Coleta e Preservação de Amostras Parasitológicas

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COLETA E PRESERVAÇÃO DA
AMOSTRA PARASITOLÓGICA 
Professor: Robert Rosas Filho
Objetivos da aula 
•Compreender os princípios corretos de coleta de amostras 
para diagnóstico parasitológico.
•Identificar os tipos de amostras mais comuns na parasitologia 
clínica.
•Reconhecer cuidados para garantir a integridade da amostra 
até o processamento.
•Conhecer métodos de armazenamento e transporte 
adequados para diferentes parasitos.
Introdução 
•A fase pré-analítica (coleta, armazenamento e transporte) é 
determinante para a precisão diagnóstica.
•Erros nesta etapa podem causar falsos negativos, 
inviabilizar o exame ou comprometer a viabilidade dos 
parasitos.
•Na parasitologia clínica, muitas estruturas (ovos, larvas, 
trofozoítos, cistos) são frágeis e sofrem alterações rápidas.
Tipos de amostras e indicações 
Tipo de Amostra Principais Indicações Observações Importantes
Fezes
Diagnóstico de helmintos e 
protozoários intestinais
Coletar preferencialmente em 
frasco limpo, sem urina. Evitar 
uso de laxantes (alteram 
morfologia).
Sangue
Diagnóstico de hemoparasitos 
(Plasmodium, Trypanosoma, 
Leishmania)
Colher em EDTA para 
esfregaço e gota espessa; 
processar rapidamente.
Urina
Pesquisar Schistosoma 
haematobium, Trichomonas 
vaginalis
Coletar amostra de jato final 
ou centrifugar.
Secreções/Vaginal, Uretral Trichomonas vaginalis
Processar imediatamente para 
observar trofozoítos móveis.
Escarro/Líquido 
broncoalveolar
Paragonimus, Strongyloides
disseminado
Armazenar refrigerado se não 
for examinado imediatamente.
Aspirados de linfonodos, 
medula óssea
Leishmania, Trypanosoma
Coleta invasiva — manter 
esterilidade e processar 
rápido.
Procedimento de coleta 
•Identificação correta: nome, data, hora, tipo de exame 
solicitado.
•Uso de frascos limpos e secos (estéreis se indicado).
•Quantidade suficiente:
•Fezes: 5–10 g (infantil: 2–5 g)
•Urina: 10–20 mL
•Sangue: volume conforme protocolo (geralmente 2–5 mL).
•Evitar contaminação: urina nas fezes, saliva no escarro, etc.
•Instrução ao paciente: explicar a coleta para evitar erros.
Preservação e Armazenamento
Amostra Temperatura Preservante/Meio
Tempo Máximo 
até 
Processamento
Fezes (sem 
conservante)
Refrigerar (4–8°C) — 12 horas
Fezes (com 
conservante – MIF, 
SAF, formol 10%)
Ambiente ou 
refrigerado
MIF (Merthiolate-Iodo-
Formaldeído), SAF
7–30 dias 
dependendo do 
método
Sangue
Ambiente (até 6 h) 
ou refrigerado 
(4°C)
EDTA 24 h
Urina Refrigerar (4°C) — 2–4 h
Secreções frescas
Temperatura 
ambiente
Solução salina morna 
(quando indicado)
Imediato
Aspirados e líquidos 
corporais
Refrigerar (4°C)
Meio de cultura 
específico, se necessário
Até 24 h
Transporte 
•Utilizar embalagem tripla conforme normas da ANVISA/MS 
para material biológico:
1.Recipiente primário: frasco vedado, resistente a 
vazamentos.
2.Recipiente secundário: embalagem resistente, com 
material absorvente.
3.Embalagem externa: caixa rígida identificada.
•Manter a cadeia de frio quando necessário.
•Documentação de transporte anexada.
Cuidados Especiais 
 Trofozoítos de protozoários intestinais degeneram 
rapidamente → exame deve ser imediato ou 
amostra fixada.
 Larvas de Strongyloides podem eclodir após poucas 
horas → refrigeração evita sobreposição de 
formas.
 Hemoparasitas sofrem alterações morfológicas com 
o tempo → esfregaço deve ser feito o quanto 
antes.
Referências Indicadas 
•NEVES, D. P. Parasitologia Humana. 14ª ed. Rio de Janeiro: Atheneu, 2022.
•WHO. Bench Aids for the Diagnosis of Intestinal Parasites. 2nd ed. Geneva: 
WHO, 2019.
•Ministério da Saúde – Manual de Diagnóstico Laboratorial de Parasitoses 
Humanas. Brasília: MS, 2018.
	Slide 1: Coleta e Preservação dA Amostra Parasitológica 
	Slide 2: Objetivos da aula 
	Slide 3: Introdução 
	Slide 4: Tipos de amostras e indicações 
	Slide 5: Procedimento de coleta 
	Slide 6: Preservação e Armazenamento 
	Slide 7: Transporte 
	Slide 8: Cuidados Especiais 
	Slide 9: Referências Indicadas