologia molecular do gene. 7. ed. Porto Alegre: Artmed, 2015.
MENCK, C. F. M. Genética molecular básica: dos genes aos genomas. 1. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2017.
GRIFFITHS, A. J. F. Introdução à genética. 12. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2022.
ROTEIRO DE AULA PRÁTICA 2
Unidade: 4
Aula (White Label)/Seção (KLS): 4.1
	SOFTWARE
	· Software / ☒ Acesso on-line
· Pago / ☒ Não Pago
	Infraestrutura:
	O LABORATÓRIO VIRTUAL DEVE SER ACESSADO POR COMPUTADOR. ELE NÃO DEVE SER ACESSADO POR CELULAR OU TABLET.
O REQUISITO MÍNIMO PARA O SEU COMPUTADOR É UMA MEMÓRIA RAM DE 4 GB. SEU PRIMEIRO ACESSO SERÁ UM POUCO MAIS LENTO, POIS ALGUNS PLUGINS SÃO
BUSCADOS NO SEU NAVEGADOR. A PARTIR DO SEGUNDO ACESSO, A VELOCIDADE DE ABERTURA DOS EXPERIMENTOS SERÁ MAIS RÁPIDA.
1. Caso utilize o Windows 10, dê preferência ao navegador Google Chrome;
2. Caso utilize o Windows 7, dê preferência ao navegador Mozilla Firefox;
3. Feche outros programas que podem sobrecarregar o seu computador;
4. Verifique se o seu navegador está atualizado;
5. Realize teste de velocidade da internet.
	Descrição do software:
	Laboratório Algetec
	ATIVIDADE PRÁTICA 2
	Atividade proposta:
	Analisar as lâminas do aparelho reprodutor feminino e masculino, bem como as características
de cada órgão como pênis, ductos genitais, glândulas acessórias, testículo, epidídimo e ovário.
	Objetivos:
	Observar as estruturas dos aparelhos reprodutores feminino e masculino;
Analisar as características de cada órgão como pênis, ductos genitais, glândulas acessórias, testículo, epidídimo e ovário;
Identificar os tecidos presentes nestas estruturas.
	Procedimentos para a realização da atividade:
	Materiais necessários:
Microscópio óptico Kit de lâminas; Laminário;
Óleo de imersão;
Solução de limpeza (50% éter sulfúrico e 50% clorofórmio); C2H6O (álcool etílico);
Cotonete;
Algodão;
Papel macio.
PROCEDIMENTO
	1. Segurança do experimento
Higienize as mãos na pia e coloque os equipamentos de proteção individual localizados no “Armário de EPIs: jaleco e luvas”.
2. Escolhendo a lâmina
Abra o laminário, selecione uma lâmina e mova para o microscópio. No laminário contém as seguintes lâminas: testículo, epidídimo, próstata, vesícula seminal, pênis e ovário.
Selecione a lâmina clicando com o botão esquerdo do mouse na lâmina.
3. Visualizando a lâmina no microscópio
Ligue o microscópio. Visualize a lâmina na objetiva de 4x, 10x e 40x. Atente-se à instrução que, para movimentação do revólver ou para efetuar as configurações de posicionamento dos parafusos, condensador ou diafragma, deve-se clicar com o botão esquerdo do mouse sobre a área desejada e movimentar o cursor do mouse para direita ou esquerda. Coloque uma gota do óleo de imersão sobre a lâmina no microscópio e mude para a objetiva de 100x. Retorne a lâmina para o laminário. Selecione as demais lâminas para observação.
Visualize a lâmina na objetiva de 4, 10 e 40x pressionando com o botão esquerdo do mouse sobre o revólver e movimentando o cursor à direita ou à esquerda.
	
Para visualização na objetiva de 100x coloque o óleo de imersão clicando com o botão esquerdo do mouse no conta-gotas.
Visualize a lâmina na objetiva de 100x pressionando com o botão esquerdo do mouse sobre o revólver e movimentando o cursor à direita ou à esquerda.
	
Retire a lâmina do microscópio clicando com o botão esquerdo do mouse na lâmina de vidro.
Repita as etapas para as demais lâminas.
4. Ao finalizar, feche o laminário e desligue o microscópio. Limpe o microscópio clicando com o botão esquerdo do mouse no cotonete, algodão e lenço e papel filtro.
	Checklist:
	Observar as lâminas específicas para o experimento;
Observar e analisar as principais características estruturais dos tecidos observados; Observar e esquematizar as lâminas estudada.
	Resultados da aula prática: Aluno, você deverá entregar:
	Um arquivo contendo o desenho esquemático das estruturas observadas bem como a resposta para os questionamentos a seguir:
1. Quais os órgãos envolvidos com o sistema reprodutor feminino e masculino?
2. Qual a importância das células de Sertoli e Leydig?
	3. Quais os estágios de maturação dos folículos ovarianos?
	Referências:
	JUNQUEIRA, L. C. U. Biologia celular e molecular. 9.ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2012.
GARTNER, L. P. Atlas colorido de histologia. 7. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2018. PAWLINA, W. Ross histologia texto e atlas: correlações com biologia celular e molecular.
8. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2021.
SADLER, T. W. Langman, embriologia médica. 14. ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2021.
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