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ESTERILIZAÇÃO 1. EMBASAMENTO TEÓRICO 1.1 Introdução Os processos de esterilização possuem o objetivo de livrar dado objeto, superfície, substância, e afins, da presença de todos os microrganismos, tanto em sua forma vegetativa, como sob a forma de resistência, os endósporos. Várias metodologias podem ser empregadas, sendo limitante para sua utilização o sujeito da esterilização, bem como outros fatores, como tempo necessário para a conclusão do processo, volume de material, e instalações do local. A morte celular pode ser induzida por diversos tipos de agentes esterilizantes, que podem agir principalmente através da inutilização das proteínas (desnaturação e oxidação), alteração na fisiologia de membranas e danos ao material genético, sendo encontrados em estufas, autoclaves, antibióticos e diversos tipos de radiação ionizante e não ionizante. 1.2 Calor Seco O calor é um dos agentes mais difundidos no quesito esterilização, devido ao seu baixo custo de emprego e manutenção, capacidade de tratar quantidades consideráveis de material a cada sessão, bem como sua alta taxa de efetividade. Sendo dividido em duas categorias, o calor úmido, quando é empregado água ou vapor de água em altas temperaturas com alto poder desnaturante, e o calor seco, desprovido de água ou qualquer outro líquido. O calor seco é o princípio ativo encontrado nas estufas de esterilização. Seu funcionamento é baseado na convecção de massas de ar, onde o ar quente sobe e o frio desce, constituindo um ciclo que transporta o calor gerado até o material. Essa convecção é um processo lento, passivo e gradual, logo os ciclos de esterilização costumam ser bem demorados, partindo de 6 horas a 121°C até 30 minutos a 180°C, resultando na morte celular por oxidação proteica. Por conta de o aquecimento do material através do calor seco ocorrer de forma lenta e gradual, alguns cuidados são imprescindíveis para um ciclo de esterilização em estufa realmente eficaz: • Objetos úmidos estão proibidos: a diferença entre o calor específico entre o ar que circunda o objeto e a água que o cobre faz com que ele não chegue de fato na temperatura ideal; • Devem estar devidamente embalados: nada de embalagens plásticas, como caixas de ponteiras; • Jamais abrir a estufa durante um ciclo de esterilização: além de o ciclo necessitar ser reiniciado, caso o material esteja embrulhado utilizando jornal ou outros papeis, há o risco de sua combustão devido às altas temperaturas; • Nunca sobrecarregue o equipamento: o ar quente precisa se mover entre os utensílios durante o processo, portanto organiza-los demasiadamente próximos compromete o processo. (FIG 1.1) Figura 1.1 – Estufa de secagem utilizada no LADMI, note que a organização das placas no seu interior preza pela circulação de ar. Fonte: o autor 1.3 Calor Úmido Já o calor úmido utiliza sempre água ou vapor d’água sob altas temperaturas, estando presentes nos diversos tipos de autoclave, bem como no processo de pasteurização amplamente empregado na indústria alimentícia. Uma autoclave é similar a uma panela de pressão doméstica. Nela, água é aquecida até seu ponto de ebulição, passando do estado liquido para o vapor, que se acumula no interior do equipamento, ocasionando um aumento de pressão. O acúmulo do vapor no interior do equipamento faz com que o nanômetro chegue na marca de 1 atm de pressão, ponto onde a água ferve a uma temperatura de 121°C. No LADMI, em salões de beleza, estúdios de tatuagem, hospitais, consultórios dentários, a autoclave é comumente utilizada com dois propósitos distintos, realizar a esterilização ou descontaminação do material. O material a ser esterilizado deve estar devidamente embalado, seja em jornal, seja em outro material próprio autoclavável, como o papel grau cirúrgico ou papel kraft, e passar por um ciclo de 121°C por 15 min, resultando em um material estéril, porém úmido, devendo secar preferencialmente em estufa. Já o ciclo para a descontaminação de material posterior ao uso consiste em 121°C por 30 min, devendo seguir para as etapas de limpeza, embalo, esterilização e secagem para enfim retornar ao estado de utilizável, portanto, estéril. 1.4 Esterilização por filtração A esterilização por filtração é amplamente utilizada para a esterilização de soluções que contenham substâncias termolábeis. Microrganismos podem ser removidos de líquidos, passando-os através de filtros com poros inferiores aos seus diâmetros muito pequenos, impedindo-lhes a passagem. É possível através do sistema de filtração com Kitasato e bomba de sucção. Além disso, podem ser utilizados filtros contendo membranas (de nitrocelulose ou acetato de celulose) com poros de 0,22um de diâmetro (Millipore, Sartorius). 