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BIOQUÍMICA CLÍNICA Ana Daniela Coutinho Vieira Métodos de análise em bioquímica clínica OBJETIVOS DE APRENDIZAGEM > Identificar as principais diferenças entre os tipos de equipamentos presentes em grandes e pequenos laboratórios. > Reconhecer a importância dos TLRs no diagnóstico clínico. > Diferenciar os princípios básicos de instrumentação utilizados em algumas análises bioquímicas. Introdução A automação laboratorial deixou de ser apenas uma tendência distante e restrita em grandes laboratórios e passou a fazer parte dos estabelecimentos de análises clínicas em diversos níveis. Por isso, é imprescindível que os analistas conheçam os princípios e os fundamentos das principais metodologias utilizadas e os processos gerais envolvidos nesses equipamentos. Neste capítulo, você vai aprender sobre os métodos laboratoriais mais utilizados na bioquímica clínica, explorando seus diferenciais e suas bases teóricas. Além disso, será possível compreender que as diferentes necessidades e os contextos laboratoriais influenciam diretamente a escolha do equipamento mais adequado para o laboratório, levando em conta, principalmente, sua capacidade técnica e financeira. Por fim, vai entender o que são os testes laboratoriais remotos (TLRs), de que forma estão inseridos na medicina diagnóstica e se eles se correlacionam com as demais funções laboratoriais. Automação bioquímica em laboratórios de pequeno e grande porte Atualmente, os laboratórios de análises clínicas abrangem estabeleci- mentos de variados tamanhos/portes, desde os que realizam apenas testes mais básicos e com pouca automação (assegurados pelo enca- minhamento de amostras mais complexas para centros de referência) até aqueles altamente automatizados (com capacidade para executar um leque maior de exames, em diferentes níveis de complexidade). Em qualquer um desses cenários, a necessidade de realizar testes com resultados cada vez mais rápidos e com menores taxas de erros exige uma constante modernização dos protocolos e equipamentos utilizados no laboratório (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012; RECOMENDAÇÕES..., 2019). Por abranger um fluxo bastante considerável de exames e testes por dia, o setor de bioquímica foi um dos primeiros a receber automação e tem se modernizado constantemente. Essa atualização permite uma maior interação entre os diferentes setores laboratoriais por meio do comparti- lhamento de tecnologias, como os equipamentos que são úteis tanto para testes de bioquímica quanto de imunologia, por exemplo. Esse sistema de plataformas unificadas é uma tendência cada vez mais presente. Tais mudanças são possíveis, em parte, pelo progresso na triagem e nos cuida- dos da etapa pré-analítica, por intermédio de protocolos e de automações que possibilitam um maior rastreamento e uma melhor setorização das amostras, bem como pela integração de diferentes analisadores analíticos em um mesmo sistema laboratorial, com interfaceamento automático de resultados e informações geradas pelo laboratório, incorporando as fases pré-analítica, analítica e pós-analítica (MCPHERSON; PINCUS, 2012; XAVIER; DORA; BARROS, 2016). A Figura 1 apresenta o fluxo da rotina laboratorial, desde a necessidade da solicitação médica de um exame, passando por todas as suas fases de execução, até gerar um resultado que irá guiar uma conduta clínica. É possível notar que esse processo é bastante minucioso e exige a inte- gração de diferentes etapas, profissionais e tecnologias (MCPHERSON; PINCUS, 2012). Métodos de análise em bioquímica clínica2 A ALT não é uma realidade na maioria dos estabelecimentos devido ao seu alto custo de investimento e à necessidade de haver espaço estrutural para a instalação dos equipamentos (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012). Apesar disso, é importante saber que já existem variadas plataformas disponíveis para a integração e a automação do processo laboratorial em sua quase totalidade, como é o caso do Sistema Aptio, da Siemens®. Para saber mais, assista ao vídeo “Siemens Aptio Automation” no canal Alaa Aljehani/ Laboratory Tech no YouTube. Cada vez mais os laboratórios investem em analisadores automatizados