Prova Prática 2 parasito

Prévia do material em texto

Prova Prática 2 
Parasitologia Humana 
- Helmintos e artrópodes – 
 O diagnóstico da maioria das parasitoses 
intestinais é realizado por exame de fezes; 
 Estágios geralmente utilizados no diagnóstico: 
ovos e as larvas de helmintos 
 A identificação dos parasitos é realizada por 
critérios morfológicos; 
 A coleta mal feita e a má conservação da 
amostra podem afetar a morfologia dos 
parasitos; 
 O HPJ é o método mais utilizado no diagnóstico 
parasitológico de fezes 
 
 
 Método HPJ 
 Material: Fezes formadas, recém emitidas, refrigeradas ou armazenadas em conservante; 
 Objetivo: Pesquisar todos os tipos de ovos, cistos e larvas; 
 Parasitos detectados se presentes em grande quantidade: Giardia lamblia, Entamoeba coli, Entamoeba 
histolytica, Endolimax nana, Iodamoeba butschlii, Tricuris, Ancylostoma/Necator, Ascaris, Enterobius, H. nana, 
Taenia, etc 
 
 Procedimento: 
 Colocar cerca de 2g de fezes em um frasco contendo cerca de 20 mL de água filtrada e dissolver bem 
com bastão de vidro; 
 Filtrar a suspensão com uma gaze dobrada em quatro ou peneira de malha com 100 malhas por cm², para 
um cálice cônico de 200 ml. 
 Completar o volume do cálice com água filtrada; 
 Deixar a suspensão em repouso por 2 horas. 
 Coletar com um canudinho o sedimento e transferir para uma lâmina 
 Acrescentar uma gota de lugol e espalhar na lâmina. 
 Examinar no mínimo duas lâminas nos aumentos de 100X e 400X. 
 O microscópio deve estar com o condensador abaixado e diafragma pouco aberto. A visualização dos 
parasitos é melhor em pouca luminosidade; 
 Ovos e larvas são identificados no aumento de 100x; 
 Cistos e trofozoítos são vistos no aumento de 100x e identificados no aumento de 400x. 
Ovos de Enterobius vermicularis 
 
 
Adulto de Enterobius: 
 
 
 
 
 
 
Ovos de Trichuris: 
 
 
Adultos de Trichuris 
 
 
Ovos de Ascaris 
 
Adultos de Ascaris: 
 
 
 Métodos de Baerman-Moraes e Rugai 
 Princípio do método: termo-hidrotropismo positivo; 
 Objetivo: pesquisa de larvas de Strongyloides stercoralis 
 Coletar entre três a cinco amostras, em dias alternados para confirmação da presença de larvas 
rabditoides; 
 Ocasionalmente, podem ser visualizadas larvas filarióides em fezes envelhecidas ou em casos com ritmo 
intestinal lento; ou em fezes frescas de indivíduos hiperinfectados; 
 A identificação morfológica correta das larvas é fundamental devido a semelhança com a dos 
ancilostomídeos; 
 Em fezes diarreicas, na vigência de hiperinfecção, pode-se identificar larvas acompanhadas de ovos de 
S. stercoralis 
 Material: Fezes formadas frescas; Suporte para funis; peneira, funis, mangueira, gaze, termômetro, 
béquer, centrífuga, tubos de ensaio e pinça 
 Objetivo: Pesquisar larvas de Strongyloides; 
 Parasitos detectados se presentes em grande quantidade: Strongyloides. 
 
 Procedimento: Com uma espátula, coletar entre 8 a 10g de fezes.  Colocar as fezes em gaze dobrada 
em quatro partes sobre uma peneira ou parasitofiltro;  Colocar o material assim preparado sobre um 
funil, contendo um tubo de borracha conectado a extremidade inferior de sua haste;  Obliterar o tubo 
de borracha com uma pinça de Hoffhan e adicionar, ao funil, água aquecida (45°C) em quantidade 
suficiente para entrar em contato com as fezes;  Deixar uma hora em repouso;  Coletar entre 5 a 
7mL da água, em um tubo de centrífuga, abrindo-se a pinça;  Centrifugar a 1.000 rpm por um minuto; 
 Coletar o sedimento no fundo do tubo de ensaio e colocar sobre uma lâmina, sem desprezar o 
líquido sobrenadante;  Colocar uma gota de lugol sobre a lâmina contendo a amostra;  Examinar ao 
microscópio nas objetivas de 10x e 40X 
 
Ovos de Strongyloides: 
 
 
Larvas de Strongyloides: 
 
Adultos de Strongyloides: 
 
Ovos de ancilostomídeos 
 
 
Larvas de ancilostomídeos: 
 
 
 
