14º EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES

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EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES 
O EPF (Exame Parasitológico de Fezes) conhecido também como Protoparasitológico, é Utilizado 
para Identificar Modificações do Trato Gastrointestinal, sendo auxilio para o Diagnóstico de 
Parasitoses Intestinas pelas Fezes. É um Exame Barato não invasivo que é feito para auxilia o 
diagnóstico e evitar exames evasivos e caros como os de Imagem e Endoscopia. 
Este exame é dividido em uma Observação Primária 
Macroscópica e uma Observação Secundária Microscópica e 
classificam o que for identificado em Quantitativo e Qualitativo. 
• Observação Macroscópica: Observa-se a Consistência, Odor, 
Muco, Sangue, Vermes ou fragmentos deles. 
• Observação Microscópica: Possibilita a identificação de Ovos e 
Larvas de Helmintos (Vermes Parasitas), Trofozoítos, Oocistos e 
Cistos de Protozoários, sendo estes as Formas ativas destes Parasitas (Protozoários). 
Os Métodos Quantitativos são menos utilizados e Permitem a Identificação Quantificada dos 
Ovos destes parasitas presentes nas Fezes. Já o Método Qualitativo é mais utilizado e identifica 
não a quantidade, mas sim a Forma Morfológica do Parasita presente nas Fezes. 
SOBRE A COLETA E A CONSERVAÇÃO DA AMOSTRA 
A Coleta sem Conservantes deve ser tirada com cuidado sem 
contaminação e Armazenada em Temperatura Baixa (5 a 10ºC), 
podendo ser na Geladeira por até 14, já em caso de fezes líquidas a 
amostra deve ser enviada imediatamente ao Laboratório. 
Quando houver conservantes, o Laboratório se encarrega de exercer 
as instruções e frascos necessários para este exame, que é basicamente 
o mesmo processo de coleta, porém, sendo o Protoparasitológico de 3 
dias, onde as fezes são colhidas e armazenadas durante 3 dias, para auxiliar não só em um 
diagnóstico, mas também no acompanhamento do quadro clínico do paciente. 
• Quantidade a Colher Em Fezes Líquidas: Em fezes líquidas, no mínimo 10ml de fezes, o que 
equivale a uma Colher de Sopa. 
• Quantidade a Colher Em Fezes Sólidas: Os Potinhos de coleta geralmente acompanham um 
índice de volume a ser colhido. 
• Observação: Vale salientar que se deve coletar uma boa quantidade de Fezes, pois para um 
diagnóstico poderá ser necessário fazes repetições de exames gerais e, às vezes exames mais 
específicos e para isso o frasco não pode ser enviado com poucas fezes. 
MÉTODOS 
Não há método que identifique todos os parasitas ao mesmo tempo, entretanto, há Métodos 
mais Gerais que identificam vários Parasitas como o Método de Hoffman, Pons e Janer e os 
Métodos de Centrifugação, MIFC, Ritchie e Cropotest. 
• MÉTODO DE HOFFMAN, PONS E JANNER – MÉTODO DE SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA 
Em um Frasco coloca-se 5ml de Água com 2g de Fezes e tritura-se as fezes com um bastão de 
vidro ou palito de picolé, depois se acrescenta mais 20ml de água, após isso Filtra-se a suspensão 
 
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com uma Tela Metálica ou de Náilon (de 80 a 100 malhas por cm2) 
em um Cálice Cônico com capacidade de 200ml. Agita-se então a 
amostra com o Palito ou Bastão e depois Completa-se o Volume do 
Frasco com Água. 
Deixa-se o material descansar por 24h, depois desse tempo se o 
Material estiver muito opaco, deve-se retirar a água com cuidado para o Sedimento abaixo não 
vazar, por mais água e esperar 1h. Por outro lado, caso o sedimento esteja com uma coloração 
mais nítida, retira-se o Sedimento de Fezes para examinar em uma Lâmina. 
• Helmintos – Vermes Detectados: Os principais detectados são da Família Schistosoma, segue-
se também: Fascicola Hepática: Parasita Platelminto de Canais Biliares advindo do Porco, Boi, 
Ovelha, Cobra, é pouco comum. Hymenolepis Nana: Platelminto, uma Tênia causadora de 
Himinolepíase, bem advinda dos ratos. Hymenolepis Diminuta: que é outra Tênia comum em 
ratos. Ascaris Lumbricoide: da Família Ascaris os vermes adultos podem medir 15 a 40cm e 
desenvolvem-se no intestino delgado. Ancylostoma Ceylanicum: Um tipo de lombriga 
nomatóideo, numerosas e menores, nutrem-se do sangue, preferem o intestino delgado. 
Ancylostoma Duodenale: Outro tipo de lombriga nomatóideo que desencadeia ancilostomíase 
e pode levar a morte sem tratamento, prefere o Duodeno. Necator Americanus: Lombriga 
nomatóideo geradora de necatoríase, comum em locais tropicais. Trichuris Trichiura: Lombriga 
nomatóideo do Intestino Grosso, causadora de Tricuríase. 
Todos esses helmintos são encontrados na forma de ovos, ou em fragmentos de vermes e 
causam infecções do trato gastrointestinal. 
• Protozoários Detectados: Os principais são a Giárdia Duodenalis: muito encontrada no 
Duodeno e no Jejuno causando infecção do trato gastrointestinal. Entamoeba Histolytica: Causa 
Amebíase, o que gera desinterias severas com sangue e muco, 3ºcausadora de morte por 
parasitas e habita-se no Intestino Grosso. Entamoeba Coli: Protozoário (ameba) que não causa 
danos ao organismo humano. Entamoeba Díspar: outro Protozoário Não Patogênico. 
Entamoeba Hartmanni: Outro Protozoário (Ameba) Não Patogênica. Endolimax Nana: 
Protozoário (menor ameba vivente nos humanos) Não Patogênico, raramente pode dar enjoos 
ou diarreias. Iodomoeba Butschilii: Ameba do Intestino Grosso, Protozoário Não Patogênico. 
Dientamoeba Fragilis: Pode aparecer em todo o trato gastrointestinal, pode gerar transtornos 
em algumas pessoas e em outras não. Balantidium Coli: Se aloja no Intestino Grosso, transmitida 
por contato com fezes de suínos e gera a Blantidiose, uma infecção que gera diarreia, febre, 
fraqueza, muco e sangue nas fezes, pode levar a desidratação. 
Todos esses se encontram na forma de Trofozoítos (protozoários). 
• Cryptosporidium Parvum: Pode levar a Criptosporidiose, uma infecção do Trato Gastrointestinal 
que em crianças, pessoas imunodeprimidas (principalmente aidéticos) pode levar a quadros de 
febre, cólicas intestinas, diarreias. Transmite-se pela má higienização de alimentos ou contato 
com animais afetados. Isospora Belli: Protozoário que é transmitido por má higienização, em 
pessoas imunodeprimidas pode gerar diarreias, febre, cólicas intestinais. Esses se encontram na 
forma de Oocistos. 
MÉTODO DE MIFC OU DE BLAGG – SEDMENTAÇÃO POR CENTRIFUGAÇÃO 
As Fezes são colhidas em um Líquido conservante de MIF (Composto de Formol, Mercúrio, 
Cromo, Glicerina e Água) devendo ser bem homogênea. Depois as fezes são colocadas em uma 
 