individuais, em sistemas de processamento de informações (SIL — sistema de informações laboratoriais) e, em alguns casos, em processadores pré-analíticos. O grau de automação de um laboratório tem a influência direta das necessi- dades locais relacionadas à complexidade dos exames solicitados, ao público atendido (ambulatorial, hospitalar) e, principalmente, à realidade financeira da empresa. Por isso, laboratórios de menor porte ou que não comportam tais tecnologias muitas vezes se limitam ao SIL e a analisadores automatizados ou semiautomatizados de acordo com a sua rotina e fluxo de exames (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012; RECOMENDAÇÕES..., 2019). Figura 1. Fluxo laboratorial de produção de resultados. ALT: Automação Laboratorial Total. Fonte: McPherson e Pincus (2012, p. 15). Métodos de análise em bioquímica clínica 3 A utilização de automação na etapa analítica já gera um enorme ganho em questão de tempo de execução e padronização, pois a maioria dos analisadores bioquímicos executa a análise desde a etapa de leitura de códigos de barra nos tubos de amostra, passando por pipetagem, manipulação de reagentes, incubação, leitura de reação, cálculos e transmissão de resultados (MCPHER- SON; PINCUS, 2012). É importante salientar que os processos automatizados não estão livres de falhas e erros e, portanto, juntamente com a utilização desses analisadores, é necessário que os laboratórios conduzam rigorosos processos internos e externos de controle de qualidade. Uma das principais formas de verificação dos processos é a utilização de soros controle, ou seja, usam-se amostras com valores de analitos já conhecidas, por meio das quais o analista pode acompanhar o desempenho dos testes executados no laboratório. Além disso, outros dois pontos focais para a continuidade dos padrões de qualidade dos exames realizados são as manutenções corretivas e preventivas e a correção de possíveis falhas analíticas pela calibração dos equipamentos (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012). Testes laboratoriais remotos Os TLRs (ou POCTs — point-of-care testing) são exames realizados fora do ambiente físico laboratorial. Trata-se de testes rápidos que fazem uso de metodologias simples e de fácil execução. Esses testes são realizados pró- ximos ao paciente, muitas vezes em casa ou em estabelecimentos de saúde, como hospitais, unidades emergenciais, farmácias, clínicas especializadas e consultórios médicos ou em campanhas de saúde (ANDRIOLO, 2019; RECOMEN- DAÇÕES..., 2019). O desenvolvimento de TLRs teve como objetivos principais: atender às necessidades de atendimento do paciente em unidades de saúde móveis ou distantes, possibilitar o diagnóstico em estudos de levantamento epidemiológicos, proporcionar a realização de triagens e atender às aspirações de automonitoração de pacientes com doenças crônicas. A grande vantagem desse tipo de teste é a possibilidade de usar uma pequena quantidade de amostra, geralmente sangue total ou urina, sem a necessidade de tratamentos prévios, como a centrifugação. Isso permite que os resultados sejam gerados rapidamente, diminuindo, assim, o turnaround time, ou seja, o tempo de retorno. Esses testes utilizam variadas metodologias, como reações enzimá- ticas, imunológicas e eletroquímicas, e podem ser realizados em aparelhos portáteis, dispositivos imunocromatográficos, tiras reagentes, com cartões ou até mesmo sistemas eletrônicos (ANDRIOLO, 2019). Métodos de análise em bioquímica clínica4 Um exemplo clássico de TLR são os testes de glicemia capilar que uti- lizam uma pequena quantidade de sangue total para mensurar os níveis de glicose sérica e são muito úteis aos pacientes diabéticos que realizam o monitoramento desses níveis. Recentementeforam criados dispositivos mais modernos que têm a possibilidade de mensurar os níveis glicêmicos por meio de sensores subcutâneos conectados a dispositivos capazes de injetar insulina, em caso de necessidade. Esse tipo de produto, porém, ainda não é tão difundido quanto os clássicos glicosímetros (RECOMENDAÇÕES..., 2019). Outra aplicação bastante útil dos TLRs é na mensuração dos gases sanguí- neos e do pH em unidades hospitalares de terapia intensiva ou de emergência. Tais