 Método Kato-Katz: 
 Material: Fezes formadas, recém emitidas ou refrigeradas; Diarréia??  Kit contendo membrana de malha, papel 
celofane embebido em verde malaquita, placa perfurada, espátula;  Lâminas de microscopia; 
 Objetivo: Pesquisa de ovos de helmintos: Ascaris lumbricóides, Schistosoma mansoni, Trichuris trichiura, 
Ancylostoma duodenale/Necator americanus, Taenia sp; 
 Método quantitativo padronizado 
 Procedimento: Retirar uma amostra de fezes com o auxílio de uma espátula e colocar sobre um papel-toalha;  
Depositar sobre as fezes a tela de nylon (malha de 0,09 mm), comprimindo-a com o auxílio da espátula, o que 
fará com que partes das fezes passe através das malhas;  Recolher as fezes filtradas com a espátula e 
preencher completamente todo o orifício da placa perfurada (42 mg) que deverá estar sobre uma lâmina de 
microscopia; Passar a lateral da espátula na placa para retirar o excesso de material;  Retirar cuidadosamente a 
placa perfurada de modo a ficar sobre a lâmina um cilindro de material fecal;  Colocar sobre o cilindro de fezes 
uma lamínula de papel celofane embebida na solução verde-malaquita; Inverter a lâmina sobre uma superfície lisa 
e fazer pressão com o polegar sobre a região onde se encontra o cilindro de fezes, de modo que o material se 
espalhe uniformemente entre a lâmina e a lamínula;  Deixar a preparação por 60 minutos a temperatura 
ambiente;  Levar a preparação ao microscópio para contagem de ovos de helmintos;  Multiplicar o resultado 
por 23,80 e colocar o resultado em nº de ovos/grama de fezes 
 
 
Ovos de Schistosoma: 
 
 
 
Adultos de Schistosoma: 
 
Larvas de Schistosoma – Miracídio - 
 
Larvas de Schistosoma – Cercárias – 
 
Hospedeiros intermediários de Schistosoma: 
 
 Método de Graham 
 Os exames de fezes convencionais muitas vezes não são efetivos para o diagnóstico da enterobiose; 
A fêmea migra durante a noite do cólon para a região perianal e depositam os ovos nessa região 
 TAMIZAÇÃO: Consiste em colocar a amostra fecal em uma peneira ou parasito-filtro e levá-la em uma 
pia utilizando jato de água corrente; 
 A tamização é utilizada para busca de proglotes de Taenia solium e Taenia saginata; 
 Ocasionalmente podem ser encontrados vermes adultos de Ascaris lumbricoides, Taenia, 
Enterobius vermiculares e de ancilostomídeos. 
 Diagnóstico: 
 Clínico: prurido anal noturno e continuado; 
 Laboratorial: O exame de fezes muitas vezes não é efetivo para o diagnóstico da enterobiose; 
 O melhor método é o da fita adesiva transparente (Graham); 
 Método de Graham – PROCEDIMENTO: Recorte um pedaço de 8 a 10 cm de fita adesiva transparente; 
 Coloque a fita adesiva (parte não adesiva) em contato com um tubo de ensaio ou dedo indicador;  
Insira o tubo contendo a fita adesiva na região perianal do paciente;  Coloque a fita adesiva como se 
fosse uma lamínula sobre uma lâmina de microscopia;  Examine ao microscópio nas objetivas de 10 e 
40X. O executor do exame deve ter cuidado para não se contaminar 
 A técnica deve ser feita ao amanhecer, antes de a pessoa banhar-se, e repetida em dias 
sucessivos, caso dê negativo; 
 Se não for possível examinar a lâmina no mesmo dia, a conserve em geladeira, envolta em 
papel alumínio. 
 
 
Identificação das formas parasitárias de Tênia: 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
PROGLOTES DE Taenia solium: 
 Proglote quadrangular 
 Útero com 7-15 ramificações 
 Dendrítica 
 80 mil ovos 
PROGLOTES DE Taenia saginata: 
 Proglote retangular 
 Útero com 15-30 ramificações 
 Dicotômica 
 160 mil ovos 
 
Artrópodes 
 
 NEMATOCERA - Insetos (A) que possuem antenas longas (mais de seis segmentos), larvas com cabeça bem 
desenvolvida e pupa nua, que dá nascimento aos adultos através de fenda dorsal em forma de T. 
 CYCLORRAPHA - Moscas (B) que trazem na região frontal da cabeça uma sutura curva (sutura ptilineal) e uma 
cicatriz, a lúnula voltada para baixo. Larvas acéfalas. 
 BRACHYCERA – Parecem moscas grandes (C), massem lúnula e com 3-4 segmentos antenais; larvas acéfalas.