RELATÓRIO 1 AULA 1Bioquímica Humana - AULA 1 _ Passei Direto

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS - EAD
AULA ____
DATA:
______/______/______
VERSÃO:01
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: BIOQUIMICA HUMANA – Aula 1
DADOS DO(A) ALUNO(A):
NOME: MATRÍCULA: Adalgilene Mendes de Sousa Carvalho 01457598
CURSO: POLO: Farmácia Redenção/ Teresina
PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Antônio gomes
ORIENTAÇÕES GERAIS: 
● O relatório deve ser elaborado individualmente e deve ser escrito de forma clara e
● concisa;
● O relatório deve conter apenas 01 (uma) lauda por tema;
● Fonte: Arial ou Times New Roman (Normal e Justificado);
● Tamanho: 12;
Margens: Superior 3 cm; Inferior: 2 cm; Esquerda: 3 cm; Direita: 2 cm;
● Espaçamento entre linhas: simples;
● Título: Arial ou Times New Roman (Negrito e Centralizado). 
 
TEMA DE AULA: ATIVIDADE CATALÍTICA DA AMILASE SALIVAR
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula.
Carboidratos: O processo digestivo dos carboidratos tem início com a mastigação, que
facilita o acesso das enzimas ao amido. A saliva contém a enzima alfa-amilase, conhecida
antigamente como ptialina, cuja função é iniciar na boca a digestão do amido. Essa enzima
catalisa a hidrólise das ligações internas α-1,4 do amido, mas não consegue hidrolisar as
ligações ramificadas α-1,6. A α-amilase secretada pelo pâncreas possui a mesma
especificidade e a sua atividade enzimática total é consideravelmente maior que aquela da
amilase salivar. A ação da α-amilase salivar continua até que o alimento no estômago
esteja misturado com o ácido gástrico, que inativa a enzima. Depois que a α-amilase
salivar é inativada pelo ácido gástrico com o pH em torno de 4,0, não haverá no estômago
nenhum processamento adicional dos carboidratos. Dez minutos após penetrar no
duodeno, o amido é quase completamente transformado em maltose, maltotriose,
maltooligossacarídios com ligações α-1,4.
2. Materiais utilizados.
Vidrarias:
Pipeta de vidro
Tubo de ensaio
Reagente:
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Solução de lugol
Solução de amido 1%
Solução HCL 1:2
Solução salina
Equipamentos:
Estante
Descarte
Água destilada
Banho Maria
Pinça 
Procedimento:
Junção amido (3ml) + HCL 1:2 (3ml)
Tubo AA1, AA2 e AA3 com 5ml de água destilada.
Amostra AA1 solução amido + banho gelo
Amostra AA2 solução amido + banho maria 10 min
Amostra AA 3 solução amido + banho maria 20 min
Quando os tubos tiver frios adicionar 10 gts de lugol.
3. Responda as Perguntas: 
A) Qual a composição do amido?
R: Carboidratos
B) Comente os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise química
do amido.
R: O resultado da amostra AA1 a mistura de água destilada com lugol ficou verde
amarelado
AA2 a mistura ficou Roxa.
AA3 a mistura ficou marrom
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C) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise
química do amido?
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R: Obesevar a coloração, verificar quanto mais tempo no fogo mais pigmentado fica.
D) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da
amilose.
R: polímero linear, com cerca de 200 moléculas de glicose em sua estrutura.
E) Comente os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise
enzimática do amido.
Esse teste representa a presença de carboidratos
AA4 5ml(H2O) + 5ml de (sol)gts lugol
AA5 5ml(H2O) + 5ml de (sol) 10 min banho maria
AA5 5ml(H2O) + 5ml de (sol) 20 min banho maria
AA4: amarelo
AA5: azul
AA6 azul
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F) Explique a relação entre a atividade da amilase salivar, o tempo de incubação da enzima
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com o amido e a variedade de cores observada no procedimento da hidrólise enzimática do
amido. 
R: - atividade inicial da protease e amilase, respectivamente a estabilidade das enzimas
com 
detergente tixan após 30 minutos de incubação.
4. Conclusão sobre a atividade catalítica da amilase salivar
R: O desenvolvimento deste trabalho possibilitou conhecer algumas peculiaridades dos
amidos modificados disponíveis no Brasil
https://www.scielo.br/j/rn/a/xZvWbFL 
TEMA DE AULA: REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE 
ALDOSES E CETOSES)
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. Identificação a presença de carboidratos.
R: reconhecer e classificar os carboidratos como aldoses e cetoses
2. Materiais utilizados.
Vidrarias: pipeta, Becker e tubo de ensaio.
Análito: glicose pura e mel de abelha.
Reagente: reagente seliwanoff, ácido clorídrico concentrado, solução de glicose 1% e
solução de frutose 1%
Equipamentos: estante para tubo de ensaio, pipetador, água destilada e banho maria.
3. Responda as Perguntas:
A) Explique o princípio bioquímico do teste de Seliwanoff.
R: O teste de Seliwanoff é um teste químico que permite distinguir aldoses de cetoses. ...
Este teste baseia-se no princípio de que, quando aquecidas, as cetoses sofrem
desidratação muito mais rapidamente que as aldoses.
B) Comente os resultados obtidos nos 3 tubos utilizados no procedimento, correlacionando
com a presença ou não de aldoses e cetoses.
R:Indentificar a presença de carboidratos
T1: branco, não contém
T2: vermelho escuro, contém
T3: vermelho médio, contém
T4:vermelho claro, não contém
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aparência de cor vermelho-escuro. Isso indica que a solução da amostra contém um açúcar
redutor.
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C) Explique qual o objetivo de utilizar um tubo apenas com água destilada.
R: para atuar no controle.
D) Qual a função do ácido clorídrico (HCl) e da fervura aplicados no teste de Seliwanoff?
R: A reação de Seliwanoff só diferencia-se da reação de Molischnos reagentes utilizados:
o ácido que causará a desidratação do carboidrato é o ácido clorídrico (HCl) e o fenol que
reage como o furfural e HMF é o resorcinol.
4. Conclusão sobre a identificação de aldoses e cetoses utilizando o teste de Seliwanoff?
R: Esse teste permite diferenciar aldoses de cetoses porque a reação com a cetose é mais
rápida e mais intensa. Isso porque a formação do furfural é mais fácil que a formação do
hidroximetilfurfural 
REF:
http://plone.ufpb.br/ldb/contents/menu/assuntos/praticas 
 
