resumo Virus e bacs Respiratorio

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Resumo da Aula: Microbiologia do Trato 
Respiratório (Slide por Slide) 
Slide 1 e 2: Apresentação e Visão Geral do Trato 
Respiratório 
● Conceito básico de anatomia: 
○ Vias Aéreas Superiores (VAS): Nariz, cavidade nasal, nasofaringe, orofaringe, 
laringe, seios paranasais e ouvido médio. 
○ Vias Aéreas Inferiores (VAI): Traqueia, brônquios, bronquíolos e pulmões (alvéolos). 
● Mensagem clínica essencial: A grande maioria das infecções de vias aéreas superiores 
na comunidade é viral e autolimitada (o próprio corpo cura). Porém, as infecções 
bacterianas exigem uso de antibióticos. Se o diagnóstico ou tratamento bacteriano 
atrasar, a infecção pode evoluir para complicações graves, como bacteremia (bactéria na 
corrente sanguínea) e sepse. 
Slide 3: Principais Vírus Respiratórios e Síndromes 
Clínicas 
Visão geral dos vírus respiratórios, divididos por material genético e síndromes associadas: 
● Vírus de DNA: 
○ Adenovírus: Provoca quase tudo — resfriado, faringite, laringite, bronquite, 
bronquiolite, febre faringoconjuntival e pneumonia. 
○ Herpesvírus (HSV, CMV, VZV, EBV, HHV-6): Causam faringite e mononucleose, mas 
causam pneumonia grave em pacientes imunossuprimidos. 
● Vírus de RNA: 
○ Rinovírus (Picornavírus): O principal causador do resfriado comum. 
○ Orthomyxovirus (Influenza A, B, C): Causadores da Gripe (faringite, laringite, crupe, 
pneumonia). 
○ Vírus Sincicial Respiratório - VSR (Paramyxovirus): Agente clássico de 
bronquiolite e pneumonia em bebês e crianças. 
○ Parainfluenza: Causa resfriado, crupe (laringotraqueobronquite), bronquite e 
pneumonia. 
○ Coronavírus & Hantavírus: Vão desde resfriados até a SARA (Síndrome da Angústia 
Respiratória Aguda). 
○ Vírus do Sarampo: Pode evoluir com pneumonia e bronquiectasia. 
Slide 4: Coleta de Amostras para Vírus Respiratórios 
● Swab Nasofaríngeo (Padrão-Ouro / Preferencial): 
○ Como fazer: Introduzir um swab fino e flexível até a nasofaringe, aguardar cerca de 5 
segundos para absorver a secreção, retirar com cuidado e repetir o processo na outra 
narina usando o mesmo swab/tubo. 
○ Vantagem: Oferece a maior sensibilidade diagnóstica. 
● Outras Amostras: 
○ Swab de Garganta (Orofaringe): Usar abaixador de língua, evitar contato com a 
saliva e friccionar as amígdalas. É bom para Adenovírus e Influenza. 
○ Swab Conjuntival: Friccionado na conjuntiva inferior (ótimo para Adenovírus). 
● Transporte da amostra viral: Temperatura de 4°C por no máximo 48 horas. 
Slides 5 e 6: Métodos Diagnósticos Virais (Testes 
Rápidos e RT-PCR) 
● Testes Rápidos (Imunocromatografia): Detectam antígenos virais em minutos (ex.: kits 
para COVID-19 Ag, Influenza A/B e VSR). 
● RT-PCR Automatizado em Tempo Real (Ex.: BD MAX™): 
○ Tempo: Cerca de 2 horas e 40 minutos. 
○ Painel Viral: Detecta simultaneamente SARS-CoV-2, Influenza A, Influenza B e VSR 
com alta precisão e sensibilidade. 
Slides 7 e 8: Infecções Bacterianas do Trato 
Respiratório Inferior (TRI) 
● Classificação Didática: 
○ Agudas: Bronquite, Coqueluche (Bordetella pertussis), Bronquiolite, Pneumonias. 
○ Crônicas: Tuberculose, Empiema pleural. 
Comparativo para a Prova: PAC vs. PAH/PAV 
Característica PAC (Comunitária) PAH / PAV (Hospitalar / 
Ventilação) 
Origem Adquirida fora do hospital. Adquirida no ambiente 
hospitalar ou em UTI 
(associada ao respirador). 
Gravidade Comum; pode curar em 
dias ou evoluir para 
gravidade. 
Mais grave; 2ª causa de 
infecção hospitalar e líder 
em mortalidade. 
Principais Agentes 1. Streptococcus 
pneumoniae (mais comum) 
 