testes, assim como os demais TLRs, devem ser vinculados à supervisão de um laboratório clínico responsável e precisam manter os mesmos critérios de qualidade que os exames realizados no ambiente laboratorial, mantidas as suas proporções. Essa exigência é vinculada aos direcionamentos da RDC 302, de 13 de outubro de 2005, da Anvisa (Agência Nacional de Vigilância Sanitária), que regula o funcionamento de laboratórios clínicos. Para atender a essas demandas, alguns dispositivos portáteis têm sistemas de análise automática de controle de qualidade, com bloqueio do aparelho em caso de inconformidades, mas esta não é uma realidade em todos os TLRs (RECOMENDAÇÕES..., 2019). Princípios básicos de instrumentação analítica Na bioquímica clínica existe uma variedade de metodologias capazes de mensu- rar os analitos-alvo, tais como técnicas fotométricas, eletroquímicas, eletroforé- ticas, cromatográficas, imunoensaios e espectrometria de massa. Com o avanço das automações, alguns equipamentos oferecem a integração de mais de uma metodologia para resultados mais sensíveis e/ou específicos (XAVIER; DORA; BARROS, 2016). É essencial que todo profissional responsável pela manipulação de equipamentos analíticos conheça seus princípios e seu funcionamento, tanto para uma melhor interpretação dos resultados, quanto para eventuais necessidades de manutenção e calibração (MCPHERSON; PINCUS, 2012). Métodos fotométricos Nas análises bioquímicas, a predominância abrange os testes que se baseiam em princípios de medida de energia radiante. Para tal mensuração, a energia que pode ser refletida, dispersa, emitida ou absorvida é detectada por um Métodos de análise em bioquímica clínica 5 sensor dentro do equipamento analítico. Quando essa energia é absorvida ou transmitida em forma de luz (energia luminosa), as metodologias são chamadas de fotométricas e avaliam as reações químicas por meio da interação da luz (visível ou não) com os substratos consumidos ou com os produtos formados na reação (MCPHERSON; PINCUS, 2012; XAVIER; DORA; BARROS, 2016, ANDRIOLO, 2019). Uma das principais técnicas fotométricas é a espectrofotometria. Nela, a determinação da concentração de um analito em uma amostra é feita com base na absorção de luz monocromática por uma solução. Nessa metodo- logia, a intensidade da luz emitida diminui ao passar por uma solução, pois ela é absorvida pelo produto gerado em uma reação química. A quantidade de luz absorvida é chamada de absorbância. Nesse método também é men- surada a quantidade de luz que consegue passar sem ser absorvida pela solução (chamada de transmitância). Quanto maior for a concentração da solução, maior será a absorbância e menor será a transmitância, por outro lado, quanto menor for a concentração, menor será a absorbância e maior será a transmitância (Figura 2) (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012; XAVIER; DORA; BARROS, 2016; ANDRIOLO, 2019). Figura 2. (a) Um feixe de luz incide em uma solução (I) e parte da luz é absor- vida. A fração de luz que não é absorvida, é transmitida (T) e detectada por um sensor. Caso a solução não absorva luz (branco), haverá uma transmitância de 100% e (b) a avaliação da % de transmitância de uma solução é determinada relacionando a transmitância da amostra e do branco. Fonte: Bishop, Fody e Schoeff (2009, p. 100). Métodos de análise em bioquímica clínica6 A concentração da solução, por sua vez, está relacionada à quantidade de produto formado a partir de uma reação química específica que é utilizada para quantificar um analito. Para a dosagem de glicose em amostras bioló- gicas, por exemplo, utiliza-se uma pequena quantidade de amostra (soro/ plasma) e são adicionados reagentes específicos que irão permitir a ocorrência de uma reação de oxidação da glicose a partir da ação das enzimas glicose oxidase e peroxidase, formando, assim, um produto chamado de antipiril- quinonimina. Esse produto tem uma coloração vermelha, cuja intensidade é proporcional à concentração de glicose na amostra (LABTEST, [2011?]). A espectrofotometria surgiu no início do século XVIII por intermé- dio dos princípios de absorção criados por Bouguer. Ela permitiu a dosagem qualitativa e quantitativa de diversos analitos