Confecção dos esfregaços citológicos

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Confecção dos esfregaços citológicos
 
 Coleta deve ser distendido sobre uma lâmina de vidro de
maneira delicada
Esfregaços
 
finos e uniformes
Evitar:
Destruição
Esmagamento
Alteração da morfologia célular
Evitar sobreposição celular Dificulta leitura e análise das laminas
Cuidado contaminação : Algodão
Gaze
Talco das luvas
Todo o material utilizado para a coleta deve ser estéril e
descartável, mesmo o bico de pato.
 
Para o exame, usar lâminas novas com a extremidade
fosca, para ser identificada com as iniciais do nome da
mulher e o seu número de registro na unidade. A
identificação é feita com lápis preto nº 2 ou grafite, pois o
uso de caneta hidrográfica ou esferográfica pode levar à
perda da identificação do material. 
Na coleta tríplice, o material obtido pode ser disposto em
duas lâminas: uma com o material proveniente da
ectocérvice e da endocérvice, e outra lâmina com o material
da vagina.
possibilitam uma maior
área de disposição
celular, uma fixação
mais rápida e uma
avaliação mais isolada
das células, porém o
tempo de leitura da
lâmina é maior.
Os materiais da ectocérvice e da
endocérvice devem ser colocados
em sentidos opostos: um na
horizontal, e o outro na vertical.
Independente do número de
lâminas. 
Isso facilita a diferença dos sítios
de coleta.
 Um esfregaço de qualidade deve ter células do epitélio da
ectocérvice, da endocérvice e da zona de transformação, além
da presença de células metaplásicas, ou endocervicais,
representativas da JEC.
Após a confecção das lâminas, os esfregaços devem ser
imediatamente fixados para impedir o dessecamento do
material, visando preservar a sua integridade, suas afinidades
tintoriais e permitir a permeabilidade do corante nas células.
A fixação deve acontecer com o esfregaço ainda úmido, por no
mínimo 15 minutos.
Caso não haja fixação no tempo correto, algumas alterações
podem ser observadas como aumento nuclear com perda
da integridade da cromatina, aumento da eosinofilia
citoplasmática e amostra turva e opaca.
 Essas alterações podem ainda tornar a amostra
insatisfatória para análise.
Na imersão direta, os fixadores utilizados são o álcool
etílico ou equivalente com graduação entre 70-95% ou uma
solução alcoólica de polietilenoglicol a 2% (Carbowax),
que cria um filme opaco sobre a lâmina e impede o
ressecamento do material.
A solução de fixação mais usada é o álcool a 95%, pois
apresenta baixo custo e toxicidade, além de desnaturar as
proteínas e os ácidos nucleicos, tornando-os estáveis e
solúveis.
Podem ainda ser utilizados sprays (álcool isopropílico e
glicol). A vantagem desses fixadores de cobertura em
relação ao etanol é a facilidade de transporte das amostras
que podem ser acondicionadas em caixas.