1. Gram-negativos e 
multirresistentes: 
 
2. Haemophilus influenzae 
 
3. Moraxella catarrhalis 
 
4. Staphylococcus aureus 
 
5. Mycoplasma pneumoniae 
/ Legionella 
Klebsiella pneumoniae, 
Pseudomonas aeruginosa, 
Acinetobacter baumannii, 
Escherichia coli, 
Enterobacter spp., 
Stenotrophomonas 
maltophilia 
 
2. Gram-positivo: 
Staphylococcus aureus 
Slide 9: Regras de Ouro do Diagnóstico Laboratorial 
na Pneumonia 
1. Regra Pré-Analítica Vital: A cultura de amostras do trato inferior deve ser coletada 
ANTES de iniciar os antibióticos. 
2. Resultado Negativo: Serve para descontinuar/suspender o antibiótico, desde que o 
paciente não tenha trocado de medicação nas últimas 72 horas. 
3. Resultado Positivo: Permite o descalonamento do antibiótico (trocar um remédio de 
amplo espectro por um mais focado na bactéria identificada). 
Slide 10: Tipos de Amostras para Culturas 
Bacterianas 
● Amostras Não Invasivas (Fáceis/Seguras, mas correm risco de contaminação com 
saliva): 
○ Escarro Espontâneo: Coletar a 1ª amostra da manhã, vinda de tosse profunda. 
○ Escarro Induzido: Feito por nebulização com solução salina a 3%. Indicado para 
Tuberculose e Pneumocystis jirovecii em pacientes com HIV. 
○ Aspirado Traqueal (SET): Coletado por sucção em pacientes intubados. Atenção: O 
tubo pode ter apenas bactérias colonizadoras. 
● Amostras Invasivas (Alta precisão, procedimentos médicos complexos): 
○ Lavado Broncoalveolar (LBA / BAL): Lava bronquíolos e alvéolos com soro. É a 
melhor amostra para pneumonias graves. 
○ Lavado Brônquico: Menor volume de soro que o LBA. 
○ Biópsia Pulmonar: Reservada para casos extremamente graves ou inconclusivos. 
Slide 11: Fatores de Erro Pré-Analíticos (Amostras 
Inadequadas) 
Situações em que o laboratório rejeita a amostra: 
1. Escarro contendo apenas saliva: Ocorre contaminação pela microbiota da orofaringe. 
2. Amostras guardadas por mais de 2 horas em temperatura ambiente: Ocorre perda de 
viabilidade dos patógenos frágeis e proliferação de contaminantes. 
3. Uso de Swab: Inadequado para cultura bacteriana de vias inferiores (exceto swab 
orofaríngeo em pacientes com fibrose cística). 
4. Escarro acumulado durante 24 horas: Torna a amostra completamente inviável. 
5. Lavado Nasal: Não serve para culturas. 
6. Pesquisa de Anaeróbios em Escarro ou LBA: Não apropriada, pois a passagem pela 
boca contamina a amostra com anaeróbios normais. 
7. Biópsias enviadas em FORMOL: O formol mata as bactérias e invalida a microbiologia. 
Slide 12: Transporte de Amostras 
● Escarro, Aspirado Traqueal e LBA: Devem ser mantidos entre 20°C e 25°C e 
processados em até 2 horas. 
● Atraso na entrega (> 2 horas): Reduz a viabilidade de bactérias frágeis (Streptococcus 
pneumoniae e Haemophilus influenzae). Nesses casos, a amostra precisa ser refrigerada 
entre 2°C e 8°C. 
Slide 13: Avaliação de Qualidade do Escarro 
(Bacterioscopia / Gram) 
Antes de fazer a cultura, realiza-se uma lâmina no microscópio (aumento de 100x) para 
verificar a qualidade da amostra: 
● Critério 1 (Escarro e Aspirado Traqueal): 
○ ACEITÁVEL (Catarro verdadeiro): (1+ Raras) 
 | 
 [ Área 2 ] ---> (2+ Poucas) 
 | 
 [ Área 3 ] ---> (3+ Muitas/Abundante) 
 