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Gaze Cirúrgica dobrada 4x e colocadas em um corpo descartável. 
Depois 2ml são levados a um Tubo Cônico de Centrifugação de 
15ml, adicionando 5ml de Éter Sulfúrico e agitando bastante a 
amostra. Depois é Centrifugado a 1500rpm por minuto. Observa-
se que para ser mais específico para o Cryptosporidium é 
necessário fazer o mesmo, porém, centrifugando por 10mn. 
Com um Bastão ou Palito de Picolé retira-se os detritos ligados ao 
tubo, depois vira-se o tubo para que o conteúdo possa ser 
despejado e ir passando o bastão até limpar o tubo. Depois se 
adiciona Salina (e) ou Lugol, então põe-se a amostra em uma lâmina para análise. 
Essa Análise mostra todos os Helmintos e Protozoários citados acima, porém, com um a mais, o 
Protozoário Cyclospora Cayetenasis: É transmitido por água e alimentos contaminados com 
fezes, causa diarreia, vômitos, cólicas enjoo. Apresenta-se em forma de Oocisto. 
Esse exame é bastante utilizado para o Parasitológico de Fezes de 3 dias, pois garante a conserva 
da Amostra. 
MÉTODO DE FORMOL-ÉTER – RICHIE 
Idem ao Método de MICF, exceto o fato de que esse usa Formol a 10%. 
COPROTEST 
É um processo de Centrifugação mais simples, onde o Paciente compra ou recebe um Coletor 
Coprotest que já vem com Formol a 10%. Então o paciente põe as Fezes, agita por 2 minutos e 
leva para o Laboratório. 
MÉTODO DE STOLL-HAUSHER 
Em um Erlenmayer de 56 a 60ml é adicionado uma Solução de Cloreto de Hidróxido de Sódio 
(NaOh) 0,1N, até marcar 56ml, então éAdicionado as Fezes até marcar os 60ml. As fezes então 
são distribuídas em 10 frascos de Pérolas de Vidro e agitadas até estarem com aspecto 
homogêneo. 
Retira-se 0,15ml da amostra a pondo em Lâmina para Análise, em aumento 10x faz-se a 
contagem, multiplica-se a contagem de Ovos por 100. Esse exame é utilizado de forma 
Quantitativa, principalmente para Avaliar o estado da Infecção de Ancilostomídeos (como os 
Acylostomas, Nector Americanos etc.), porém, também é utilizado para análise de outros 
Helmintos. 
MÉTODO DE KATO-KATZ 
Uma Solução Verde Malaquita é preparada para as Fezes serem Conservadas e os Parasitas 
serem Classificados. Num papel celofane semipermeável cortado em pedaços de 24mm por 
30mm, mistura-se os papeis com as fezes e esperando 24h. Depois das 24h em um pedaço de 
Papel Higiênico são adicionadas uma parte das fezes e sobre elas uma tela metálica ou de náilon 
onde há compressão das Fezes, então irá passar ovos de helmintos e pequenos detritos 
pequenos como os ovos. 
Com um palito retira-se as fezes que passaram a Tela e as colocam em uma Lâmina para Análise. 
 
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Espera-se 2h para analisar a 
lâmina, conta-se os ovos e 
multiplica-se por 23. A OMS indica 
esse método para análise 
Quantitativa de Schitosoma 
Mansoni: Um platelminto 
causador da Esquistossomose, 
perigosa a saúde, presente em rios 
e lagos com fezes humanas, pode 
entrar por via Oral e até mesmo 
penetrado a Pele. No demais serve 
para análise das Lombrigas 
Ancylostoma e Trichuris Trichiura. Esse método não avalia Cistos de Protozoários.