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MEDICINA VETERINÁRIA A coleta de material para hemograma deve ser armazenada em um tubo de ensaio de plástico a vácuo. Deve-se evitar os frascos com a ponta aguda, pois as células do fundo são difíceis de homogeneizar. Também evitar tubos de vidro, pois as plaquetas aderem ao vidro e a contagem no sangue pode ter o resultado alterado. O anticoagulante utilizado é o EDTA a 10% em cães e gatos, mas para outras espécies como répteis e anfíbios a concentração deve ser menor como a 3% – 5%, a amostra a 10% causa hemólise (importante lembrar da quantidade de EDTA para a quantidade de sangue). Depois de colhida a amostra é necessário homogeneizar de forma suave para não ocorrer hemólise. O EDTA é um sal e pode evaporar e ficam apenas pontinhos brancos (sal) no frasco, quando isso ocorre deve-se homogeneizar mais vezes. Caso seja necessário o transporte da amostra, ela deve ser refrigerada., mas nunca congelada para que não ocorra a formação de cristais de gelo. O sangue só é congelado quando não se precisa das células íntegras (PCR, diagnóstico molecular, necessidade da amostra do sangue e não do soro). Amostra no gelo seco congela. Pra enviar o soro para fazer análise bioquímica a coleta deve ser feita no tudo de ensaio de vidro (tampa vermelha). Não se deve homogeneizar a amostra, pois pode haver hemólise. Para o armazenamento e conservação deve ser feita a refrigeração por no máximo 24 horas em amostras bioquímicas. Mas se passar desse tempo, deve-se congelar em congeladores normais (não é ideal, pois o congelamento pode diminuir atividades de enzimas como a ALT – alanina amino transferase, uma enzima de extravasamento utilizada para saber se há lesão hepática). Quanto maior o tempo de intervalo para a análise, maior o congelamento. Então se armazenada por muito tempo, deve-se congelar em congeladores ultra. Dosagem de bilirrubina deve ser feita em frascos cobertos, pois ela é tem degradação luminosa. Na amostra bioquímica para colheita de plasma, é necessário utilizar anticoagulante. Na amostra para hemostasia é utilizado um tubo de ensaio de plástico maior e graduado. Para avaliar os fatores de coagulação é utilizado o citrato de sódio a 3,8% como anticoagulante. A relação é: 1 parte de anticoagulante para 9 partes de sangue, por isso o frasco é graduado. É necessário homogeneizar a amostra por inversão de forma suave. SEMPRE QUE HOUVER ANTICOAGULANTE É NECESSÁRIO HOMOGENEIZAR. Os fatores de coagulação na hemostasia são muito instáveis, então depois de homogeneizar se leva imediatamente ao laboratório para separar o plasma e refrigerá-lo. Isso deve ser feito idealmente em até 30 minutos. Há risco de MEDICINA VETERINÁRIA degradação da amostra. O ideal é não congelar a amostra, se não houver possibilidade de analisar imediatamente, pode congelar, mas ainda há risco de perde-la. A dosagem de glicose para avaliar glicemia sem o glicosímetro é feita em um equipamento de espectrofotometria. Colhe-se em um frasco de plástico utilizando um fluoreto de sódio associado com algum anticoagulante. O fluoreto impede que as células consumam a glicose. Se não houver fluoreto disponível, colhe a amostra, centrifuga, separa o plasma, analisa ou congela a amostra. AMOSTRA FRASCO ANTICOAGULANTE ARMAZENAMENTO HOMOGENEIZAR Hemograma Tubo de plástico EDTA 10% Refrigerada. Sim Soro Tudo de vidro Não utiliza. Refrigeração em até 24 horas. Para agilizar coagulação, banho maria a 37°C. Não Hemostasia Tubo de plástico graduado Citrato de sódio 3,8% Ideal não armazenar, mas se não for possível, congelar. Sim Glicose Tubo de plástico Fluoreto de sódio associado a algum anticoagulante. Congelamento. Sim Sempre que se leva uma amostra para o laboratório e se quer o SORO, para agilizar a coagulação a amostra vai para um banho maria a 37°C. A coagulação é um processo enzimático e ocorre melhor à temperatura corporal. Mas ao aumentar a temperatura, o metabolismo das células irá aumentar, consumindo mais glicose, assim se ao dosar glicose em uma amostra de soro, não se deve colocar a amostra em banho maria.
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