Colheita e Preservação de Amostra Fecal

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COLHEITA E PRESERVAÇÃO DA AMOSTRA FECAL 
COLHEITA E PRESERVAÇÃO DA AMOSTRA FECAL 
Colheita: 
•A colheita ou coleta é constantemente chamada de 
“amostras de fezes” 
•As instruções detalhadas e o frasco deve ser sempre 
fornecidos ao doente 
•A coleta deve ser primeiro em um recipiente descartável 
limpo e transferir uma porção para o frasco fornecido 
pelo laboratório 
•A amostra não deve ser contaminada com a água do 
vaso sanitário, com desinfetante ou produto químico 
Materiais utilizados para pesquisa parasitológica: 
Urina, escarro, secreções urogenitais, aspirados, 
tecidos,conteúdo duodenal, biópsia. 
Exame Parasitológico de fezes* 
Estágios pesquisados: ovos, larvas de helmintos; 
trofozoítos, cistos, oocistos e esporos de protozoários 
Colheita bem feita→ boa preservação das características 
morfológicas. 
Colheita mal feita → pequeno valor para o diagnóstico 
 
COLHEITA E PRESERVAÇÃO DA AMOSTRA 
FECAL 
Elementos constituintes das fezes 
Presença de células vegetais, grãos de pólen, leucócitos, 
células do tecido animal, artefatos de espécies 
parasitas. 
Importância do exame macroscópico 
Normalmente as fezes é composta pelo bolo fecal, 
porém pode ser encontrado sangue, muco ou tecido 
morto, indicando um infecção primária, mesmo 
quando o exame parasitológico for negativo. 
Vermes adultos de A. lumbricoides, E. vermiculares e 
proglotes de Taenia podem ser observados, mesmo 
quando não são encontrados seus respectivos ovos. 
COLHEITA 
• Fezes emitidas espontaneamente 
A quantidade e qualidade da amostra está 
relacionada diretamente com a detecção de 
parasitas intestinais. 
• Fatores que devem ser considerados para uma boa 
colheita. 
• Tipo de recipiente, volume, idade da amostra, 
medicamentos, compostos , químicos. 
 
COLHEITA 
• O paciente deve receber orientação por escrito 
• A amostra deve ter o nome do paciente, número de 
identificação, nome do médico, data e hora da 
colheita acompanhada da requisição médica 
indicando o procedimento solicitado. 
• Recipiente 
Deve ser limpo, seco, de boca larga, capacidade para 
100ml e fechamento hermético. 
O frasco deve estar livre de anti-séptico, germicidas, 
gotas de óleo e urina 
COLHEITA 
• Produtos químicos que podem influenciar na pesquisa de 
protozoários 
Antidiarréicos, antibióticos,antiácidos, derivados de bismuto 
e do bário, vaselina, óleos minerais. 
Em exame radiológico com administração de 
contraste(sulfato de bário), o exame parasitológico deve 
ser feito após sete a dez dias; 
 No uso de antibióticos , a colheita deve ser feita duas a três 
semanas depois, para um diagnóstico seguro 
O número de amostras necessárias para identificação do 
parasito depende do método a ser utilizado e a espécie 
suspeita 
Amostras de fezes de pacientes com AIDS deve ser protegido 
com invólucro de plástico, identificado em vermelho 
AMOSTRAS MÚLTIPLAS 
• Aumentam a possibilidade de encontrar parasitos 
1- a intermitência da passagem dos parasitos 
2- a distribuição não uniforme dos parasitos 
3- dos estágios dos protozoários 
4- as limitações das técnicas empregadas 
• Intermitência de ovos e cistos de parasitos 
A. lumbricoides, Ancilostomídeos e T. trichiura emitem ovos 
contínuos nas fezes. 
Schistosoma emite ovos com bastante irregularidade. 
Proglotes de Taenia são emitidas de dois a três dias. 
E. histolytica, emitem cistos com oscilações de sete e dez 
dias. 
Giardia emite cistos com oscilações de três e dez dias para 
oito ou mais dias. 
AMOSTRAS MÚLTIPLAS 
• Fatores que influenciam na emissão das formas dos 
espécimes. 
E. Vermiculares e Taenia, liberam esporadicamente os 
ovos ou guando a proglote se rompe. 
S. stercoralis, Ancylsotomídedos, 
Cryptosporidium,Cyclospora e Giardia estão 
distribuídos irregularmente nas fezes 
Os esquistossomo colocam seus ovos nas vênulas 
E. hystolitica, os trofozoítos são encontrados mais na 
superfície do que no centro das fezes. 
Recomenda-se colher três amostras de fezes em dias 
alternados, durante dez dias. (não há consenso) 
 
 
Fezes emitidas com o uso de laxantes 
• São necessárias para confirmação de amebíase, 
giardíase e estrongilidíase, quando exames 
parasitológicos anteriores forem negativos. 
• Requer solicitação médica 
• São recomendados laxantes salinos (fosfato de 
sódio) 
• Não são indicados os óleos minerais (glóbulos 
interferem no exame) 
Estabilidade das amostras 
• O tempo de colheita das amostras influi 
diretamente na identificação dos parasitos. 
• Trofozoítos se degeneram em fezes excretadas 
• O tempo recomendado para o exame 
• 30 minutos para fezes líquidas, uma hora para 
fezes pastosas ou ser preservado, para fezes 
sólidas 24 horas ou ser preservado. 
COLHEITA E PRESERVAÇÃO DA AMOSTRA FECAL 
Colheita para diferentes fins: 
•Amostras conservadas, para pesquisa de ovos e 
parasitas, só devem ser usadas para esse fim. 
•Kit para coleta de amostras, para pesquisa de sangue 
oculto, não devem conter papel usado na coleta. 
•Amostra aleatórias para testes qualitativos (sangue, 
leucócito, fibras musculares gorduras fecais) são 
colocados em frascos plástico ou de vidro, igual aos 
usados para urina 
•Para testes quantitativos é usado latas grandes para 
amostras coletadas por três dias, para acomodação e para 
facilitar a emulsificação. 
COLHEITA E PRESERVAÇÃO DA AMOSTRA 
FECAL 
Elementos constituintes das fezes 
Presença de células vegetais, grãos de pólen, leucócitos, 
células do tecido animal, artefatos de espécies 
parasitas. 
Importância do exame macroscópico 
Normalmente as fezes é composta pelo bolo fecal, 
porém pode ser encontrado sangue, muco ou tecido 
morto, indicando um infecção primária, mesmo 
quando o exame parasitológico for negativo. 
Vermes adultos de A. lumbricoides, E. vermiculares e 
proglotes de Taenia podem ser observados, mesmo 
quando não são encontrados seus respectivos ovos. 
COLHEITA E PRESERVAÇÃO DA AMOSTRA FECAL 
 
FIM