TEMA DE AULA: PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS 
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula.
R: Vimos no experimento anterior que a solubilidade das proteínas em meio aquoso deve-
se, em grande parte, à distribuição das cargas elétricas ao longo da molécula. Nesse
sentido, se a interação proteína-proteína é grande e a interação proteína - água é pequena,
a proteína tenderá a ser insolúvel.
Uma das maneiras de promover a precipitação de uma proteína é atingir seu ponto
isoelétrico. Porém, existem outros fatores que influem de maneira importante nessa
propriedade física das proteínas, como a ação de ácidos, bases, sais e solventes
orgânicos. Além disso, podemos incluir a temperatura como um agente que pode ser
utilizado para diminuir a solubilidade de uma proteína.
 
2. Materiais utilizados.
Vidrarias: pipeta de vidro e tubo de ensaio.
Reagentes: solução de ácido tricloroacético 20% , solução de ovoalbumina 10% e solução
de acetato de chumbo.
Procedimentos:
Tubo 1: 2ml água destilada+ 2ml de ácido tricloroacético.
Tubo 2: 2ml de ovoalbumina+ 2ml de ácido tricloroacético.
Tubo 3: 2ml de ovoalbumina+ 5 gotas de acetato de chumbo.
Tubo 4: 2ml de água+ 5 gotas de acetato de chumbo.
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A) Comente os resultados obtidos no procedimento da precipitação da ovoalbumina com
ácido forte e metal pesado.