em amostras clínicas. Mais tarde, Lambert e Beer desenvolveram mais princípios de transformação de luz em medida de concentração, criando a lei de Lambert-Beer, ou lei de Beer, que afirma que a quantidade de luz absorvida (absorbância), ou a cor de uma solução, é proporcional à concentração da substância corada em solução (MCPHERSON; PINCUS, 2012; XAVIER; DORA; BARROS, 2016). Um espectrofotômetro, portanto, deve ser capaz de utilizar a energia luminosa para gerar informações sobre a concentração de uma solução e, para isso, é composto basicamente por seis elementos: fonte, seletor de comprimento de onda, cuvet holder ou cubeta, fotodetector, processador de sinal e dispositivo de leitura (Figura 3) (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012). Fonte: uma lâmpada, geralmente de tungstênio ou tungstênio-halogênio, serve como fonte estável de energia radiante. Essa fonte luminosa fornece a energia que será absorvida pela solução. É importante notar que, nesse momento, todos os comprimentos de onda do espectro estão disponíveis, pois a luz é policromática. Diferentes tipos de fontes podem ser utilizados, dependendo da especificidade de cada equipamento e dos comprimentos de onda desejados. Por exemplo: lâmpadas de deutério para radiação ultravio- leta (UV), lâmpadas de descarga de xenônio de alta pressão para emissões atômicas ou fontes laser que fornecem elevadas intensidades. Métodos de análise em bioquímica clínica 7 Seletor de comprimento de onda: é um componente crítico para o funcionamento do espectrofotômetro, pois o seletor deve ser capaz de isolar uma região espe- cífica do comprimento de onda emitido pela fonte (lâmpada) e focá-lo sobre a solução. Para esse fim, podem ser utilizados filtros, prismas e monocromadores. Cuvet holder ou cubeta: é o recipiente em que a solução é inserida e irá absorver a fração de luz direcionada pelo seletor de comprimento de onda. Esses recipientes devem ser transparentes e seus tamanhos podem variar de acordo com os comprimentos de trajeto requisitados pelo equipamento. Nessa etapa do processo, parte da luz será absorvida pela solução (absorbância) e o restante será transmitido (transmitância). Fotodetector: para determinar a quantidade de luz que foi capaz de passar pela amostra, o fotodetector irá receber a luz transmitida por meio de um cátodo e transformará essa informação em um sinal elétrico. Processador de sinal: irá processar e transformar o sinal elétrico recebido em uma informação quantitativa. Dispositivo de leitura: após o processamento do sinal elétrico, a informação gerada é disponibilizada em medidor ou dispositivo de leitura (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012). Figura 3. Representação gráfica do espectrofotômetro. (a) Lâmpada excitante, (b) fenda de en- trada, (c) monocromador, (d) fenda de saída, (e) cubeta de amostra, (f) fotodetector e (g) display. Fonte: McPherson e Pincus (2012, p. 40). Métodos de análise em bioquímica clínica8 A partir de tais estruturas, podem ser medidas, na espectrofotometria, as absorbâncias da luz em uma solução. Mas, afinal, o que é a luz? Em resumo, a luz consiste em uma forma de radiação eletromagnética que forma movimen- tos ondulatórios. A determinação do ponto emque a luz é detectável dentro do espectro leva em consideração o comprimento de onda eletromagnética que ela forma, sendo que esse comprimento é a distância linear entre duas cristas da onda. Tais conceitos são importantes para a compreensão das diferentes formas de leitura da luz em um espectrofotômetro, pois, dependendo do analito e do método escolhido, a leitura pode ser feita em diferentes pontos do espectro: luz visível, UV ou infravermelho (Figura 4). O que não muda entre esses métodos, porém, é o princípio de que quanto mais concentrada for a solução, maior será a absorbância de luz (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012). Figura 4. Demonstração do espectro de radiação eletromagnética com os diferentes tipos de luz originados em diferentes comprimentos de onda. Fonte: McPherson e Pincus (2012, p. 39). Métodos de análise em bioquímica clínica 9 Diferentes métodos podem ser analisados em um espectrofotômetro. Os mais utilizados são os colorimétricos, nos