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FUNDAMENTOS EM MICROSCOPIA DE FLUORESCÊNCIA Marcelo F. Santiago Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho Universidade Federal do Rio de Janeiro (marcelo.santiago@biof.ufrj.br) Poder de resolução Super resolução Fluorescência Jablonski Diagram Desvio de Stokes Tipos de lâmpada Metal Halide Tugsten-Halogen HBO Filtro de Emissão (Barreira) (BP 510-525) Filtro de Excitação (BP 450-490) Divisor Cromático (Espelho Dicróico) (FT 510) 200 - 900 nm 450 - 490 nm 510 - 525 nm l > 510 nm l > 450 nm PMT Microscopia de Fluorescência Espécime Objetiva Filtros para Fluorescência - Exemplos FITC, PE, Cy2, Alexa 488 TRITC, TxRed, Alexa 555 FITC / Rhod bovine endothelial cellsFITC Rhod merged The crosstalk problem The photobleaching problem Fluoróforos Objetivas Especificações e Propriedades Escolha da Objetiva Para encontrar a melhor objetiva para a sua aplicação, vários parâmetros devem ser levados em consideração: • Espectro de transmissão • Distância de trabalho (WD) • “Flatness“ / Profundidade de campo • Correção / Resolução Spectra 0 20 40 60 80 100 23 0 32 5 36 0 40 0 75 0 10 55 12 00 15 50 19 00 Wavelength (nm) Tr an sm is si on (% ) Achroplan 40x 0,8W Achroplan 40x 0,8W IR PNF 40x 1,3 PlanApo 40x 1,0 C-Apo 40x 1,2W Características Espectrais (Lentes de 40X) Características Espectrais (Lentes de 63X) Spectra 0 20 40 60 80 100 23 0 33 5 38 0 60 0 10 50 13 00 17 50 Wavelength (nm) Tr an sm is si on (% ) Achroplan 63x 095 W Achroplan 63x 095 W IR PNF 63x/1,25 PlanApo 63x 1,4 C-Apo 63x 1,2 Escolha da Objetiva Para encontrar a melhor objetiva para a sua aplicação, vários parâmetros devem ser levados em consideração: • Espectro de transmissão • Distância de trabalho (WD) • “Flatness“ / Profundidade de campo • Correção / Resolução Distância de Trabalho Escolha da Objetiva Para encontrar a melhor objetiva para a sua aplicação, vários parâmetros devem ser levados em consideração: • Espectro de transmissão • Distância de trabalho (WD) • “Flatness“ / Profundidade de campo • Correção / Resolução Correções Ópticas Disco de Airy - PSF Abertura Numérica - Resolução 40 X / 1,3 Oil 63 X / 1,4 Oil 100 X / 1,45 Oil Derivação da fórmula de Ernst Abbe d = 0.61λ / NA Resolução, Magnificação e Brilho Image Brightness B = λ NA4/M2 Resolução d = 0.61λ / NA Relação SINAL/RUIDO Resolução x NA x Lambda Meio de imersão O desafio das 3 dimensões Espécimes finos conventional fluorescence 3D reconstruction Amber fossil (Chironomide) thickness app. 300 µm Espécimes espessos Espécimes espessos Fluorescência convencional x luz estruturada Detection ZEISS Plan-NEOFLUAR 40x /1,3 Oil ZEISS Plan-NEOFLUAR 40x /1,3 Oil Excitation Rat Brain, Double labelling: Green: Neurons, Blue: Nuclei Problem: Detecting in-focus information together with out-of-focus signals in wide-field microscopy ZEISS Plan-NEOFLUAR 40x /1,3 Oil ZEISS Plan-NEOFLUAR 40x /1,3 Oil Excitation Goal: To detect only the fluorescence information from the plane of focus Detection Rat Brain, Double labelling: Green: Neurons, Blue: Nuclei Fluorescência convencional x luz estruturada Fluorescência convencional x iluminação estruturada The ApoTome-Slider - Two Positions inside the Beampath ApoTome mode (with grid in FL-beampath) Conventional epi-fluorescence mode (no grid in FL-beampath) Easy switching between true conventional mode and ApoTome mode Structured Illumination Fluorescence Microscopy - ApoTome Convencional Apotome