● Interpretação e Conduta: 
○ Sem crescimento em 24h: A placa retorna para a estufa por mais 24h (total de 48h). 
Se continuar sem crescimento, o laudo é NEGATIVO. 
○ Crescimento significativo (> 2+ ou ++): Realiza-se a Identificação do patógeno + 
Antibiograma (TSA). 
○ Microrganismos da microbiota normal: Libera-se como "Não Evidenciado 
Crescimento de Patógenos" (NEP). 
Slide 17: Cultura Quantitativa para Amostras 
Invasivas (LBA / BAL) 
● Técnica: Utiliza-seuma alça calibrada para semear a amostra em estrias paralelas. 
● Ponto de Corte (Cutoff): 
○ ≥ 10⁴ UFC/mL (10.000 UFC/mL): Valor indicativo de infecção verdadeira no LBA. 
Exige Identificação + Antibiograma completo. 
○ 10³ UFC/mL: Realiza-se identificação apenas se a cultura for pura. 
Slides 18, 19, 20 e 21: Hemoculturas na Pneumonia 
● Por que colher hemocultura? Cerca de 25% dos pacientes com pneumonia 
apresentam bacteremia. O procedimento é recomendado para todos os pacientes 
hospitalizados com pneumonia. 
● Volume do Sangue (Fator Crítico para Positividade): 
○ Frascos de Adulto (Aeróbio / Anaeróbio): 8 a 10 mL por frasco. 
○ Frasco Pediátrico: 1 a 3 mL por frasco. 
○ Motivo: Adultos possuem baixas concentrações de bactérias no sangue (1 a 10 
UFC/mL), exigindo maior volume de amostragem. Crianças possuem concentrações 
elevadas (100 a 1000 UFC/mL). 
● Número de Frascos Coletados: 
○ Ideal (4 a 6 frascos em 2 a 3 punções diferentes): Detecta até 98% dos casos. 
Ajuda a diferenciar se o achado é uma contaminação de pele (positivo em apenas 1 
frasco) ou infecção real (positivo em múltiplos frascos). 
○ Inadequado (Coletar apenas 1 par): Deixa de diagnosticar até 40% das bacteremias, 
falhando em detectar patógenos como Pseudomonas, Enterococcus e Candida. 
● Patógenos que significam infecção real em > 90% dos casos: Staphylococcus aureus, 
Escherichia coli e Enterobacterales, Pseudomonas aeruginosa e Candida albicans. 
Slide 22: Fluxograma Laboratorial da Hemocultura 
[Frasco de Hemocultura] ---> Incubação por até 5 dias 
 | 
 +----------------+----------------+ 
 | | 
 Resultado (-) Resultado (+) 
 | | 
 Libera Negativo 1. Gram Direto (20-30 min) 
 --> Laudo Parcial 
 2. Repique em Ágar (18-24h) 
 3. Identificação (Manual/Automação/MALDI-TOF) 
 4. Antibiograma (TSA) 
 --> Laudo Final 
 
Slide 23: Estudo de Caso — Streptococcus 
pneumoniae 
● Bacterioscopia (Gram): Revela diplococos Gram-positivos lanceolados (formato de 
ponta de lança) e encapsulados. 
● Limitação Técnica: O S. pneumoniae apresenta limitações nos sistemas automatizados. 
Por isso, o teste de sensibilidade (antibiograma) deve ser feito por métodos manuais 
(fita de E-test para Penicilina e Ceftriaxona; disco-difusão para Oxacilina, Vancomicina, 
Clindamicina, Eritromicina, Sulfametoxazol-Trimetoprima e Levofloxacino). 
Resumo Rápido para Revisão Pré-Prova 
1. Amostra viral preferencial: Swab nasofaríngeo mantido a 4°C. 
2. Pneumonia Comunitária (PAC) vs. Hospitalar (PAH): PAC é liderada por S. 
pneumoniae; PAH por Bastonetes Gram-Negativos (Pseudomonas, Klebsiella, 
Acinetobacter) e S. aureus. 
3. Coleta de escarro: Deve ser feita antes do antibiótico. A amostra é aceitável se tiver