quais o produto da reação forma uma coloração no espectro de luz visível, e os UVs — nestes, as moléculas absorvem a energia luminosa no espectro UV. A metodologia colorimétrica é a mais frequente nas análises bioquímicas e se baseia na intensidade da cor e, consequentemente, da reação química. Ela é utilizada na mensuração de diversos analitos, como nas dosagens de glicose do exemplo citado an- teriormente, e pode ser associada a técnicas enzimáticas, ou seja, técnicas que medem a atividade de uma enzima por intermédio da sua interação com um substrato, gerando, portanto, um produto colorido. Já a metodologia UV é independente da formação de compostos de cor, pois seus espectros de leitura atuam em uma faixa diferente de comprimento de onda. Nesse caso, a reação é avaliada pela quantidade de luz absorvida pelos substratos nico- tinamida adenina dinucleotídeo e NADP nicotinamida adenina dinucleotídeo fosfato em uma reação (XAVIER; DORA; BARROS, 2016). Esses métodos podem ser avaliados com diferentes formas de leitura. As leituras de ponto final são aquelas em que a atividade da enzima é men- surada levando em consideração a medida do produto ao final da reação e esse produto se mantém estável durante um determinado tempo (durante o qual se realiza a leitura espectrofotométrica). Já nas leituras cinéticas, a atividade enzimática é mensurada em diferentes intervalos de tempo durante a formação do produto, sendo esta a mais precisa (PINTO, 2017). Alguns pontos-chave devem ser levados em consideração para garantir o adequado funcionamento do espectrofotômetro e, por consequência, leituras fidedignas. É necessário, por exemplo, que se utilizem soluções como branco da amostra, branco do reagente, solução padrão e calibradores (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009). O branco do reagente é a leitura do reagente sem a adição da amostra. Ele deve ser utilizado sempre que a absorbância do reagente for diferente da absorbância da água. Nesse caso, o valor encontrado na absorbância do branco do reagente será equivalente à absorbância zero, ou inicial. De forma semelhante, o branco da amostra deve ser utilizado quando há possibilidade de interferência da amostra na leitura da absorbância, utilizando uma solução neutra de referência no lugar do reagente com a adição da amostra. A utili- zação do branco da amostra é eficaz, principalmente em casos de amostras lipêmicas, ictéricas ou hemolisadas, pois a presença de lipídios, bilirrubina e hemoglobina em excesso interfere na leitura da absorbância, especialmente Métodos de análise em bioquímica clínica10 em se tratando de métodos colorimétricos e turbidimétricos. A utilização dos brancos minimiza os efeitos de interferentes que podem fazer com que parte da luz emitida possa ser refletida, dispersa ou absorvida, alterando, assim, a leitura real da solução de interesse (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; BASQUES, 2016; RECOMENDAÇÕES..., 2018). Já a solução padrão e os calibradores são mais utilizados para a calibração do espectrofotômetro. Trata-se de soluções com uma concentração conhecida do analito em questão que podem ser utilizadas para a garantia da exatidão do comprimento de onda selecionado e da leitura do aparelho (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009). Para uma aplicação prática dos termos abordados, utilizaremos uma reação de dosagem de glicose por metodologia enzimática- -colorimétrica, com leitura de ponto final, em um aparelho manual (com ne- cessidade de cálculo da reação pelo analista). Nesse caso, a faixa de leitura capaz de medir precisamente a absorbância indicada pelo fabricante é de 490 a 520nm. Portanto, o espectrofotômetro deve ser configurado para a leitura neste comprimento de onda. Para a execução do teste, serão necessárias três cubetas, as quais são chamadas de branco, padrão e teste. � Branco: com apenas o reagente. � Padrão: com o reagente e a solução padrão (concentração conhecida de 100mg/dL de glicose). � Teste: com o reagente e uma alíquota da amostra (soro/plasma do paciente). A cubeta contendo o branco deve ser analisada primeiramente para zerar o equipamento, pois a leitura da sua absorbância será considerada zero, evitando, assim, a