Vamos analisar as alternativas com base nos procedimentos corretos para coleta e análise de amostras fecais em parasitologia clínica: a) Coleta de amostra liquefeita ou aquosa é ideal e deve ser feita diretamente no frasco coletor universal. — Incorreto. Amostras muito líquidas dificultam a análise e podem não ser ideais para todos os métodos diagnósticos. b) Amostras de fezes devem ser de consistência firme para exames parasitológicos. — Parcialmente correto, mas nem sempre é possível ou obrigatório que a amostra seja firme; amostras pastosas também são aceitas. c) Na coleta de amostra de fezes formadas (pastosas ou petrificadas), deve-se colocá-las em frasco coletor universal, de plástico limpo e seco, com tampa de rosca. — Correto. Essa é a prática recomendada para amostras formadas. d) Coleta de fezes requer jejum de 12 horas do paciente. — Incorreto. Não há necessidade de jejum para coleta de fezes. e) Tempo entre coleta e exame: amostras formadas podem ser examinadas em até 30 minutos; amostras líquidas podem ser examinadas até 24 horas depois. — Incorreto. Amostras líquidas devem ser examinadas o mais rápido possível, preferencialmente em até 30 minutos, para evitar degradação. Portanto, a alternativa correta é: c) Na coleta de amostra de fezes formadas (pastosas ou petrificadas), deve-se colocá-las em frasco coletor universal, de plástico limpo e seco, com tampa de rosca.