1.5 Radiações Assim como a ação do calor leva a morte celular devido a inutilização de proteínas, as radiações de modo geral visam atacar justamente a fonte de informação para a fabricação dessas proteínas, o próprio material genético celular, o DNA/RNA. As radiações comumente utilizadas pela medicina nuclear, empresas farmacêuticas e alimentícias são compostas pelos raios x e γ, com alto poder de penetração biológico, pois são capazes de realizar um dano celular irreparável mesmo em um curto período de exposição. Portando, necessitam de locais apropriados para sua contenção, utilizando paredes revestidas de aço, bem como os manipuladores protegidos por chumbo. São as chamadas radiações ionizantes, sendo utilizadas como método de esterilização apenas em grandes empresas por conta dos seus custos e riscos. Já o outro grupo, o das radiações não ionizantes, é caracterizado por não possuir grande poder de penetração, resultando em técnicas mais simplificadas de emprego e segurança, porém ainda mantendo um alto poder lesivo aos ácidos nucleicos. Por conta de sua fácil empregabilidade, no dia a dia está presente em praticamente todos os laboratórios que necessitam esterilizar uma certa superfície, como por exemplo, a mesa que compõe a câmara de fluxo laminar, utilizando-se de luz ultravioleta (FIG. 1.2). De forma geral, as radiações lesam as células devido a produção de dímeros de pirimidinas no DNA, levando a proteínas defeituosas devido ao embaralhamento das informações armazenadas lá, ocasionando a morte das células atingidas. Figura 1.2 – Lâmpada Ultravioleta (radiação não ionizante) utilizada como agente esterilizante em uma câmara de fluxo laminar no LADMI. Fonte: o autor Prática nº2 – Esterilização de material em autoclave Objetivo: Compreender o método de operação da estufa, autoclave, e outros equipamentos de uso geral. Um passo a passo para o uso de autoclaves: • Certifique-se de que há água destilada suficiente no seu interior, caso não, complete até cobrir totalmente as resistências e de forma a não encostar no fundo da cesta da autoclave; • Distribua o material na (s) cesta (s) respeitando o ciclo atual, não misturando material para descontaminação com material a ser esterilizado; • Feche a tampa, trave-a corretamente, ligue o equipamento; • Com a válvula de pressão aberta, espere até que todo o vapor que está sendo formado tome o lugar do ar seco ambiente que preenche o equipamento (pode haver um leve aumento de pressão mesmo com a válvula aberta); • Feche a válvula de pressão e aguarde o manômetro chegar a marca de 1,0 atm/121°C, ponha o termostato no médio e inicie a contagem do ciclo; • Após o término, desligue o equipamento e aguarde o manômetro zerar antes de abrir a autoclave para retirar o material. Figura 1.8 – Autoclave utilizada no LADMI. A. Atente para as travar utilizadas para a vedação da câmara. Por questões de segurança, devem ser fechadas ortogonalmente entre si, de forma a distribuirigualmente a força entre os parafusos; B. Refere-se ao compartimento interno onde os cestos de esterilização são depositados. Ao fundo é possível vem seu suporte que possui a forma de um “x”, que além de manter os cestos fora do contato direto com a água quente ao fundo, demarca o nível de água que deve haver na câmara antes de ser utilizada. Por último, também é possível visualizar as resistências, peça responsável pela conversão da energia elétrica em térmica, aquecendo o aparelho; C. e D. Destacam os cestos vazados que comportam os materiais a serem autoclavados, onde os furos permitem a movimentação livre do vapor entre eles; E. água destilada amarelada devido ao acúmulo de resíduos de meio após um ciclo de descontaminação, nesse estado é necessário realizar a troca da água antes de reutilizar o equipamento; F. manômetro demarcando 1atm, pressão onde a água atinge os 121°C necessários para o processo de esterilização. Fonte: o autor A B C D E F EXERCÍCIOS 1. Você já parou para pensar em quais produtos do seu dia a dia passam por processos de esterilização durante a fabricação? Cite alguns, bem como o método empregado. Qual a importância deste procedimento para nós, consumidores? 2. Faça um esquema que sobre a aula de hoje contendo: o mecanismo de ação de cada método, onde é empregado, o protocolo e seus cuidados. 3. Bacillus subtilis e Geobacillus stearothermophilus costumam ser utilizados como teste de controle de qualidade de equipamentos esterilizantes que utilizam calor. Cite para qual equipamento cada cepa é utilizada? Que características esses microrganismos possuem para que possam ser empregados com essa finalidade? E qual a importância desse tipo de acompanhamento? 4. Você, como um jovem microbiologista, estava bastante apressado e fechou a válvula da autoclave imediatamente após veda-la. Como sua ação afetará o processo de esterilização do material? 5. Algumas substâncias são conhecidas pelo termo termolábeis. O que isso significa? Elas necessitam de algum cuidado extra quanto a esterilização? Se possível, exemplifique. REFERÊNCIAS SOARES, Juarez Braga Soares; CASIMIRO, Antonio Renato S. de; ALBUQUERQUE, Laurênia Maria B. de. Microbiologia Básica, 2ª ed. Fortaleza: Edições UFC, 1987. 175p. TORTORA, Gerard, J.; FUNKE, Berdell, R.; CASE, Christine, L. Cap 7: Controle do Crescimento Microbiano. In. ______. Microbiologia, 10ª ed. Porto Alegre: Artmed, 2012. p. 185-209. VERMELHO, Alane Beatriz. Cap. 3: Métodos físicos e químicos de controle do crescimento microbiano. In. VERMELHO, A. B. et al. Práticas de microbiologia, 1ª ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2006. p. 29-78.