interferência do reagente na leitura. Em seguida, devem ser realizadas as leituras das cubetas Padrão e Teste. Após as leituras, o seguinte cálculo deverá ser realizado para a determinação da concentração de glicose (mg/gL) na amostra (Teste): Sendo que o número 100, nessa equação, refere-se à concentração da solução padrão. Supondo que a absorbância do padrão foi de 0,450 e a do teste foi de 0,380, tem-se a seguinte equação: Métodos de análise em bioquímica clínica 11 Para facilitar a execução dos testes no dia a dia, devido à alta reproduti- bilidade da técnica, pode ser utilizado o fator de calibração, que consiste na relação determinada entre a absorbância e a concentração da solução. Sendo, neste exemplo, obtido a partir da seguinte equação: O valor da concentração da glicose no exemplo poderia ser obtido, mais facilmente, a partir do seguinte cálculo: Glicose (mg/dL) = absorbância do teste × fator de calibração Glicose (mg/dL) = 0,380 X 222 = 84 mg/dL Dessa forma, conclui-se que a concentração de glicose na amostra do paciente é igual a 84 mg/dL. Em aparelhos automatizados e semiautomatizados, esse cálculo é gerado automaticamente. Ainda no sentido de acurácia do teste, outro ponto crítico é a linearidade. Segundo a Lei de Beer, a quantidade de energia capaz de ser transmitida pela solução diminui exponencialmente de acordo com a espessura da solução que precisa atravessar, ou seja, a transmitância será inversamente proporcional à concentração da solução. Na prática laboratorial, uma forma de avaliar a linearidade é utilizar calibradores com concentrações conhecidas (em diferen- tes concentrações) e medir as suas absorbâncias. Com isso, torna-se possível criar um gráfico com uma curva padrão do teste. Nesse gráfico, geralmente o valor de absorbância inicial é próximo de zero, pois se utiliza o branco como o primeiro calibrador. Em seguida, são lançados os valores dos demais calibradores e é gerado o gráfico (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012). Se o teste executado estiver em concordância com a Lei de Beer, ocorrerá a formação de uma reação linear que servirá de base para que o equipamento faça a conversão dos valores de absorbâncias encontradas em soluções posteriores e a referida concentração das amostras. Porém, a linearidade só obedece a esses princípios até uma determinada concentração, que varia de teste para teste, e acima disso causa um desvio na curva. Esse ponto é chamado de limite de linearidade. Acima dele, a amostra deve ser diluída e ter seu valor posteriormente corrigido para garantir a acurácia da análise (Figura 5) (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012). Métodos de análise em bioquímica clínica12 A espectrofotometria utiliza essencialmente química úmida (reagentes líquidos) paraas análises. Já reflectometria, ou fotometria de reflectância, é bastante semelhante à espectrofotometria, com a diferença básica de que utiliza química seca, e por isso a mensuração se baseia na luz refletida e não na absorvida. Os reflectômetros são bastante semelhantes aos fotômetros em questão de composição, diferindo pela presença de suportes sólidos secos (granulosos ou fibrosos) para a reflexão da luz. Esses equipamentos são muito utilizados em automações para análises de leitura das tiras reagentes de urina, por exemplo, ou para dosagens colorimétricas de glicose, colesterol, triglicérides, entre outros analitos bioquímicos (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012; ANDRIOLO, 2019). Outra variação de teste fotométrico é a luminescência. Essa metodologia se baseia na troca de energia gerada a partir da absorção de radiação eletro- magnética pelos compostos. Tal absorção gera uma agitação que pode ser quantificada pela emissão de luz fluorescente que é detectável por fluorômetros e espectrofluorômetros. A luminescência tem sensibilidade e especificidade bastante altas, mas que foram melhoradas ainda mais na quimiolumines- cência, uma variação da técnica que utiliza substâncias químicas ou reações eletroquímicas para a produção de compostos excitados. Essa metodologia é Figura 5. O gráfico demonstra a correlação entre concentração da amostra e absorbância da solução. A curva gerada consegue