Structured Illumination - The Principle Grid pattern is projected into the focal plane of the objective Visible in the eyepiece and the camera Grid movement by swinging a planparalel plate - The grid itself is fixed on the carrier Position 1 Position 2 Position 3 Structured Illumination - The Principle 1 phase 2 phase 3 phaseConventional Sectioned • If the local change in contrast is high, the structure is inside the focal plane • If the local change in contrast is zero, the structure is not inside the focal plane Position 1 Position 2 Position 3 Optical section If the local change in contrast is high, the structure is inside the focal plane If the local change in contrast is zero, the structure is not inside the focal plane Structured Illumination – The Principle S tr u c tu re d I llu m in a ti o n Applications of the ApoTome The ApoTome is „just“ an upgrade of a research microscope Large range of imaging applications Nearly every conventional fluorescence application can use the benefits of the ApoTome It can be used in 2D and 3D applications Sample thickness up to 50 µm Conventional mode ApoTome mode Drosophila Embryo 2-Channel-Fluorescence Acquired with AxioVision MultiChannel-Modul, AxioCam MRm and ApoTome Courtesy of George Scaria, University of Illinois at Chicago Medical School, USA Application Example - 2-Dimensional Multi-Channel Imaging Zebra Fish Embryo GFP-staining, 3D-Image Stack Acquired with AxioVision MultiChannel-Modul, AxioCam MRm and ApoTome Conventional mode ApoTome mode Application Example - 3-Dimensional Imaging Drosophila Embryo 2-Channel-Fluorescence (green: HRP, red: Glia-marker), Transparency Projection with Inside 4D Acquired with AxioVision MultiChannel-Modul, AxioCam MRm and ApoTome, Objective Plan-ApoChromat 20/0,75 Courtesy of Thomas Hummel and Christian Klämbt, Institute of Neurobiology, University of Münster, Germany Conventional mode ApoTome mode Application Example - 3-Dimensional Multi-Channel Imaging Structured Illumination Advantages S tr u c tu re d I llu m in a ti o n ▪ 2D optical sectioning (even on manual stands) ▪ Easy and seamless integration (& upgrades) into widefield systems ▪ Fast online calculation of optical sections (keeping the widefield information) ▪ Low phototoxicity & bleaching Mouse kidney Conventional versus ApoTome mode Mouse intestine section Conventional versus ApoTome mode Imagem Confocal Marvin Minsky 1955 Minsky, M. Memoir on Inventing Confocal Scanning Microscope. Scanning, 10: 128-138, 1988. LSM 510 META (Zeiss) IBCCF-UFRJ O Princípio da Microscopia Confocal • Fonte de iluminação puntiforme • Planos focais conjugados • Óptica com “Pinhole” Vantagens • Seccionamento óptico não-invasivo • Imagens Multidimensionais • Eliminação dos planos fora de foco • “Bleaching” apenas na região analisada (cone de iluminação) dichroic mirror Lightsource Objective lens Sample confocal aperture Detector CLSM x Microscopia de Fluorescência Ref: Virtual Microscopy Web Site. CLSM x Microscopia de Fluorescência Ref: Virtual Microscopy Web Site. Non-ConfocalConfocal Non-Confocal Non-ConfocalConfocal Confocal Microscopia de Fluorescência X Confocal • Individual pinholes in front of every detector • High sensitivity single detectors • META detector – Reflective grating for even dispersion – 32 detector elements – Simultaneous illumination – Capture full emission spectra • Two indepedent scan mirrors LSM 510 META Pinhole X Resolução de ImagemO “Pinhole” enquanto