Prévia do material em texto

29/03/2019
1
Exame Parasitológico de 
Fezes
Fundamentos e Conceitos
Parasitologia Clínica
UNINASSAU
CARACTERÍSTICAS GERAIS
• Composição:
– 75% água.
– Combinação de fibras, resíduos de alimentos não digeridos, bactérias vivas e
mortas da nossa microbiota intestinal e produtos da descamação do nosso
intestino que se renova diariamente.
• Quantidade:
– dependerá dos hábitos alimentares e do quanto se ingere de alimentos.
– Devem ser sólidas e macias.
– A quantidade varia de pessoa a pessoa.
29/03/2019
2
CARACTERÍSTICAS GERAIS
• Frequência:
– Não há uma regra exata para a quantidade de evacuações.
– A frequência varia de três vezes ao dia a três vezes por semana.
– Alimentação, viagens, remédios, alterações hormonais, exercícios,
cirurgias, estresse e outros podem alterar a frequência do
funcionamento intestinal.
• Eliminação:
– Mais importante do que a frequência, é a facilidade com que as
fezes são eliminadas.
– Este processo deveria ser suave como urinar ou eliminar gases.
COR
• Importante avaliar a cor das fezes 
alterações metabólicas, sangramento, ingesta
alimentar;
• Descrever a cor visualizada;
• Importante interpretar e correlacionar!
29/03/2019
3
ANÁLISE DA COLORAÇÃO
Recém-Nascidos e Bebês
Avaliação do
metabolismo da
bilirrubina:
•Icterícia
•Colestase
•Obstrução biliar
29/03/2019
4
CONSISTÊNCIA
• Duras e secas:
– prisão de ventre, causada pelo baixo consumo de água ou por falta de fibras.
– Alimentos ricos em carboidratos simples ou com elevado potencial alergênico (leite e
glúten), podem desestruturar a microbiota intestinal de algumas pessoas e causar este
sintoma.
• Moles e aquosas:
– além de indicar diarréia, esta consistência sinaliza problemas no estômago, intestinos e
fígado, entre outros.
– má alimentação (consumo excessivo de doces e alimentos gordurosos ou estragados)
– estresse emocional
• Espumosas e gordurosas:
– quadros de insuficiência pancreática crônica podem ser percebidos pela presença de
fezes desse tipo e que flutuam no vaso, associadas ou não à presença de gordura livre
que também flutua na água.
– Este quadro pode ser visto também em pessoas que usam
medicamentos anti-obesidade.
ESCALA DE BRISTOL 
29/03/2019
5
CONSTIPAÇÃO OU DIARRÉIA
• Normalmente nosso organismo
leva de 18 a 72 horas para
transformar o alimento em fezes.
• Tempo encurtado: o intestino
grosso não tem tempo suficiente
para absorver a água = diarréia.
• Tempo prolongado: uma
quantidade maior de água é
absorvida resultando em fezes
mais ressecadas = constipação.
EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES
– Exame macroscópico - verificar a
consistência, odor, presença de elementos
anormais (muco ou sangue) e de vermes
adultos ou parte deles.
– Exame microscópico - pesquisar e
visualizar as formas parasitárias
29/03/2019
6
EXAME MACROSCÓPICO
• Procedimentos
– Observar a consistência da amostra.
– Fezes moles ou líquidas sugerem a possível
presença de trofozoítos de protozoários
intestinais.
– Cistos de protozoários são encontrados com mais
frequência em fezes formadas. Ovos e larvas de
helmintos podem ser encontrados tanto em fezes
líquidas quanto em fezes formadas.
EXAME MACROSCÓPICO
• Examinar as fezes quanto à presença de
sangue e/ou muco.
– sangue fresco (vermelho vivo) indica hemorragia
aguda no trato intestinal.
– muco sanguinolento sugere ulcerações e uma
porção desse material deve, de preferência, ser
examinada, ao microscópio, para a procura de
trofozoitos.