ser linear até uma determinada concentração, depois desse ponto, há um desvio na Lei de Beer. Fonte: McPherson e Pincus (2012, p. 40). Métodos de análise em bioquímica clínica 13 muito utilizada em imunoensaios (MCPHERSON; PINCUS, 2012; ANDRIOLO, 2019). Já na fotometria de chama é analisada a emissão de luz a partir da excitação dos átomos da solução contendo a amostra do paciente pela exposição a uma chama. Os átomos emitem luz quando retornam do estado excitado para o de repouso e, a partir de comprimentos de onda específicos, a luz emitida pode ser quantificada. Essa técnica é bastante útil na dosagem de íons como sódio, potássio e lítio por exemplo (XAVIER; DORA; BARROS, 2016). Outras metodologias com base na excitação de átomos são a espec- trometria de emissão atômica e espectrometria de absorção atômica. A espectrometria de emissão atômica se baseia na capacidade de os átomos ou íons emitirem radiações com comprimento de onda específicos quando excitados, sendo a intensidade dessa radiação luminosa proporcional ao conteúdo de metal na amostra. Já a espectrometria de absorção atômica consiste na medida da absorção de luz por átomos metálicos em repouso. Trata-se de metodologias usadas para a detecção de íons e metais em fluídos biológicos (XAVIER; DORA; BARROS, 2016; ANDRIOLO, 2019). Por fim, a turbidimetria e a nefelometria são utilizadas para a mensuração de compostos que não podem ser avaliados por métodos de absorção, pois são partículas grandes (p.ex., proteínas). Nessas técnicas, avalia-se a dispersão da luz após atingir os compostos em suspensão na solução, visto que essas partículas dispersam a luz de forma proporcional à sua concentração na amostra biológica. Esse tipo de metodologia é principalmente utilizada nas do- sagens de proteínas em urina e fluidos biológicos (cerebrospinal, pulmonares, ascético, etc.), como transferrina, proteína C reativa ou microalbuminúria. Os nefelômetros detectam a luz dispersa em vários ângulos, já os turbidímetros quantificam a diminuição da transmissão de luz em decorrência da formação de partículas na solução (MCPHERSON; PINCUS, 2012; XAVIER; DORA; BARROS, 2016; ANDRIOLO, 2019). Métodos eletroquímicos Os métodos eletroquímicos também podem ser bastante úteis na bioquímica clínica, com destaque para as técnicas de potenciometria e eletrodos íons seletivos (ISE). Tais métodos realizam a mensuração da voltagem entre dois eletrodos em uma solução. Essa voltagem é o potencial e deve ser compa- rado entre os eletrodos, pois um deles deve ser o teste e o outro o eletrodo referência. Sua aplicação é útil na detecção de íons, pois estes são capazes de causar alterações entre esses potenciais. A gasometria, por exemplo, pode ser executada por meio dessa técnica para a quantificação de CO2, O2 Métodos de análise em bioquímica clínica14 e pH no sangue, porém, outros metabólitos e eletrólitos também podem ser dosados por essa metodologia, como cálcio ionizado, chumbo e cloro (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; MCPHERSON; PINCUS, 2012; XAVIER, DORA; BARROS, 2016; ANDRIOLO, 2019). Outros métodos utilizados em bioquímica clínica A eletroforese utiliza uma corrente elétrica para gerar um fluxo que separa os compostos de uma solução iônica de acordo com a carga elétrica e o tamanho dos seus compostos. Nesse fluxo, os cátions, carregados positivamente (+), migram para o polo negativo enquanto os ânions, carregados negativamente (–), migram para o polo positivo. Essa separação forma bandas que podem ser identificadas e quantificadas, possibilitando, com isso, a análise de proteínas plasmáticas, macromoléculas, íons inorgânicos e drogas (MCPHERSON; PINCUS, 2012; XAVIER; DORA; BARROS, 2016; ANDRIOLO, 2019). A cromatografia é a separação de uma solução com base nas interações físicas e químicas dos compostos com uma fase móvel e uma fase estacionária. A fase móvel é responsável por transportar a amostras pela fase estacionária. Diversos tipos de cromatografia foram desenvolvidos e, em alguns casos, associam outras técnicas analíticas para a detecção dos compostos, como é o caso da cromatografia líquida de alta resolução, que pode realizar a quantificação por fotometria, potenciometria, entre outras técnicas (BISHOP; FODY; SCHOEFF, 2009; XAVIER; DORA; BARROS, 2016; ANDRIOLO, 2019). � Cromatografia em camada delgada: detecção qualitativa de aminoá- cidos, fosfolipídios e rastreamento toxicológico. � Cromatografia líquida de alta resolução: detecção quantitativa de aminoácidos, hemoglobinas, vitaminas, entre outros. � Cromatografia gasosa: detecção de ácidos orgânicos e fármacos, prin- cipalmente (XAVIER; DORA; BARROS, 2016). Os métodos que se baseiam em imunoensaios utilizam as reações de antígeno-anticorpo para detectar imunocomplexos, anticorpos ou antígenos. Apesar de terem sido utilizados primariamente para o diagnóstico de doenças infecciosas, a técnica foi adaptada e hoje em dia é amplamente usada na detec- ção de marcadores tumorais e medicamentos e na quantificação de hormônios. Para facilitar a detecção dos imunocomplexos e aumentar a sensibilidade dessa metodologia, muitas vezes são utilizados reagentes marcadores enzimáticos, fluorescentes ou quimioluminescentes (XAVIER; DORA; BARROS, 2016). Métodos de análise em bioquímica clínica 15 A espectrometria de massas, por sua vez, baseia-se na fragmentação e na ionização de moléculas, sendo que a abundância relativa de cada íon produz um espectro de massa característico. Nesse tipo de equipamento, há a ionização da molécula-alvo de análise, que a separa das demais subs- tâncias presentes na amostra e possibilita a identificação e a quantificação do composto com base na sua relação massa/carga (MCPHERSON; PINCUS, 2012; ANDRIOLO, 2019). Em geral, a maioria dos analisadores automatizados utiliza, de forma predominante, as técnicas de espectroscopia de absorbância (espectrofoto- metria), porém, cada vez mais a fotometria de reflectância, os imunoensaios e a eletro e quimioluminescência vêm sendo incorporados às plataformas. Da mesma forma, os ISEs são cada vez mais utilizados para as dosagens de eletrólitos, sendo a fotometria de chama deixada em desuso. Um exemplo bastante conhecido no âmbito laboratorial é a plataforma COBAS®, a qual incorpora fotômetro, ISE, óptica turbidimétrica e fluorescência polarizada em um mesmo sistema, embora haja várias outras disponíveis no mercado laboratorial (MCPHERSON; PINCUS, 2012). Referências ANDRIOLO, A. (ed.). Manual da residência de medicina laboratorial. Barueri: Manole,2019. BASQUES, C. J. Fotometria e padronização. Lagoa Santa: Labtest, 2016. BISHOP, M. L.; FODY, E. P.; SCHOEFF, L. E. Química clínica: princípios, procedimentos, correlações. 5. ed. Barueri: Manole, 2009. LABTEST. Glicose Liquiform: instruções de uso. [Lagoa Santa]: Labtest, [2011?]. MCPHERSON, R. A.; PINCUS, R. M. Diagnósticos clínicos e tratamento por métodos laboratoriais. 21. ed. Barueri: Manole, 2012. PINTO, W. J. Bioquímica clínica. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2017. RECOMENDAÇÕES da Sociedade Brasileira de Patologia Clínica/Medicina Laboratorial (SBPC/ML): fatores pré-analíticos e interferentes em ensaios laboratoriais. Barueri: Manole, 2018. RECOMENDAÇÕES da Sociedade Brasileira de Patologia Clínica/Medicina Laboratorial (SBPC/ML): inovação no laboratório clínico Barueri: Manole, 2019. XAVIER, R. M.; DORA, J. M.; BARROS, E. (org.). Laboratório na prática clínica. 3. ed. Porto Alegre: Artmed, 2016. (Consulta Rápida). Métodos de análise em bioquímica clínica16 Leitura recomendada BRASIL. Ministério da Saúde. Agência Nacional de Vigilância Sanitária. Reso- lução de Diretoria Colegiada – RDC nº 302, de 13 de outubro de 2005. Dispõe sobre Regulamento Técnico para funcionamento de Laboratórios Clínicos. Brasília, DF: Ministério da Saúde, 2005. Disponível em: http://portal.anvisa. gov.br/documents/10181/2718376/RDC_302_2005_COMP.pdf/7038e853-afae- 4729-948b-ef6eb3931b19. Acesso em: 2 set. 2020. Os links para sites da web fornecidos neste capítulo foram todos testados, e seu funcionamento foi comprovado no momento da publicação do material. No entanto, a rede é extremamente dinâmica; suas páginas estão constantemente mudando de local e conteúdo. Assim, os editores declaram não ter qualquer responsabilidade sobre qualidade, precisão ou integralidade das informações referidas em tais links. Métodos de análise em bioquímica clínica 17
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