um “filtro” espacial O diâmetro do “Pinhole” determina: – Intensidade da fluorescência – Relação Sinal / Ruído – Resolução no eixo “z” (espessura da secção óptica) • resolução máxima em “z” (profundidade) = 380-400 nm • resolução máxima no plano xy (lateral) = 180-200 nm one pinhole / one size three pinholes / different sizes The multiple pinhole concept - optimal resolution Dyes Pinhole Optical slice DAPI, Hoechst 1 Airy unit 0.7 µm eGFP, FITC, Alexa488 1 Airy unit 0.9 µm DsRed (RFP), Cy3, Rhod 1 Airy unit 1.0 µm Cy5 1 Airy unit 1.1 µm C-Apochromat 63x/ 1.2 W Pinhole settings for optimal resolution DAPI GFP Cy-3Cy-5 I X pinhole size=1 Airy unit d = 0.61λ / NA The multiple pinhole concept - optimal 3D imaging Lachrymal gland (actin filaments of myoepithelial cells, acinar cells), Satoh, Iwate, Japan DAPI GFP Cy-3Cy-5 Dyes Pinhole Optical slice DAPI, Hoechst 137 µm 1 µm eGFP, FITC, Alexa488 135 µm 1 µm DsRed (RFP), Cy3, Rhod 132 µm 1 µm Cy5 128 µm 1 µm The multiple pinhole concept: Automatically adjustable pinhole in front of each detectors Optimal 3D colocalization analysis (adaptable confocal volumes) Cortes ópticos em eixo “z” x y “z” Tomografia Óptica Seriada Tomografia Óptica Seriada - Galeria Tomografia Óptica Seriada – Projeção Automatic Z Correction for Z stacks without top bottom 7 0 µ m xz xz xy (at level of blue line) xy (at level of blue line) For Z-Stack accquisition • automatic PMT (gain, offset) setting adaptation to the z- position • automatic excitation (AOTF) setting adaptation to the z- position Result with Auto Z Corr.: • homogeneous brightness troughout the z-stack • high quality z-stacks Detecção de Múltiplas Sondas Fluorescentes (Problemas) Detecção Individualizada “Fading” Inadequada para espécimes vivos Inadequada para aquisições de imagens cinéticas (“time- lapse recordering”) Detecção Simultânea “Cross-talking” FITC / Rhod bovine endothelial cellsFITC Rhod merged The crosstalk problem Detecção Simultânea de Múltiplas Sondas Fluorescentes: Soluções “Multi-tracking”: a partir de motorização completa dos elementos presentes no trajeto óptico. “Meta-tracking” (META / Rainbow/ TCS-SP): Impressão digital da fluorescência (“fluorescence emission fingerprinting”) Fast line-wise switching of laser lines and intensities Fast switching between tracks in line or frame mode Scanning quasi-simultaneously (in dual directional scan) Better signal with longpass filters (compared to bandpass)FITC Rhod merged Multitracking Sequential FITC / Rhod “Multitracking” META (Zeiss) Der META-Detektor Emission Fingerprinting Emission Fingerprinting Separation even of fluorochomes with widely overlapping emission spectra Separation of fluorochromes that are excited by the same laser line (in single-photon and multiphoton microscopy) Elimination of background- and autofluorescence Quantitative imaging of fluorescent spectra shifts (FRET, ion indicators, Kaede) META detector Reflective grating for even dispersion 32 detector elements Simultaneous illumination Capture full emission spectra Emission Fingerprinting Emission Fingerprinting “Emission Fingerprinting” Ref: Carl Zeiss Web Site. Multiplexing: 3 green dyes unmixed BODIPY® FL, Alexa Fluor® 514, SYTOX® Green Vis Range 680nm-380nm = 300nm / 10.5 = 28 colors! Spectral or Linear Unmixing UnmixedMixed Emission Fingerprinting (Autofluorescence detection) O Princípio da Microscopia Multifotônica
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