29/03/2019
7
EXAME MACROSCÓPICO
• Examinar a superfície da amostra para
observar a presença de proglotes de tênias,
ancilostomídeos ou oxiúros adultos, por
exemplo.
• Examinar a amostra fecal com auxílio de um
palito (sorvete) para verificar a presença de
outros helmintos adultos.
EXAME MACROSCÓPICO
• Os vermes adultos, quando encontrados,
devem ser imediatamente examinados e
identificados.
• As tênias são identificadas especificamente
pelo exame das proglotes grávidas.
• As proglotes devem ser fixadas em formol a
10% e depois clarificadas por imersão em
glicerina ou solução de lactofenol (1:1).
29/03/2019
8
TÉCNICA DE COLETA
• Anotar a hora da coleta da amostra, além
de: cor, odor, consistência das fezes,
características incomuns e se houve
dificuldade de eliminação fecal.
• Não colocar a amostra em geladeira que
contenha alimentos ou medicamentos,
prevenindo contaminação destes.
NOVAS FERRAMENTAS PARA 
COLETA DE MATERIAL BIOLÓGICO
• Alternativa:
– Saco plástico
– Filme plástico
– Saco coletor 
(para bebês)
29/03/2019
9
TÉCNICA DE COLETA
• Receber as fezes em recipiente adequado.
• As amostras devem ser correta e completamente
identificadas com:
– O nome do paciente; idade, número de identificação do
laboratório; hora da colheita e hora da chegada da amostra
ao laboratório.
– As instruções, sobre a coleta de fezes devem ser claras e
passadas ao paciente.
– É importante verificar se o paciente as entendeu, pois é na
coleta adequada que se inicia a qualidade do exame
parasitológico.
RECIPIENTE PARA COLETA 
QUANTIDADE DE AMOSTRA
29/03/2019
10
EXAMES SERIADOS
• Para um trabalho rotineiro em Parasitologia é
recomendável que se realize três exames
parasitológicos em dias alternados.
• Todos os parasitas observados devem ser relatados
pelo nome científico, incluindo gênero e espécie,
quando possível, e o estágio que estão.
• DEVEM constar os métodos executados, a cor e a
consistência das fezes.
CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO
• Rejeitar fezes contendo meio de contraste
para Raios X (sais de bário).
• Somente colher as fezes 5 a 10 dias após a
realização destes exames.
• Não administrar purgativos tais como: óleo
mineral, óleo de castor ou supositórios,
porque é impossível pesquisar protozoários.
29/03/2019
11
PROCESSAMENTO
• Fezes líquidas dentro de 30 minutos; semi-sólidas
dentro de 1 hora e formadas dentro de 24 horas.
• Se o exame for realizado depois de 24 horas a
amostra deve ser mantida em conservadores tais
como:
– Formol a 10% (MIF);
– Álcool polivinílico(PVA);
– SAF (fixador usado para conservar cistos e trofozoítos)
CONSERVANTES
• A proporção utilizada é de três partes de qualquer
um dos conservadores para uma parte de fezes.
• HOMOGENEIZAR BEM!
• O formol e o MIF preservam ovos, cistos e trofozoitos
para exames a fresco;
• PVA e SAF preservam trofozoitos para coloração
permanente.
29/03/2019
12
MIF
• Água destilada: 250 mL
• Sol. Mercuriocromo a 1:500: 250 ml
• Formol: 25 mL
• Glicerina: 5 mL
MIF vem da sigla Mertiolato-Iodo-Formol
FORMOL A 10%
• Formol comercial: 10 mL
• Solução salina a 0,85%: 90 mL
• Substitui o MIF!
29/03/2019
13
SAF
• Acetato de sódio: 1,5 g
• Ácido acético: 2,9 mL
• Formol 40%: 4,0 mL
• Água destilada: 92,5 mL
• SAF:Acetato de Sódio, Ácido Acético e Formaldeído
METODOLOGIAS COMERCIAIS
29/03/2019
14
PARATEST®
PARATEST®