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1. Título Técnica de Kato Katz 2. Código POP- KK-001 3. Versão 1.0 4. Data de Emissão 21 de outubro de 2024 5. Elaborado por Taiza Sanches Campos 6. Aprovado por Rosalina Guedes Donato Santos 7. Objetivo Por sua simplicidade e objetividade, é o principal método de diagnóstico da esquistossomose mansoni é praticamente o único atualmente em uso nos exames de rotina. Também é o melhor método para ser usado em campanhas por sua rapidez de preparo, facilidade de estocagem para leitura além de permitir a estimativa da carga parasitária dos portadores de S. mansoni (BARBOSA, 2010). 8. Abrangência Este procedimento deve ser seguido por todos os profissionais de saúde, incluindo técnicos de laboratório, biólogos e médicos, envolvidos no diagnóstico de infecções parasitárias em unidades de saúde e laboratórios de análises clínicas. 9. Definições Kato Katz: Método de diagnóstico que utiliza uma amostra de fezes para detectar ovos de parasitas intestinais, possibilitando a contagem de ovos por grama de fezes (OPG). Amostra fecal: Material biológico coletado de um paciente para análise laboratorial. Helmintos: Vermes parasitas, como nematoides e platelmintos, que podem causar infecções intestinais. Contagem de OPG: Número de ovos de helmintos encontrados em um grama de fezes, utilizado para avaliar a carga parasitária. 10. Materiais e Equipamentos Lâminas de microscópio: 10 unidades Câmaras de Kato Katz: 10 unidades Espátulas ou palhetas: 10 unidades Amostras fecais: 1 amostra por paciente Luvas descartáveis: 1 par por procedimento Água destilada: 100 mL Lâmina de vidro: 10 unidades Microscópio: 1 unidade Etiquetas para identificação de amostras: 10 unidades Frascos para coleta de fezes: 10 unidades Registro de resultados: Planilha ou software para documentação 11. Procedimentos Preparação 1. Reunião de Materiais: Reunir todos os materiais e equipamentos necessários para a realização do teste. Verificar a validade e as condições de uso dos materiais. 2. Higiene: Lavar as mãos com água e sabão antes de iniciar o procedimento. Usar luvas descartáveis antes de manusear amostras fecais. 3. Ambiente de Trabalho: Assegurar que a área de trabalho esteja limpa e organizada. Desinfetar superfícies de trabalho antes de iniciar o procedimento. Execução 1. Coleta da Amostra: Orientar o paciente sobre a coleta da amostra fecal em um frasco limpo e seco. Instruir para coletar uma porção representativa das fezes, evitando contaminação com urina ou água. 2. Preparação da Amostra: Utilizar uma espátula para retirar aproximadamente 0,5 g da amostra fecal. Colocar a amostra na câmara de Kato Katz, distribuindo uniformemente. 3. Adição de Água: Adicionar lentamente água destilada até que a amostra fique coberta, evitando transbordamento. 4. Montagem: Fechar a câmara de Kato Katz com a tampa apropriada. Marcar a data e a hora na câmara para controle de tempo. 5. Incubação: Deixar a amostra em repouso em temperatura ambiente por 24 horas. 6. Análise Microscópica: Após 24 horas, preparar o microscópio e ajustar o foco. Colocar uma lâmina de vidro sobre a câmara e examinar ao microscópio, começando com uma objetiva de baixa potência para localização e, em seguida, utilizando objetiva de alta potência para contagem. 7. Contagem de Ovos: Contar o número de ovos de helmintos encontrados em um quadrante da lâmina. Repetir a contagem em pelo menos três áreas diferentes da lâmina para maior precisão. 8. Registro de Resultados: Registrar os resultados em uma planilha específica, anotando a quantidade de ovos por grama de fezes (OPG). Notar qualquer observação relevante sobre a amostra. Pós-Procedimento 1. Descarte de Materiais: Descartar as amostras e os materiais utilizados de acordo com as normas de biossegurança, utilizando recipientes apropriados para resíduos biológicos. 2. Limpeza do Ambiente: Desinfetar a área de trabalho e equipamentos utilizados, incluindo microscópio e lâminas. Lavar as mãos novamente após remover as luvas. 3. Armazenamento de Resultados: Armazenar os registros de resultados em sistema eletrônico ou físico conforme protocolo da instituição. 12. Controle de Qualidade Treinamento: Realizar treinamentos periódicos para os profissionais que realizam a técnica, garantindo que estejam atualizados sobre as melhores práticas. Avaliação de Amostras: Implementar um sistema de controle de qualidade com amostras-testes, verificando a precisão e a reprodutibilidade dos resultados. Manutenção de Equipamentos: Realizar manutenção regular nos microscópios e equipamentos utilizados, garantindo sua calibração e funcionamento adequado. 13. Segurança e Biossegurança Uso de EPI: Todos os profissionais devem usar Equipamentos de Proteção Individual (luvas, aventais, óculos de proteção) ao manusear amostras biológicas. Manuseio Seguro: Seguir todas as diretrizes de biossegurança durante a coleta e análise de amostras. Descarte de Resíduos: Todos os resíduos biológicos devem ser descartados em conformidade com as normas locais de manejo de resíduos. 14. Referências 1. ORGANIZAÇÃO MUNDIAL DA SAÚDE. Helminth control in school age children: a global survey of the current status of control measures. Genebra: OMS, 2011. Disponível em: https://www.who.int/publications/i/item/9789241501333. Acesso em: 21 out. 2024. 2. BRASIL. Ministério da Saúde. Manual de diagnóstico das helmintoses intestinais. Brasília, DF: MS, 2004. Disponível em: http://bvsms.saude.gov.br/bvs/publicacoes/manual_helmintoses.pdf. Acesso em: 21 out. 2024. 3. LUNA, E. J. et al. Comparison of diagnostic techniques for intestinal parasites: Kato-Katz and McMaster methods. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical, v. 46, n. 6, p. 659-664, 2013. DOI: 10.1590/0037-8682-1464-2013. 4. HALL, A.; HEYDON, M.; THOMPSON, J. The use of the Kato-Katz technique for diagnosing intestinal helminths. International Journal of Parasitology, v. 32, n. 12, p. 1533-1540, 2002. DOI: 10.1016/S0020-7519(02)00131-5 https://www.who.int/publications/i/item/9789241501333 Execução Pós-Procedimento